The effect of air freeze drying on the content of flavonoids, beta-carotene and organic acids in European dog rose hips [Rosa L. sect. Caninae DC. em. Christ.]

• Autorzy: Adamczak A , Buchwald W. , Zielinski J. , Mielcarek S.

Warianty tytułu

PL

Wplyw suszenia powietrznego i sublimacyjnego na zawartosc flawonoidow, beta-karotenu i kwasow organicznych w pseudoowocach roz z sekcji Caninae DC. em. Christ.

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

This paper presents the results of a study on the effect of air drying (at a room temperature) and freeze drying on the content of flavonoids, β-carotene and organic acids in total weight of hips (hypanthia and achenes) of roses from the section of Caninae DC. em. Christ. The obtained results show a significant effect of drying conditions on the content of β-carotene and organic acids. In the lyophilized material more organic acids were found, but less β-carotene, than in the rose hips dried at a room temperature. The largest differences were noted in the case of ascorbic acid. Its content in the lyophilizates was on average 5 times higher than in the air-dried hips and it was on average as much as 1.225 g/100 g of dry weight (DW). The amount of citric acid was higher by only 10%, on average. Large differences were also found for β-carotene. Its content in the freeze-dried material, compared to the air-dried rose hips, was on average lower by 74 mg/100 g DW (43%). In the case of flavonoids, the obtained results were ambiguous.

PL

W niniejszym artykule przedstawiono wyniki badań dotyczących wpływu suszenia powietrznego (w temperaturze pokojowej) i sublimacyjnego na zawartość flawonoidów, β-karotenu i kwasów organicznych w całkowitej masie owoców rzekomych (hypancjach i niełupkach) róż z sekcji Caninae DC. em. Christ. Uzyskane wyniki wskazują na istotny wpływ warunków suszenia na zawartość β-karotenu i kwasów organicznych. W surowcu poddanemu liofilizacji występowało więcej kwasów organicznych, a mniej β-karotenu, niż w owocach pozornych suszonych w temperaturze pokojowej. Największe różnice odnotowano w przypadku kwasu askorbowego. Jego zawartość w liofilizatach była przeciętnie ponad 5-krotnie większa niż w pseudoowocach róż suszonych powietrznie i wynosiła średnio aż 1.225 g/100 g suchej masy (s.m.). Odpowiednio ilość kwasu cytrynowego była przeciętnie większa jedynie o 10%. Duże różnice stwierdzono także dla β-karotenu. Jego zawartość w surowcu liofilizowanym, w stosunku do owoców rzekomych suszonych powietrznie, była niższa średnio o 74 mg/100 g s.m. (43%). W przypadku flawonoidów uzyskane wyniki były niejednoznaczne.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2010
• Tom: 56
• Numer: 1
• Opis fizyczny: p.7-18,fig.,ref.

Twórcy

autor

Adamczak A

• Institute of Natural Fibres and Medicinal Plants, Libelta 27, 61-707 Poznan, Poland

autor

Buchwald W.

autor

Zielinski J.

autor

Mielcarek S.

Bibliografia

• 1. Gao X, Uggla M, Rumpunen K. Antioxidant activity of dried and boiled rose hips. Acta Hort 2005; 690:239-43.
• 2. Novruzov EN, Shamsizade LA. Closed-loop processing technology for rose hips. Acta Hort 2005; 690:269-76.
• 3. Olsson ME, Andersson S, Werlemark G, Uggla M, Gustavsson KE. Carotenoids and phenolics in rose hips. Acta Hort 2005; 690:249-52.
• 4. Nowak R. Badania fitochemiczne wybranych gatunków z rodzaju Rosa L. Analiza biologicznie aktywnych składników. Lublin. AM, 2006:1-186.
• 5. Buchwald W, Zieliński J, Mścisz A, Adamczak A, Mrozikiewicz PM. Aktualny stan i perspektywy badań róż owocowych w Polsce. Herba Pol 2007; 53(1):85-92.
• 6. Kozłowski J, Buchwald W, Forycka A, Szczyglewska D. Rośliny i surowce lecznicze. Podstawowe wiadomości z zakresu zielarstwa. Poznań. IWNiRZ, 2009:12-16.
• 7. Nartowska J. Róże a zdrowie. Wiad Ziel 1985; 27(2):7-8.
• 8. Nowak R. Natura – niedoceniane źródło witaminy C. Post Fitoter 2003; 2(11):24-8.
• 9. Erentürk S, Gülaboğlu MS, Gültekin S. Influence of some processing parameters on drying kinetics of rose hips. Acta Hort 2005; 690:261-8.
• 10. Kobus M, Włodarczyk M, Pogorzelski E, Dziugan P, Laskowska J. Koncentraty z dzikiej róży (Rosa rugosa) otrzymane różnymi metodami. Folia Univ Agric Stetin Scientia Alimentaria 2005; 246(4):205-16.
• 11. Kozłowski J. Róże i ich zastosowanie w lecznictwie. Cz. III. Wiad Ziel 1988; 30(7):17-19.
• 12. Jaroniewski W. Owoc róży – cennym surowcem witaminowym. Wiad Ziel 1992; 34(8):1-2.
• 13. Ochmańska A, Wasek M, Wawer I. Badanie składu i własności antyutleniających preparatów z dzikiej róży. Farm Pol 2001; 14:753.
• 14. Padayatty SJ, Levine M. New insights into the physiology and pharmacology of vitamin C. Can Med Assoc J 2001; 164:353-5.
• 15. Mowszowicz J. Róże w lecznictwie. Wiad Ziel 1978; 20(11):13-14.
• 16. Feng C. Antagonistic effect of Rosa davurica Pall juice on cancer. Acta Nutr Sin 1993; 15:87-92.
• 17. Trovato A, Monforte MT, Forestieri AM, Pizzimenti F. In vitro anti-mycotic activity of some medicinal plants containing flavonoids. Boll Chim Farm 2000; 139(5):225-7.
• 18. Yoshizawa Y, Kawaii S, Mimako U, Fukase T, Sato T, Murofushi N et al. Differentiation-inducing effects of small fruit juices on HL-60 leukemia cells. J Agric Food Chem 2000; 48:3177-82.
• 19. Kumarasamy Y, Cox PJ, Jaspars M, Nahar L, Sarker SD. Screening seeds of Scottish plants for antibacterial activity. J Ethnopharm 2002; 83(1-2):73-7.
• 20. Larsen E, Kharazmi A, Christensen LP, Christensen SB. An antiinflammatory galactolipid from rose hip (Rosa canina L.) that inhibits chemotaxis of human peripheral blood neutrophils in vitro. J Nat Prod 2003; 66:994-5.
• 21. Gao X, Björk L, Trajkovski V, Uggla M. Evaluation of antioxidant activities of rose hip ethanol extracts in different test systems. J Sci Food Agric 2000; 80:2021-27.
• 22. Moure A, Franco D, Sineiro J, Domínguez H, Núnez MJ, Lema JM. Antioxidant activity of extracts from Gevuina avellana and Rosa rubiginosa defatted seeds. Food Res Internat 2001; 34:103-9.
• 23. van Rensburg CJ, Erasmus E, Loots DT, Oosthuitzen W, Jerling JC, Kruger HS et al. Rosa roxburghii supplementation in a controlled feeding study increases plasma antioxidant capacity and glutathione redox state. Eur J Nutr 2005; 44:452-7.
• 24. Farmakopea Polska. 3th ed. Warszawa. PZWL, 1954:277-9.
• 25. Farmakopea Polska. 4th ed. Tom II. Warszawa. PZWL, 1970:247-8.
• 26. Zieliński J. Rodzaj Rosa L. – Róża. Flora Polski. Rośliny naczyniowe. Tom V. Warszawa-Kraków. PWN, 1987:1-49.
• 27. Popek R. Biosystematyczne studia nad rodzajem Rosa L. w Polsce i krajach ościennych. Kraków. Wyd. Naukowe WSP, 1996:1-199.
• 28. Werlemark G, Nybom H. Skewed distribution of morphological character scores and molecular markers in three interspecific crosses in Rosa section Caninae. Hereditas 2001; 134:1-13.
• 29. Lim KY, Werlemark G, Matyasek R, Bringloe JB, Sieber V, Mokadem HE et al. Evolutionary implications of permanent odd polyploidy in the stable sexual, pentaploid of Rosa canina L. Heredity 2005; 94:501-6.
• 30. Ritz CM, Schmuths H, Wissemann V. Evolution by reticulation: European dogroses originated by multiple hybridization across the genus Rosa. J Heredity 2005; 96(1):4-14.
• 31. Strålsjö L, Alklint C, Olsson ME, Sjöholm I. Total folate content and retention in rosehips (Rosa ssp.) after drying. J Agric Food Chem 2003; 51(15):4291-5.
• 32. Erentürk S, Gülaboğlu MS, Gültekin S. The effects of cutting and drying medium on the vitamin C content of rosehip during drying. J Food Eng 2005; 68(4):513-8.
• 33. Erentürk S, Gülaboğlu MS, Gültekin S. Vitamin C degradation of rose hips during drying and effects of drying medium on vitamin C degradation. Acta Hort 2005; 690:303-10.
• 34. Nojavan S, Khalilian F, Kiaie FM, Rahimi A, Arabanian A, Chalavi S. Extraction and quantitative determination of ascorbic acid during different maturity stages of Rosa canina L. fruit. J Food Comp Anal 2008; 21:300-5.
• 35. United States Pharmacopeia-National Formulary (USP 25/NF20). United States Pharmacopeial Convention Inc., 2002:2534-5.
• 36. Farmakopea Polska. 6th ed. Warszawa. Wyd. PTFarm, 2002:150.
• 37. de Quirós AR-B, Costa HS. Analysis of carotenoids in vegetable and plasma samples: A review. J Food Comp Anal 2006; 19:97-111.
• 38. StatSoft Inc. STATISTICA (data analysis software system), version 7.1. 2005. www.statsoft.com.
• 39. Kuźnicka B, Dziak M. Zioła i ich stosowanie. Historia i współczesność. Warszawa. PZWL, 1987:139-41.
• 40. Dziemitko E, Sypniewska E. Doświadczenia suszarnicze Bydgoskich Zakładów Zielarskich „Herbapol”. Wiad Ziel 1977; 19(3):6-9.
• 41. Elbanowska E. Suszenie i przechowywanie surowców zielarskich. Poznań. IRiPZ, 1994:1-53.
• 42. Perera CO. Selected quality attributes of dried foods. Drying Techn 2005; 23:717-30.
• 43. Nartowska J. Zbieramy owoce lecznicze. Wiad Ziel 1990; 32(9):11-14.
• 44. Razungles A, Oszmianski J, Sapis JC. Determination of carotenoids in fruits of Rosa sp. (Rosa canina and Rosa rugosa) and of chokeberry (Aronia melanocarpa). J Food Sci 1989; 54(3):774-5.
• 45. Böhm V, Fröhlich K, Bitsch R. Rosehip – a „new” source of lycopene? Mol Asp Med 2003; 24:385-9.
• 46. Chen HE, Peng HY, Chen BH. Stability of carotenoids and vitamin A during storage of carrot juice. Food Chem 1996; 57(4):497-503.
• 47. Rao PPG, Satyanarayana A, Rao DG. Effect of storage on the stability of water soluble annatto dye formulation in a simulated orange-RTS beverage model system. Lebensm-Wiss u-Technol 2002; 35(7):617-21.
• 48. Regier M, Mayer-Miebach E, Behsnilian D, Neff E, Schuchmann HP. Influences of drying and storage of lycopene-rich carrots on the carotenoid content. Drying Techn 2005; 23:989-98.
• 49. Szterk A, Lewicki PP. Stabilność karotenoidów w żywności. Przem Spoż 2009; 6:16-20.
• 50. Woodall AA, Lee SW-M, Weesie RJ, Jackson MJ, Britton G. Oxidation of carotenoids by free radical: relationship between structure and reactivity. BBA General Subjects 1997; 1336(1):33-42.
• 51. Kondratowicz J, Burczyk E, Janiak M. Liofilizacja jako sposób utrwalania żywności. Chłodnictwo 2009; 44(1-2):58-61.
• 52. Hammami C, Rene F. Determination of freeze-drying process variables for strawberries. J Food Eng 1997; 32(2):133-54.
• 53. Ratti C. Hot air and freeze-drying of high-value foods: a review. J Food Eng 2001; 49:311-19.
• 54. Woźnica A, Lenart A. Właściwości fizyczne suszonej sublimacyjnie żywności. Post Tech Przetw Spoż 2005; 15(1):17-20.