Indukcja i namnażanie kalusa w kulturach in vitro lędźwianu siewnego (Lathyrus sativus L.) odmiany "Derek"

• Autorzy: Piwowarczyk B. , Pindel A.

Warianty tytułu

EN

Callus induction and proliferation in in vitro culture of grasspea (Lathyrus sativus L.) "Derek"

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Lędźwian siewny jest mało znaną w Polsce, grubonasienną rośliną strączkową, charakteryzującą się dużą zawartością białka w nasionach. Spośród innych roślin strączkowych wyróżnia się niezwykłą tolerancją na rodzaj i pH gleby oraz odpornością na suszę i choroby. Zaniedbany jednakże przez hodowców lędźwian wymaga poprawienia pewnych niekorzystnych cech, takich jak: duża podatność na wyleganie, niezdeterminowany charakter wzrostu czy substancje o charakterze antyżywieniowym. Pomocne w tworzeniu nowych odmian tego gatunku mogą się okazać techniki in vitro. W badaniach oceniano wpływ: rodzaju eksplantatu (korzenie, międzywęźla, ogonki liściowe), warunków prowadzenia kultury (światło, ciemność) oraz chitozanu na indukcję i wzrost kalusa. Po około 15 dniach kultury kalus pojawił się na wszystkich rodzajach eksplantatów zarówno na świetle, jak i w ciemności. Największy przyrost masy tkanki kalusowej obserwowano na pożywce zarówno z dodatkiem, jak i bez chitozanu na międzywęźlach kultywowanych na świetle.

EN

Grasspea is a grain legume with high content of protein in seeds. It is not well known in Poland. It shows high tolerance to the type kind and pH of soils as well as resistance to drought and diseases that is extraordinary among legumes. Neglected by plants breeders grasspea needs improving some undesirable features such as: prostrate plant habit, indeterminate growth and antinutritional substances in seeds. In vitro techniques may be helpful in creating new varieties of this species. The influence of different explants (roots, internodes, petioles), culture conditions (light, dark) and chitosan on the induction and proliferation of callus was investigated. The induction of callus took place after 15 days of culture in light or in dark. The biggest increase in the weight of callus was observed on the internodes in the medium both with and without chitosan cultivated in light.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2009
• Tom: 534
• Opis fizyczny: s.223-229,tab.,wykr.,fot.,bibliogr.

Twórcy

autor

Piwowarczyk B.

• Katedra Botaniki, Uniwersytet Rolniczy im.H.Kołłątaja w Krakowie, al.29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Pindel A.

Bibliografia

• Barka E.A., Eullaffroy P., Clement C., Vernet G. 2004. Chitosan improves development, and protects Vitis vinifera L. against Botrytis cinerea. Plant Cell Rep. 22: 608-614.
• Campbell C.G., Mehra R.B., Agrawal S.K., Chen Y.Z., Abd El Moneim A.M., Khawaja H.I.T., Yadov C.R., Tay J.U., Araya W.A. 1994. Current status and future strategy in breeding grasspea (Lathyrus sativus). Euphytica 73: 167-175.
• Cichy H., Rybiński W. 2007. Ocena zdolności plonowania wybranych mutantów lędźwianu siewnego (Lathyrus sativus L.) w doświadczeniach polowych. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 522: 177-185.
• Gharyal P.K., Maheshwari S.C. 1983. Genetic and physiological influences on differentiaion in tissue cultures of a legume, Lathyrus sativus. Theor. Appl. Genet. 66: 123-126.
• Jain S.M. 2001. Tissue culture-derived variation in crop improvement. Euphytica 118: 153-166.
• Limpanavech, P., Chaiyasuta, S., Vongpromek, R., Pichyangkura, R., Khunwasi, C., Chadchawan, S., Lotrakul, P., Bunjongrat, R., Chaidee, A., and Bangyeekhun T. 2008. Chitosan effects on floral production, gene expression, and anatomical changes in the Dendrobium orchid. Scientia Horticulturae 116: 65-72.
• Milczak M., Pedzinski M., Mnichowska H., Szwed-Urbas K., Rybiński W. 2001. Creative breeding of grasspea (Lathyrus sativas L.) in Poland. Lathyrus Lathyrism Newsletter 2: 85-88.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 18: 100-127.
• Nge K.L., New N., Chandrkrachang S., Stevens W.F. 2006. Chitosan as a growth stimulator in orchid tissue culture. Plant Sci. 170: 1185-1190.
• Roy P.K., Barat G.K., Mehta S.L. 1992. In vitro plant regeneration from callus derived from root explants of Lathyrus sativus. Plant Cell, Tiss. and Organ. Cult. 29: 135-138.
• Rybiński W. 2003. Mutagenesis as a tool for improvement of traits in grasspea (Lathyrus sativus L.). Lathyrus Lathyrism Newsletter 3: 27-31.
• Rybiński W., Pietruszewski S., Kornarzyński K. 2005. Wpływ synergistycznych traktowań polem magnetycznym i chemomutagenem (MNU) na zmienność cech struktury plonu lędźwianu siewnego (Lathyrus sativus L.). Acta Agrophysica 5(1): 137-147.
• Uddin A.F.M.J., Hashimoto F., Shimizu K., Sakata Y. 2004. Monosaccharides and chitosan sensing in bud growth and petal pigmentation in Eustoma grandiflorium (Raf.) Shinn. Sci. Horti. 100: 127-138.
• Uthairatanakij A., Teixeira da Silva J.A., Obsuwan K. 2007. Chitosan for improving orchid production and quality. Orchid Science and Biotechnology 1: 1-5.
• Zambre M., Chowdhury B., Kuo Y.-H., Van Montagu M., Angenon G., Lambein F. 2002. Prolific regeneration of fertile plants from green nodular callus induced from meristematic tissues in Lathyrus sativus L. (grass pea). Plant Science 163: 1107-1112.

Uwagi

PL

Rekord w opracowaniu