Indukcja somatycznej embriogenezy oraz kierunek morfogenezy w kulturach narcyza (Narcissus L.) "Carlton" w zależności od rodzaju eksplantatu inicjalnego

• Autorzy: Malik M. , Bach A.

Warianty tytułu

EN

Somatic embryogenesis induction and morphogenesis direction in narcissus culture (Narcissus L.) of "Carlton" depending on the initial explant type

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Fragmenty pędów i zalążni izolowane z cebul niechłodzonych i chłodzonych narcyza ‘Carlton’ wykładano na pożywki inicjalne zawierające zawierające auksynę (A): Picloram lub 2,4-D w stężeniu 10-100 µM oraz cytokininę (C): BA w stężeniu 0,5-50 µM. Regulatory wzrostu zastosowano w następujących proporcjach: A > C oraz A = C. Na wszystkich eksplantatach niezależnie od rodzaju i pochodzenia obserwowano formowanie żółtego nodularnego kalusa. Proces ten zależał od proporcji auksyny i cytokininy w pożywce. Rodzaj i pochodzenie eksplantatu miał wpływ na intensywność formowania kalusa oraz na kierunek morfogenezy w kulturach uzyskanego kalusa. Najwięcej kalusa otrzymano w kulturach fragmentów podstawy pędu izolowanych z cebul niechłodzonych oraz kulturach fragmentów dolnej i wierzchołkowej części zalążni izolowanych z cebul chłodzonych. Różnicowanie zarodków somatycznych odbywa się głównie w obrębie kalusa zaindukowanego na fragmentach wierzchołkowej części pędu i zalążni, natomiast formowanie korzeni przybyszowych zachodzi w obrębie kalusa inicjowanego na fragmentach podstawy zalążni oraz na eksplantatach pochodzących ze środkowej części pędu.

EN

Shoot and ovary pieces isolated from chilled and unchilled bulbs of narcissus ‘Carlton’ were put on initial media containing auxin (A): Picloram or 2,4-D at the concentration of 10-100 µM and cytokinin (C): BA at the concentration of 0,5-50 µM. Growth regulators were used in the following proportions: A > C and A = C. On the surface of all explants, yellow nodular callus formation was observed. The process depended on the proportion of growth regulators in medium. Explant type and origin affected the intensity of callus formation as well as direction of morphogenesis in callus culture. The highest amount of callus was obtained in the culture of lower part of shoot explants isolated from unchilled bulbs and in the culture of lower and upper part of ovary explants taken from chilled bulbs. Differentiation into somatic embryos took place mainly within the callus inducted on the upper part of shoot and ovary explants, whereas the adventitious root development in the callus initiated on the lower part of ovary explants as well as on explants originated from middle part of shoot.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2010
• Tom: 551
• Opis fizyczny: s.175-181,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Malik M.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Uniwersytet Rolniczy im.H.Kołłątaja, Al.29 listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Bach A.

Bibliografia

• Alderson P.G., Rice R.D. 1986. Propagation of bulbs from floral stem tissues, w: Plant tissue culture and its agricultural applications. Whiters L.A., Alderson P.G. (Ed.) Butterworths: 91-97.
• Chen L., Zhu X., Gu L., Wu J. 2005. Efficient callus induction and plant regeneration from anther of Chinese narcissus (Narcissus tazetta L. var. chinensis Roem). Plant Cell Rep. 24: 401-407.
• De Hertogh A.A., Le Nard M. 1993. The Physiology of Flower Bulbs. Elsevier. Amsterdam, The Netherlands: 632 ss.
• De Munk W.J. 1979. Influence of plant growth regulators on the development of bulbous plants with special reference to organ relationships. Acta Hort. 91: 207-213.
• Hanks G.R., Rees A.R. 1977. Stem elongation in tulip and narcissus: the influence of floral organs and growth regulators. New Phytol. 78: 579-591.
• Hosoki T., Asahira T. 1980. In vitro propagation of Narcissus. HortSci. 15(5): 602-603.
• Jimenez V.M., Bangerth F. 2001. Endogenous hormone concentrations and embryogenic callus development in wheat. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 67: 37-46.
• Joung H.Y., Pask B.K., Yu C.J. 1997. Effect of growth regulators, chilling treatment and light on adventitious shoots differentiation by in vitro scape culture of Narcissus pseudo-narcissus L. RDA J. Hort. Sci. 39(1): 82-88.
• Kozak D. 1991. Shoots regeneration from various parts of Narcissus cv. Carlton through tissue culture. Prace Instyt. Sadown. i Kwiac., Seria B 16: 41-47.
• Malik M., Bach A. 2004. Wpływ regulatorów wzrostu na indukcję kalusa embriogenicznego w kulturach narcyza (Narcissus L.) odmiany ʻCarltonʼ. Folia Univ. Agric. Stetin. 2004, Agricultura 236(94): 115-118.
• Malik M., Bach A. 2005. Induction of somatic embryogenesis in Narcissus L. ‘Carlton’ ovary culture. Quality enhancement of plant production through tissue culture. COST 843 Final Conference, 28.06-3.07.2005 Stara Lesna, Slovakia: 179-181.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
• Okubo H. 1992. Dormancy in bulbous plants. Acta Hort. 325: 35-41.
• Sage D.O., Lynn J., Hammatt N. 2000. Somatic embryogenesis in Narcissus pseudonarcissus cvs. Golden Harvest and St. Keverne. Plant Sci. 150: 209-216.
• Saniewski M., Kawa-Miszczak L. 1992. Hormonal control of growth and development of tulips. Acta Hort. 325: 43-54.
• Selles M., Viladomat F., Bastida J., Codina C. 1999. Callus induction, somatic embryogenesis and organogenesis in Narcissus confusus: correlation between the state of differentation and the content of galanthamine and related alkaloids. Plant Cell Rep. 18: 646-651.
• Slabbert M.M., De Bruyn M.H., Ferreira D.I., Pretorius J. 1995. Adventitious in vitro plantlet formation from immature floral stems of Crinum macowanii. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 43(1): 51-57.
• Taeb A.G., Alderson P.G. 1987. Micropropagation of tulip: optimising shoot production from floral stem explants. Acta Hort. 212: 677-681.
• Ziv M., Lilien-Kipnis H. 2000. Bud regeneration from inflorescence explants for rapid propagation of geophytes in vitro. Plant Cell Rep. 19(9): 845-850.

Uwagi

PL

Rekord w opracowaniu