Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników

Znaleziono wyników: 32

Liczba wyników na stronie
Pierwsza strona wyników Pięć stron wyników wstecz Poprzednia strona wyników Strona / 2 Następna strona wyników Pięć stron wyników wprzód Ostatnia strona wyników

Wyniki wyszukiwania

Wyszukiwano:
w słowach kluczowych:  Bacteroides fragilis
help Sortuj według:

help Ogranicz wyniki do:
Pierwsza strona wyników Pięć stron wyników wstecz Poprzednia strona wyników Strona / 2 Następna strona wyników Pięć stron wyników wprzód Ostatnia strona wyników
The Gram-negative facultative anaerobe Bacteroides fragilis (B. fragilis) constitutes an appreciable proportion of the human gastrointestinal (GI)‑tract microbiome. As is typical of most Gram-negative bacilli, B. fragilis secretes an unusually complex mixture of neurotoxins including 2 extremely pro-inflammatory species: (i) a B. fragilis‑associated lipopolysaccharide BF‑LPS; and (ii) a B. fragilis-derived proteolytic enterotoxin known as fragilysin (EC 3.4.24.74). BF‑LPS has recently been shown to be associated with the periphery of neuronal nuclei in sporadic Alzheimer’s disease (AD) brain; and the extracellular zinc metalloprotease fragilysin (i) induces endogenous E-cadherin cleavage thereby disrupting cell-cell adhesion and the GI‑tract‑blood barrier (GTBB); and (ii) promotes the generation of the inflammatory transcription factor NF‑kB (p50/p65 complex) in human neuronal‑glial cells in primary culture. In turn, the NF‑kB (p50/p65 complex) strongly induces the transcription of a small family of pro-inflammatory microRNAs (miRNAs) including miRNA‑9, miRNA‑34a, miRNA‑125b, miRNA‑146a, and miRNA‑155. These ultimately bind with the 3’‑untranslated region (3’‑UTR) of several target messenger RNAs (mRNAs) and thereby reduce their expression. Down‑regulated mRNAs include those encoding complement factor-H (CFH), an SH3-proline-rich multi domain-scaffolding protein of the postsynaptic density (SHANK3), and the triggering receptor expressed in myeloid/microglial cells (TREM2), as is observed in sporadic AD brain. Hence, a LPS and an enterotoxic metalloprotease normally confined to the GI tract are capable of driving a disruption in the GI-tract-blood barrier and a NF-kB-miRNA-mediated deficiency in gene expression that contributes to alterations in synaptic-architecture and synaptic-deficits, amyloidogenesis, innate-immune defects, and progressive inflammatory signaling, all of which are characteristic of AD‑type neurodegeneration. This paper will review the most recent research which supports the concept that bacterial components of the GI-tract microbiome such as BF-LPS and fragilysin can transverse normally protective biophysical barriers and contribute to AD‑type changes. For the first‑time, these results indicate that specific GI-tract microbiome-derived neurotoxins have a strong pathogenic potential in disrupting the GI-tract blood barrier and eliciting alterations in NF-kB-miRNA-directed gene expression that drive the AD process.
Four B. fragilis strains were studied nonenterotoxigenic (NTBF) and three enterotoxigenic (ETBF). Endotoxin and enterotoxin which are released into the culture medium during the growth of strains were detected. Cultures in BHI broth were incubated for 48 hours at 37ºC. After 4, 8, 16, 24 and 48 hours of cultivation, samples of bacterial culture were colleted and the optical density was measured. Then the samples were centrifuged, supernatans were filtered through 0.45 um filters and concentrated three times with 5000 D ultrafilters. Prepared samples were kept frozen at 71ºC until use. The presence of endotoxin in samples was revealed by means of immunoelectroprecipitation (IEP) and immunoenzymatic test (dot-ELISA). The assays were performed with antibacterial rabbit immune sera. The activity of enterotoxin was detected on a human colon adenocarcinoma cell line HT 29/C1. The results of the study indicate that endotoxin is released spontaneously by nonenterotoxigenic IPL E 323 strain into the culture medium at the early stages of cultivation. The presence of endotoxin is not demonstrated by means of immunoelectroprecipitation in culture filtrated of ETBF strains. Trace amounts or endotoxin are revealed with dot-ELISA. The activity of enterotoxin is detected after 16 hours of incubation of ETBF strains.
The aim of this study was the evaluation of LAL test with chromogenic substrate usefulness for the quantitative detection of B. fragilis endotoxin and the determination of the amount of endotoxin in culture filtrates of the strains of this species. Also, the trial was undertaken to determine the influence of clindamycin un endotoxin release from B. fragilis rods to the culture medium. Four B. fragilis strains were examined: one nonenterutoxigenic (NTBF) and three enterotoxigenic (ETBF). The growth of cultures was determined and endotoxin liberated to the culture medium during growth of strains was detected. BHI broth and BHI broth with addition of sub inhibitory doses (sub-MIC) of clindamycin were applied. Bacterial cultures were incubated for 48 hours at 37°C. Samples of bacterial cultures were collected after 4, 8, 16, 24 and 48 hours of cultivation, and the optical density was measured. Then the samples were centrifuged, supenatants were filtered through 0.45 µm filters and concentrated three times with 5000 D ultrafilters. Prepared samples were kept frozen at -70°C until used. The amount of endotoxin in samples was determined using quantitative LAL test with chromogenic substrate S- 2423. The results of the experiments indicate that LAL, test is the useful method for determination of B. fragilis endotoxin concentration. This endotoxin activates the enzymatic system present in Limulus polyphemus amcbocyte lysate. Endotoxin is shed spontaneously by B. fragilis rods to the culture medium during growth. Clindamycin at subinhibitory concentrations (sub-MIC) inhibits the growth of cultures of examined strains. The antibiotic caused increase in endotoxin amount in culture medium.
Four B. fragilis strains were examined: one nonenterotoxigenic (NTBF) and three producing enterotoxin (ETBF). The growth of cultures was determined and enterotoxin, which is released to the culture medium during growth of strains, was detected. BHI broth and BHI broth with addition of subinhibitory doses (sub-MIC) of clindamycin were applied. Bacterial cultures were incubated at 37°C for 48 hours. After 4, 8, 16, 24, 48 hours of cultivation, samples of bacterial cultures were collected and the optical density was measured. Then the samples were centrifuged, supernatants were filtered through 0,45 µm filters and concentrated three times with 5000 D uItrafiIters. Prepared samples were kept frozen at -70°C until used. The titre of enterotoxin in samples was determined on human colon adenocarcinoma cell line HT 29/C1. Neutralization assay was performed with culture filtrates, which were enterotoxin-positive and with rabbit anti-enterotoxin serum. The results of the experiments indicate that enterotoxin is detected after 16 hours of incubation of ETHF strains. Clindamycin at subinhibitory concentrations (sub-MIC) inhibits the growth of B. fragilis cultures. The antibiotic causes also delay and decrease in enteriotoxin production by ETBF strains.
Gram-negative anaerobic rods isolated in The Netherlands and Poland from extraintestinal and intestinal sources were identified as Bacteroides fragilis (n = 210) on the basis of Gram staining, growth on selective Bacteroides Bile Esculine medium as black colonies, and biochemical characteristics. PCR-mediated assessment of the presence of the B. fragilis enterotoxin (fragilysin) gene in all strains identified 12 so-called enterotoxin-positive B. fragilis (ETBF) strains (15%) among the Dutch strains and 16 ETBF among the Polish strains (13%). NotI Pulsed Field Gel Electrophoresis (PFGE) analysis revealed that these strains are genetically heterogeneous. Among the Dutch strains an identical pair and a set of four indiscriminate strains were identified. This suggests that limited nosocomial spread of ETBF can be observed. However, there was no identity obeserved when strains from The Netherlands were compared to their Polish counterparts. The antimicrobial susceptibility testing revealed that one Polish strain isolated from a patient with antibiotic associated diarrhoeae (AAD) was simultaneously highly resistant to clindamycin and cefoxitin (MIC >256 mg/L). Two other strains appeared to be clindamycin resistant. All resistant strains had different PFGE patterns, suggesting that resistance development occurred at independent occassions.
Zbadano adhezję ludzkich granulocytów i limfocytów T do komórek śródbłonka naczyniowego linii HMEC-1 stymulowanych za pomocą endotoksyny (LPS) i enterotoksyny (BFT) B. fragilis. Stwierdzono przyleganie granulocytów oraz limfocytów T spoczynkowych i aktywowanych PMA do komórek endotelialnych po stymulacji endotoksyną i enterotoksyną B. fragilis. Aktywność obu toksyn B. fragilis w procesie stymulacji adhezji leukocytów do śródbłonka naczyniowego jest mniejsza od aktywności LPS E. coli O55:B5.
W przedstawionej pracy badano wpływ metronidazolu na stymulację ekspresji cząsteczek adhezyjnych: ICAM-1, VCAM-1 i E-selektyny na komórkach śródbłonka naczyniowego linii HMEC-1 przez lipopolisacharydy izolowane z jednego nieenterotoksynotwórczego (NTBF) i trzech enterotoksynotwórczych (ETBF) szczepów Bacteroides fragilis oraz enterotoksynę (fragilizynę) wytworzoną przez szczep B. fragilis ATCC 43858. Stwierdzono, że metronidazol wpływa na ekspresję cząsteczek adhezyjnych na komórkach linii HMEC-1. Komórki śródbłonka stymulowane przy pomocy preparatów LPS i enterotoksyny szczepów B. fragilis wykazują nieznacznie wyższą ekspresję ICAM-1 niż te, na które podziałano preparatami LPS i metronidazolem. Metronidazol podwyższa ekspresję VCAM-1 na komórkach linii HMEC-1 stymulowanej przez LPS i enterotoksynę B. fragilis. Wpływ metronidazolu i preparatów bakteryjnych na indukcję selektyny E jest zróżnicowany.
Badano próbki kału pobrane od sześćdziesięciorga dzieci z klinicznym rozpoznaniem biegunki poantybiotykowej. Toksynotwórcze szczepy C. difficile wyhodowano z trzydziestu próbek kału (50%), natomiast enterotoksynotwórcze szczepy B. fragilis wyhodowano z czterech próbek kału (6,7 %). W trzech przypadkach zaobserwowano występowanie w tej samej próbce zarówno toksynotwórczego szczepu C. difficile jak i enterotoksynotwórczego szczepu B. fragilis. Wykazano występowanie enterotoksynotwórczych szczepów B. fragilis w przewodzie pokarmowym dzieci z biegunką poantybiotykową oraz możliwość współwystępowania toksynotwórczych szczepów C. difficile i enterotoksynotwórczych szczepów B. fragilis (ETBF).
Przedmiot badań stanowiły lipopolisacharydy wyekstrahowane z ośmiu referencyjnych i dwóch klinicznych szczepów grupy B. fragilis (BFG). Biolo#giczną aktywność preparatów LPS oznaczono przy użyciu fotometrycznego testu BET (poprzednio LAL). Aktywność lipopolisacharydów pochodzących z pałeczek rodzaju Bacteroides porównano z aktywnością LPS E. coli O55:B5. Największy aktywnością w reakcji z odczynnikiem LAL odznaczały się lipopolisacharydy tych gatunków pałeczek BFG, które są ważne z klinicznego punktu widzenia - B. fragilis i B. thetaiotaomicron.
Badano wpływ klindamycyny na stymulację powstawania cząsteczek adhezyjnych: ICAM-1, VCAM-1 i E-selektyny na komórkach śródbłonka naczyniowego linii HMEC-1 przez lipopolisacharydy izolowane z jednego nieenterotoksynotwórczego (NTBF) i trzech enterotoksynotwórczych (ETBF) szczepów Bacteroides fragilis oraz enterotoksynę (fragilizynę) wytworzoną przez szczep Bacteroides fragilis ATCC 43858. Stwierdzono, że klindamycyna wpływa na powstawanie cząsteczek adhezyjnych na komórkach linii spoczynkowej. Komórki stymulowane preparatami LPS Bacteroides fragilis wykazują obniżenie aktywności ICAM-1 po zadziałaniu klindamycyną. Klindamycyna podwyższa nieznacznie ICAM-1 w reakcjach po stymulacji preparatami fragilizyny. Klindamycyna podwyższa ekspresję VCAM-1 i E selektyny na komórkach linii HMEC-1 stymulowanej LPS i enterotoksyną Bacteroides fragilis.
W próbkach różnych materiałów pobranych od koni poszukiwano entero- toksyno-twórczych szczepów Bacteroides fragilis (ETBF). Z badanych materiałów wyhodowano siedem szczepów B. fragilis. Do wykrywania fragmentu genu enterotoksyny (fragilizyny) zastosowano łańcuchową reakcję polimerazy (PCR) z użyciem starterów 404 i 407. Jako szczepów kontrolnych użyto szczepu enterotoksynotwórczego B. fragilis NCTC 11295 oraz nieenterotoksynotwórczego (NTBF) szczepu IPL 323. Obecność genu fragilizyny stwierdzono w dwóch szczepach. Udowodniono, że wśród szczepów izolowanych od koni można wykryć enterotoksynotwórcze szczepy B. fragilis.
Pierwsza strona wyników Pięć stron wyników wstecz Poprzednia strona wyników Strona / 2 Następna strona wyników Pięć stron wyników wprzód Ostatnia strona wyników
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.