Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników

Znaleziono wyników: 24

Liczba wyników na stronie
Pierwsza strona wyników Pięć stron wyników wstecz Poprzednia strona wyników Strona / 2 Następna strona wyników Pięć stron wyników wprzód Ostatnia strona wyników

Wyniki wyszukiwania

Wyszukiwano:
w słowach kluczowych:  phytoplasma
help Sortuj według:

help Ogranicz wyniki do:
Pierwsza strona wyników Pięć stron wyników wstecz Poprzednia strona wyników Strona / 2 Następna strona wyników Pięć stron wyników wprzód Ostatnia strona wyników
Experimental infection of Alstroemeria seedlings with naturally infected lily ‘Casablanca’ with stunting and flower bud deficiency phytoplasma resulted 3–4 weeks after top grafting in chlorotic and/or necrotic stripes, whitening of the leaves, shoot necrosis and die back. Flower discoloration or malformation were not observed. Attempts to transmit phytoplasma from naturally infected lily and experimentally infected Alstroemeria to Catharanthus roseus by top grafting resulted in stunted growth, dull yellowing and malformation of the leaves in 4–6 weeks. Some plants were temporary entirely vegetative and did not produce flowers. The periwinkle plants that were bridged by Cuscuta odorata from the diseased lilies and Alstroemerias showed similar symptoms as top-grafted ones. With the universal primer pairs rU3/fU5 specific PCR product with expected length ∼900 was amplified from samples collected from lilies with severe symptoms and top grafted test plants. All PCR products used for RFLP analysis after digestion with Alu I showed the same restriction profiles. Position of three obtained bands corresponded to the lengths of the DNA fragments of American aster yellows (AAY) phytoplasma group.
In 2017 growing season numerous examinations of Cosmos bipinnatus in Hormozgan province, Iran revealed the disease symptoms similar to those associated with phytoplasmas. Phytoplasmas were detected from all symptomatic plants by the specific polymerase chain reaction (PCR) utilizing phytoplasma universal primer pairs. Amplification, sequencing and blast analysis of 16S rDNA fragment (ca. 1.2 kb) demonstrated that C. bipinnatus plants were infected by a phytoplasma belonging to the 16SrII group. This is the first report of association of a ‘Candidatus Phytoplasma aurantifolia’-related strain with C. bipinnatus phyllody in Iran.
The presence of phytoplasmas in Lilium sp. showing severely stunted growth, leaf malformation and flower buds deficiency was demonstrated for the first time using polymerase chain reaction assays with primers amplifying phytoplasma 16S rDNA regions. These phytoplasmas were found in leaves as well as roots and bulb scales of symptomatic and CMV and/or LSV affected and asymptomatic virus-free lilies.
Roots of Gladiolus x hybridus Van Houtte plants infected with aster yellows phytoplasma were examined. The infected plants had a reduced root system in comparison to control plants. Their roots were thinner and the stele organisation was changed. Phytoplasmas were present in sieve tubes, companion cells and phloem parenchyma cells of the infected plant roots. Free calcium ions were localized in the cells of infected plants. Cells of the stele of infected roots, especially these infected with phytoplasmas, showed an increase of calcium antimonite deposits in theirs protoplasts. Also the number of calcium antimonite deposits increased in sieve tubes of infected roots. The deposits were present on plasma membrane, around the sieve tube plate and also in the lumen of the sieve tube. The increase of free calcium ions in sieve tubes did not cause the occlusion of sieve tube pores. Companion cells and some parenchyma cells with phytoplasmas did not react to phytoplasma infection with an increase of Ca2+ ions in protoplast. The parenchyma cells showing signs of degeneration reacted with high increase of calcium ions. The Ca2+ ions were present mainly in cytoplasm of infected parenchyma cells. There were calcium antimonite deposits in infected plant roots xylem elements and in intracellular spaces of cortex parenchyma. Such deposits were not present in control plants.
9
84%
The results of PCR examination indicated that during two years of tissue culture at standard conditions, on the medium with BAP 1 mg l-1 and continuous temperature of 20oC, phytoplasma could be detected in diseased plants of rose cv Sacha and Jazz. In the second year of micropropagation phytoplasma detection rate in tissues of infected roses increased and was relatively higher than in the first one. To test whether phytoplasmas are sensitive to temperature and light intensity, phytoplasma-affected micropropagated rose plants were grown on medium with BAP 1.0 or 0.5 mg l-1 and at the temperature of 4, 15, 20 or 25oC in darkness or in the light. PCR analysis indicated that phytoplasma detection was not effected by these conditions during 4 weeks of culturing. However, phytoplasma was not detectable in rose plants after 8 weeks culturing on the same medium without transplanting. Micropropagated rose shoots maintained on medium with Gentamycin or Baytril at the concentration of 25.0 or 50.0 mg l-1 had reduced growth and were chlorotic. However, no direct effect of applied antibiotics on phytoplasma detection was evidenced.
In two of Iran's central provinces, several herbaceous plants showing phytoplasma disease symptoms were collected to detect 'Canididatus Phytoplasma asteris'-related phytoplasmas. Confirmation of an association of phytoplasmas with diseased plants was done using polymerase chain reaction (PCR) assays having the phytoplasma universal primer pairs P1/P7 followed by R16F2n/ R16R2 in nested PCR. Then, for detection of 'Ca. P. asteris', DNA samples were subjected to amplification of rp and tuf genes using specific primer pairs rp(I)F1A/rp(I)R1A and fTufAy/rTufAy, respectively. Restriction fragment length polymorphism or RFLP analyses of rp gene fragments using Tsp509I restriction enzyme as well as sequence analyses indicated that 'Ca. P. asteris'-related phytoplasmas associated with carrot, niger seed and scallion plants in these regions, belong to the rpI-L subgroup. This research is the first report of carrot, niger seed, and scallion infection with phytoplasmas belonging to the rpI-L subgroup.
Choroby roślin iglastych, takie jak skupiska silnie skróconych i nadmiernie rozgałęzionych pędów, występują na całym świecie. Anomalie te zwane czarcimi miotłami są bardzo atrakcyjne, i mimo braku wiedzy o przyczynie ich powstawania, są wegetatywnie rozmnażane aby uzyskać nowe, wolno rosnące formy iglaków, przydatne do małych ogrodów. Do niedawna przypuszczano, że czarcie miotły są wynikiem mutacji pączkowych, jednakże najnowsze badania oparte na amplifikacji fragmentu genu 16S rDNA w łańcuchowej reakcji polimerazy (PCR) oraz analizie sekwencji wskazują, że czarcie miotły na iglakach mają związek z zakażeniem drzew przez fitoplazmy. Celem niniejszej pracy jest przedstawienie potencjalnego zagrożenia wynikającego z rozmnażania i rozpowszechniania form uzyskanych z czarcich mioteł roślin zakażonych przez fitoplazmy.
Recently, Russian olive trees showing witches’-broom and little leaf symptoms have been widely observed in northwestern and central Iran. Polymerase chain reaction (PCR) and nested PCR assays using phytoplasma universal primer pairs confirmed phytoplasma symptomatic infection of trees. Sequence analyses showed that ‘Candidatus Phytoplasma asteris’ was the causal agent of the disease in these regions. However, RFLP results using restriction enzymes HpaII, EcoRI, HinfI and AluI indicated that the collected isolates in these regions are genetically different. In addition, leafhopper Macropsis infuscata was recognized as a possible insect vector of the disease for the first time.
W latach 1998-2005 prowadzono obserwacje i badania nad występowaniem fitoplazm w drzewach i krzewach ozdobnych w Polsce. Przedmiotem badań były krzewy z rodzaju Clematis sp., Magnolia spp. i Rosa sp. oraz drzewa z rodzaju Acer sp., Carpinus sp., Fagus sp., Fraxinus sp. i Quercus spp. wykazujące objawy chorobowe sugerujące porażenie przez fitoplazmy. Objawy te obejmowały zahamowanie wzrostu, zmiany w zabarwieniu a nawet nekrozę i deformację liści, proliferację i zamieranie pędów, czasem deformację i zielenienie lub brak kwiatów oraz zamieranie roślin. Do wykrywania i identyfikacji fitoplazm stosowano test biologiczny oparty na reakcji rośliny testowej Catharanthus roseus, zakażanej techniką szczepienia, oraz analizę PCR-RFLP. Stosując technikę szczepienia, fitoplazmy przeniesiono z chorych róży, magnolii i klonu na siewki C. roseus. Przy pomocy techniki łańcuchowej reakcji polimerazy (PCR) ze starterami amplifikującymi fragment 16Sr DNA fitoplazm, obecność fitoplazmatycznego DNA wykryto w roślinach Rosa spp., Magnolia spp., Clematis sp., Fraxinus excelsior, Carpinus sp. i Acer negundo oraz w eksperymentalnie zakażonych siewkach C. roseus. Analiza RFLP produktu amplifikacji z użyciem enzymów restrykcyjnych AluI, HhaII MseI i RsaI wykazała, że rośliny grabu, jesionu, klonu, magnolii, powojnika i róży były naturalnie porażone przez fitoplazmę z grupy żółtaczki astra (16SrI-B) - 'Ca. Phytoplasma asteris’. W niektórych roślinach róży i magnolii stwierdzono także fitoplazmę z grupy proliferacji jabłoni (16SrX-A) - ‘Ca. Phytoplasma mali’. W badanych roślinach fitoplazmy występowały nierównomiernie i w stosunkowo niskiej koncentracji, przez co mogły być wykrywalne dopiero w drugiej rundzie PCR. W roślinach buka i dębu, mimo wyraźnych symptomów, nie wykryto obecności fitoplazmatycznego DNA.
Pierwsza strona wyników Pięć stron wyników wstecz Poprzednia strona wyników Strona / 2 Następna strona wyników Pięć stron wyników wprzód Ostatnia strona wyników
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.