Effect of ethanol extract of Graptophyllum pictum (L.) Griff. on cisplatin induced nephrotoxicity in rats

• Autorzy: Srinivasan K.K. , Mathew J. E. , Joseph K. , Vachala S. D. , Malini S.

Warianty tytułu

PL

Wpływ wyciągu alkoholowego z Graptophyllum pictum (L.) na działanie cisplatyny wywołującej nerfotoksyczność u szczurów

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The purpose of the present study is to investigate whether the alcoholic extract of Graptophyllum pictum (L.) Griff. could decrease the intensity of nephrotoxicity in albino rats. Cisplatin at a single dose of 12 mg/kg body weight was administered intraperitonially to albino male Wistar rats. Nephrotoxicity was assessed by determining the serum creatinine and urea levels as well as renal antioxidant status in rats after cisplatin administration. Ethanolic extract of G. pictum at 150 and 300 mg/kg body weight was administered orally after cisplatin injection for 15 days. The extracts could significantly reduce the elevated serum creatinine and urea levels. Renal antioxidant defence systems, such as superoxide dismutase, catalase, glutathione peroxidase activities and reduced glutathione level, depleted by cisplatin therapy were restored to normal by treatment with the extract. Cisplatin induced lipid peroxidation was also found markedly reduced by treatment with the extract. This result indicated that ethanolic extract of G. pictum rendered significant preventive effect against cisplatin induced nephrotoxicity.

PL

Celem niniejszej pracy było zbadanie właściwości wyciągu alkoholowego z Graptophyllum pictum (L.) zmniejszającej nefrotoksyczność indukowaną cisplatyną u szczurów. Cisplatynę podawano szczurom dootrzewnowo w pojedynczej dawce w ilości 12 mg/kg masy ciała. Nefrotoksyczność oceniono na podstawie określenia stężenia kreatyniny w surowicy, poziomu mocznika, a także aktywności przeciwutleniającej nerek u szczurów. Wyciąg alkoholowy z G. pictum podawano dożołądkowo w dawkach od 150 do 300 mg/kg masy ciała przez 15 dni po uprzednim podaniu cisplatyny. Wykazano, że podawanie ekstrakty mogą istotnie obniżyć stężenie mocznika i kreatyniny podwyższone przez cisplatynę. Ponadto podawanie cisplatyny wywołało zaburzenia w działaniu dysmutazy ponadtlenkowej, kata65 Effect of ethanol extract of Graptophyllum pictum (L.) Griff. on cisplatin induced nephrotoxicity in rats lazy, peroksydazy glutationowej, powodując zaburzenia mechanizmów obronnych nerek oraz obniżenie poziomu glutationu, natomiast ich prawidłowe funkcjonowanie zostało przywrócone po podaniu ekstraktu. Badanie również wykazało, że wzrost poziomu peroksydacji tłuszczów wywołany za pomocą cisplatyny zostaje znacznie zmniejszony w wyniku podawania ekstraktu. Przedstawione wyniki badań wskazują na prewencyjne działanie wyciągu alkoholowego otrzymanego z G. pictum przeciwko nefrotoksyczności indukowanej cisplatyną.

Słowa kluczowe

EN

ethanol extract; Graptophyllum pictum; antioxidant; cisplatin; nephrotoxicity; rat

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2011
• Tom: 57
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.51-65,fig.,ref.

Twórcy

autor

Srinivasan K.K.

• Department of Pharmaceutical Chemistry, Manipal College of Pharmaceutical Sciences, Manipal University, Manipal 576 104, Karnataka, India

autor

Mathew J. E.

autor

Joseph K.

autor

Vachala S. D.

autor

Malini S.

Bibliografia

• 1. Perry LM. Medicinal plants of East and South-East Asia; Attributed Properties and Uses MIT press, Cambridge, United States and London 1980:2.
• 2. Kasahara YS, Mangunkawatjia S. Medicinal Herb index in Indonesia, P. T. Eisai Indonesia 1986:318.
• 3. Yukihiro O, Setsuko S, Soekieni S, Masatoshi H. Anti-inflammatory effect of Graptophyllum pictum (L.) Griff. Chem Pharm Bull 1989; 37(10):2799-802.
• 4. Stella OOD, Grace EU, Herbert ABC, Samuel AA. Oxytocic and anti-implantation activities of the leaf extracts of Graptophyllum pictum (Linn.) Griff. (Acanthaceae). African Journal of Biotechnology 2009; 8 (21):5979-84.
• 5. Leibbrandt ME, Wolfgang GH, Metz AL, Ozobia AA, Haskins JR. Critical subcellular targets of cisplatin and related platinum analogs in rat renal proximal tubule cells. Kidney Int 1995; 48:761-70.
• 6. Kaushal GP, Kaushal V, Hong X, Shah SV. Role and regulation of activation of caspases in cisplatin induced injury to renal tubular epithelial cells. Kidney Int 2001; 60:1726-36.
• 7. Sugiyama S, Hayakawa M, Kato T, Hanaki Y, Shimizu K, Ozawa T. Adverse effects of anti-tumor drug, cisplatin on rat kidney mitochondria: Disturbances in glutathione peroxidase activity. Biochem Biophys Res Commun 1989; 159:1121-27.
• 8. Matsushima H, Yonemura K, Ohishi K, Hishida A. The role of oxygen free radicals in cisplatin induced acute renal failure in rats. J Lab Clin Med 1998; 131:518-26.
• 9. Baliga R, Liu H. Activation of caspase 12 by cisplatin (CP) induced endoplasmic reticulum (ER) stress mediates apoptosis in LLC-PK1 cells. Am Soc Nephro 2004; l15:39.
• 10. Atessahin A, Yilmaz S, Karahan I, Ceribasi AO, Karaoglu A. Effects of lycopene against cisplatin-induced nephrotoxicity and oxidative stress in rats. Toxicology 2005; 212:116-23.
• 11. Sadzuka Y, Shoji T, Takino Y. Effect of cisplatin on the activities of enzymes which protect against lipid peroxidation. Biochem Pharmacol 1992; 43:1872-75.
• 12. Ohkawa H, Ohishi N, Yagi K. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem 1979; 95:351-58.
• 13. Sedlak J, Lindsay RH. Estimation of total protein-band and nonprotein sulfhydryl group in tissue with Ellman’s reagent. Anal Biochem 1968; 25:192-205.
• 14. Beauchamp C, Fridovich I. Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. Anal Biochem 1971; 44:276-87.
• 15. Aebi H. Catalase in vitro Methods. Enzymol 19984; 105:121-25.
• 16. Hafeman DG, Sunde RA, Hoekstra WG. Effect of dietary selenium on erythrocyte and liver glutathione peroxidase in the rat. J Nutr 1974; 104:580-87.
• 17. Borch RF. The platinum antitumor drugs. In metabolism and action of anticancer drugs (G. Powis and R.A. Proum. Eds.), Taylor and Francis, London 1987: 163-93.
• 18. Devipriya S, Shamala D. Protective effects of quercetin in cisplatin-induced cell injury in the rat kidney. Ind J Pharmacol 1999; 3:422-2619. Dobyn DC, Levi J, Jacobs C, Kosek J, Weiner MW. Mechanism of cisplatinum nephrotoxicity: Morphologic observations. J Pharmacol Exp Ther 1980; 213:551-56.
• 19. Dobyn DC, Levi J, Jacobs C, Kosek J, Weiner MW. Mechanism of cis-platinum nephrotoxicity: Morphologic observations. J Pharmacol Exp Ther 1980; 213; 551-56.
• 20. Kim YH, Kim YW, Oh YJ, Back NI, Chung SA, Chung HG. Protective effect of the ethanolic extract of the roots of Brassica rapa on cisplatin induce nephrotoxicity in LLC-PK1 cells and rats. Biol Pharm Bull 2006; 29:2436-2441.
• 21. Safirstein R, Miller P, Guttenplan JB. Uptake and metabolism of cisplatin by rat kidney. Kidney Int 1984; 25:753-58.
• 22. Ishikawa M, Takayanagi Y, Sasaki K. Enhancement of cisplatin toxicity by buthionine sulfoximine, a glutathione depleting agent in mice. Res Commun Chem Pathol Pharmacol 1990; 67:131-41.
• 23. Uslu R, Bonavida B. Involvement of the mitochondrion respiratory chain in the synergy achieved by treatment of human ovarian carcinoma cell lines with both tumor necrosis factor-alpha and cisdiamminedichloroplatinum. Cancer 1996; 77:725-32.
• 24. Sharma RP. Interactions of cisplatin with cellular zinc and copper in liver and kidney tissues. Pharmac l Res Commun 1985; 17:197-206.
• 25. Maliakel DM, Kagiya TV, Nair CK. Prevention of cisplatin-induced nephrotoxicity by glucosides o ascorbic acid and alpha-tocopherol. Exp Toxicol Pathol 2008; 60:521-27.