PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2004 | 12 | 2 |

Tytuł artykułu

Artificial gynogenesis in common bream (Abramis brama (L.)) induced by cold-temperature shock

Warianty tytułu

PL
Kontrolowana gynogeneza u leszcza (Abramis brama (L.)) wywołana zastosowaniem szoku termicznego zimnego

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
Bream, Abramis brama (L.), eggs fertilized with genetically inactivated sperm (UV irradiation dose of 1920 J m-2) were exposed to thermal cold shock to produce meiotic gynogenotes. The shock was applied at one-minute intervals from 1 to 10 min after egg insemination. The temperature of the shock was 2.0 ± 0.1°C, and its duration was 45 min. The water temperature prior to the shock was 20.0°C. Eggs fertilized with genetically inactivated sperm (putative haploids) exhibited retarded and abnormal development. The yield of gynogenesis was relatively low, except for the group to which the shock was applied 1 min after fertilization (about 30% in comparison with the controls). Ninety fish from the control and gynogenetic groups were reared for ten months. The survival of the gynogenetic bream was twofold lower than that of the controls. The gynogenotes were highly variable in size and exhibited some morphological abnormalities. The sex ratios in the control groups were close to 1:1, whereas all the gynogenotes were female.
PL
Oocyty leszcza (Abramis brama (L.)) zostały zaplemnione genetycznie inaktywowanym nasieniem (promieniowanie UV; dawka 1920 J m⁻²) (rys. 1) i poddane działaniu szoku termicznego zimnego, w celu otrzymania mejotycznych gynogenotów. Szok był stosowany od 1 do 10 min (w odstępach wynoszących 1 min) od momentu aktywacji ikry. Temperatura i czas szoku wynosiły odpowiednio 2,0 ± 0,1°C i 45 min. Temperatura inkubacji ikry przed poddaniem jej działaniu szoku wynosiła 20,0°C. Ikra zaplemniona inaktywowanym genetycznie nasieniem wykazywała rozwój charakterystyczny dla osobników haploidalnych, w tym charakterystyczną deformację ciała (syndrom haploidalny). Wydajność procesu gynogenezy była relatywnie niska, z wyjątkiem grup poddanych działaniu szoku w 1 min od aktywacji (około 30% w porównaniu z kontrolą) (rys. 2). 90 ryb gynogenetycznych i kontrolnych było podchowywanych przez trzy miesiące. W tym okresie przeżywalność gynogenotów była dwukrotnie niższa niż ryb kontrolnych (tab. 1). Ryby gynogenetyczne wykazywały znacznie większe zróżnicowanie w rozmiarach ciała (rys. 3) niż ryby kontrolne. Stosunek płci u ryb kontrolnych wynosił w przybliżeniu 1:1, podczas gdy wszystkie gynogenetyczne ryby okazały się samicami (rys. 4).

Wydawca

-

Rocznik

Tom

12

Numer

2

Opis fizyczny

p.133-143,fig.,ref.

Twórcy

  • Department of Lake and River Fisheries, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-718 Olsztyn, Poland
  • The Stanislaw Sakowicz Inland Fisheries Institute in Olsztyn, Poland
  • The Stanislaw Sakowicz Inland Fisheries Institute in Olsztyn, Poland
autor
  • Department of Environmental Biotechnology, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-718 Olsztyn, Poland
autor
  • Department of Environmental Biotechnology, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-718 Olsztyn, Poland
  • Department of Lake and River Fisheries, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-718 Olsztyn, Poland
autor
  • Department of Lake and River Fisheries, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-718 Olsztyn, Poland
autor
  • Department of Lake and River Fisheries, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-718 Olsztyn, Poland

Bibliografia

  • Cherfas N.B., Kozinsky O., Rothbard S., Hulata G. 1990 - Induced diploid gynogenesis and triploidy in ornamental (koi) carp, Cyprinus carpio L. I. Experiments on the timing of temperature shock - Bamidgeh 42: 3-9.
  • Chourrout D. 1984 - Pressure induced retention of second polar body and suppression of first cleavage in rainbow trout: production of all-triploids, all-tetraploids, and heterozygous and homozygous diploid gynogenetics - Aquaculture 36:111-126.
  • Flajshans M. 1998 - Genome manipulations in fish - Czech J. Anim. Sci. 43:387.
  • Goudie C.A., Simco B.A., Davis K.B., Liu Q. 1995 - Production of gynogenetic and polyploid catfish by pressure-induced chromosome set manipulation - Aquaculture 133:185-198.
  • Jankun M., Kucharczyk D., Woznicki P., Kotik A. 1997 - Chromosome study of Abramis brama (L.) from Lake Kortowskie, Poland - Cytobios 90:175-179.
  • Jankun M., Woznicki P., Majewska G. 1998 - Chromosome banding studies in bream (Abramis brama) - Czech J. Anim. Sci. 43:391.
  • Kaastrup P., Horlyck V. 1987 - Development of single method to optimize the conditions for producing gynogenetic offspring, using albino rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, females as an indicator for gynogenesis - J. Fish Biol. 31: 29-33.
  • Kim S.D., Jo J.Y., Lee T.Y. 1994 - Induction of triploidy in mud loach (Misgurnus mizolepis) and its effect on gonad development and growth - Aquaculture 120: 263-270.
  • Komen J., Duynhouwer J., Richter C.J.J., Huisman E.A. 1988 - Gynogenesis in common carp (Cyprinus carpio L.). I. Effects of genetic manipulation of sexual products and incubation conditions of eggs - Aquaculture 69: 227-239.
  • Kucharczyk D. 1996 - Genome engineering in bream, Abramis brama (L.) - Ph. D. Thesis, Olsztyn University of Agriculture & Technology, Olsztyn, Poland. 93 pp. (in Polish).
  • Kucharczyk D., Jankun M., Luczynski M. 1997a -Ploidy level determination in genetically manipulated bream, Abramis brama L., based on the number of active nucleoli per cell - J. Appl. Aquacult. 7(2): 13-21.
  • Kucharczyk D., Kujawa R., Luczynski M., Glogowski J., Babiak I., Wyszomirska E. 1997b - Induced spawning in bream, Abramis brama (L.), using carp pituitary extract and hCG - Aquacult. Res. 28:139-144.
  • Kucharczyk D., Luczynski M.J., Jankun M., Luczynski M. 1996b - Preliminary observations on the induction of triploidy in Abramis brama by cold shock - Cytobios 88:153-160.
  • Kucharczyk D., Luczynski M., Kujawa R., Czerkies P. 1997c - Effect of temperature on embryonic and larval development of bream (Abramis brama L.) - Aquat. Sci. 59: 214-224.
  • Kucharczyk D., Luczynski M.J., Luczynski M., Babiak I., Glogowski J. 1996a - Genetic inactivation of bream (Abramis brama) sperm with UV irradiation - Cytobios 86: 211-219.
  • Kucharczyk D., Luczynski M.J., Luczynski M., Glogowski J., Babiak I., Jankun M. 1997d - Triploid and gynogenetic breams (Abramis brama L.) produced by heat shock - Pol. Arch. Hydrobiol. 44:33-38.
  • Linhart O., Kvasnicka P., Slechtova V., Pokorny J. 1986 - Induced gynogenesis by retention of the second polar body in the common carp, Cyprinus carpio L., and heterozygosity of gynogenetic progeny in transferrin and Ldh-B¹ loci - Aquaculture 54: 63-67.
  • Nagy A., Rajki K., Horvath L., Csanyi V. 1978 - Investigation on carp, Cyprinus carpio L. gynogenesis - J. Fish Biol. 13:215-224.
  • Ojima Y., Makino S. 1978 - Triploidy induced by cold shock in fertilized eggs of the carp. A preliminary study - Proc. Japan Acad. 54:359-362.
  • Piferrer F., Benfey T.J., Donaldson E.M. 1994 - Gonadal morphology of normal and sex-reversal triploid and gynogenetic diploid coho salmon (Oncorhynchus kisutch)- J. Fish Biol. 45: 541-553.
  • Quillet E., Chevassus B., Devoux A. 1988 - Timing and duration of hatching in gynogenetic, triploid, tetraploid and hybrid progenies in rainbow trout - Genet. Sel. Evol. 20:199-210.
  • Quillet E., Gaingnon J. L. 1990 - Thermal induction of gynogenesis and triploidy in Atlantic salmon (Salmo salar) and their potential interest for aquaculture - Aquaculture 89: 351-364.
  • Rudek Z. 1974 - Karyological investigations of two forms of Vimba vimba (Linnaeus, 1758) occurring in Poland - Folia Biol. 22: 211-215.
  • Stanley J.G. 1976 - Production of hybrid, androgenetic, and gynogenetic grass carp and carp - Trans. Am. Fish. Soc. 105:10-16.
  • Stanley J.G., Martin J.M., Jones J.B. 1975 - Gynogenesis as a possible method for producing monosex grass carp (Ctenopharyngodon idella) - Prog. Fish-Cult. 37: 25-26.
  • Ueno K., Arimoto B. 1982 - Induction of triploids in Rhodeus ocellatus ocellatus by cold shock treatment of fertilized eggs - Experientia 38:544-546.
  • Varadaraj K. 1990 - Production of diploid Oreochromis mossambicus gynogens using heterologous sperm of Cyprinus carpio - Indian J. Exp. Biol. 28: 701-705.
  • Varadaraj K. 1993 - Production of viable haploid Oreochromis mossambicus gynogens using UV - irradiated sperm - J. Exp. Zool. 267: 460-467.
  • Vujosevic M., Zizkovic S., Rimsa D., Jurisic S., Cakic P. 1983 - The chromosomes of 9 fish species from Dunav basin in Yugoslavia - Acta Biol. Jugosl. 15: 29-40.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.dl-catalog-b4fc56b2-2c05-41bb-9868-85fb8e0b2a40
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.