Wpływ regulatorów wzrostu na formowanie zarodków somatycznych narcyza (Narcissus L.) "Actaea" w kulturach kalusa namnażanego na pożywkach stałych i płynnych

• Autorzy: Malik M. , Stawiarz B. , Warchol M.

Warianty tytułu

EN

The effect of growth regulators on narcissus (Narcissus L.) "Actaea" somatic embryos formation in cultures of callus multiplicated on solid and liquid media

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Określono wpływ regulatorów wzrostu na formowanie zarodków somatycznych narcyza ‘Actaea’ w kulturach kalusa embriogenicznego, namnażanego na pożywkach płynnych i stałych. Do doświadczenia wykorzystano 4 linie kalusa o różnym pochodzeniu (eksplantat, pożywka inicjalna). Kalus kultywowano przez 4 tygodnie w pożywkach płynnych (I etap), a następnie przez 24 tygodnie na pożywkach stałych (II etap). Kontrolę stanowiły kultury prowadzone przez 28 tygodni na pożywkach stałych. W I etapie doświadczenia zastosowano pożywki namnażające o składzie identycznym z inicjalnymi, zawierające wyższe stężenia Picloramu niż BA. W II etapie wykorzystano pożywki namnażające oraz regeneracyjną zawierającą 0,5 μM NAA i 5 μM BA. Po I etapie najwięcej zarodków somatycznych notowano w kulturach kalusa embriogenicznego uzyskanego na fragmentach pędów pod wpływem 25 μM Picloramu i 5 μM BA oraz zalążni pod wpływem 10 μM Picloramu i 1 μM BA. Po II etapie doświadczenia nie obserwowano wpływu pochodzenia kalusa na liczbę tworzących się zarodków. Obniżenie zawartości auksyny w pożywce wpłynęło pozytywnie na proces formowania i dojrzewania zarodków. Więcej dojrzałych zarodków otrzymano na pożywce regeneracyjnej niż namnażającej, zawierającej wysokie stężenie Picloramu. Czterotygodniowy etap na pożywce płynnej stymulował w II etapie doświadczenia przyrost biomasy na pożywce regeneracyjnej oraz dojrzewanie zarodków na pożywkach namnażających.

EN

The effect of growth regulators on narcissus ʻActaeaʼ somatic embryos formation in cultures of embryogenic callus multiplicated on solid and liquid media, was determined. Four lines of callus of different origin (explant, initial medium) were taken for the experiment. Calluses were cultured for 4 weeks in liquid media (I stage) and then for 24 weeks on solid media (II stage). The control cultures were maintained for 28 weeks on solid media. For the I stage of the experiment proliferation media identical to the initial media, containing more Picloram than BA, were used. For the II stage proliferation or regeneration (0.5 μM NAA and 5 μM BA) media were taken. After the I stage the highest number of somatic embryos was noted in embriogenic callus obtained on flower stem explants under the influence of 25 μM Picloram and 5 μM BA as well as on ovary explants under the influence of 10 μM Picloram and 1 μM BA. After the II stage of experiment the effect of callus origin on somatic embryos number was not observed. Decrease of auxin in the medium stimulated somatic embryos formation and maturation. More mature embryos were obtained on regeneration medium than on proliferation media with high concentration of Picloram. The 4-week liquid medium treatment resulted during the II stage of experiment in biomass increase on regeneration and in somatic embryos maturation on proliferation medium.

Słowa kluczowe

PL

embriogeneza somatyczna; hodowla roslin; kalus embriogenny; kultury kalusow; Narcissus; narcyz; narcyz Actaea; pozywki plynne; pozywki stale; regulatory wzrostu; rosliny cebulowe; zarodki somatyczne

EN

somatic embryogenesis; plant breeding; embryogenic callus; callus culture; Narcissus; Actaea cultivar; liquid medium; solid medium; growth regulator; bulbous plant; somatic embryo

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2009
• Tom: 539
• Numer: 2
• Opis fizyczny: s.449-455,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Malik M.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Uniwersytet Rolniczy im.H.Kołłątaja w Krakowie, al.29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Stawiarz B.

autor

Warchol M.

Bibliografia

• Bach A. 1998. Interaction between type of tissue and growth regulators in somatic embryogenesis of hyacinth. Acta Physiol. Plant. 20(3): 15.
• Chen L., Zhu X., Gu L., Wu J. 2005. Efficient callus induction and plant regeneration from anther of Chinese narcissus (Narcissus tazetta L. var. chinensis Roem). Plant Cell Rep. 24: 401-407.
• Howes M.J.R., Perry N.S.L., Houghton P.J. 2003. Plants with traditional uses and activities, relevant, to the managements of Alzheimer’s disease and other cognitive disorders. Phytother. Res. 17: 1-18.
• Jimenez V.M., Bangerth F. 2001. Endogenous hormone concentrations and embryogenic callus development in wheat. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 67: 37-46.
• Lilien-Kipnis H., Azizbekova N., Ziv M. 1994. Scaled-up proliferation and regeneration of Nerine in liquid cultures. Part II. Ontogeny of somatic embryos and bulblet regeneration. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 39: 117-123.
• Malik M. 2008. Comparison of different liquid/solid culture systems in the production of somatic embryos from Narcissus L. ovaiy explanls. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 94: 337-345.
• Malik M., Bach A. 2004. Wpływ regulatorów wzrostu na indukcję kalusa embriogenicznego w kulturach narcyza (Narcissus L.) odmiany ‘Carlton’. Folia Univ. Agric. Stetin., Agricultura 236: 115-118.
• Malik M., Molenda A. 2008. Formowanie zarodków somatycznych narcyza (Narcissus L.) z tkanki kalusowej w systemie okresowego zalewania pożywką RITA" oraz na pożywce stałej. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 525: 237-243.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
• Ooi L.S., Wang H., Ng T.B., Ooi V.E. 1998. Isolation and characterisation of mannosebinding lectin from leaves of Chinese daffodil Narcissus tazetta. Biochem. Cell Biol. 76: 601-608.
• Ptak A., Bach A. 2007. Somatic embryogenesis in tulip (Tulipa gesneriana L.) flower stem cultures. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 43: 35-39.
• Sage D.O., Lynn J., Hammatt N. 2000. Somatic embryogenesis in Narcissus pseudonarcissus cvs. Gold Harvest and St. Keverne. Plant Sci. 150: 209-216.
• Sage D.O., Schroeder M.B. 2002. Growth and development of nodular callus of Narcissus pseudonarcissus cvs in temporary immersion ‘Rita’ bioreactors. Abstracts of the 1st international symposium on liquid systems for in vitro mass propagation of plants, Norway, 29 V-2 VI 2002: 112-113.
• Selles M., Viladomat F., Bastida J., Codina C. 1999. Callus induction, somatic embryogenesis and organogenesis in Narcissus confusus: correlation between the state of differentation and the content of galanthamine and related alkaloids. Plant Cell Rep. 18: 646-651.