The effect of 6-benzylaminopurine, thidiazuron and the type of explants on in vitro propagation of Yucca elephantipes Regel

• Autorzy: Kozak D.

Warianty tytułu

PL

Wpływ 6-benzyloaminopuryny, tidiazuronu i rodzaju eksplantatu na rozmnażanie Yucca elephantipes Regel in vitro

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Yucca elephantipes is an important commercial ornamental pot plant, excellent for growing in flats, patios or winter gardens. Traditional vegetative propagation of the most decorative yuccas is complicated due to a very low rate of propagation, so in vitro culture is an alternative method for commercial propagation of these plants. The influence of BA (0.4, 2.2, 4.4, 11.1, 22.2 µM) and TDZ (0.5, 2.3, 4.5, 11.4, 22.7 µM) on shoot multiplication of Yucca elephantipes Regel on Murashige and Skoog (MS) medium was studied. Explants cultured on medium without growth substances were used as a control. The two types of explants used in the experiment: shoot tips and nodal segments of shoots, were obtained from aseptically grown shoot clusters. When comparing regeneration capability of 2 types of Yucca elephantipes explants, it was found that more newly formed shoots and roots were obtained from nodes. The highest formation of shoots was obtained from nodes on MS medium supplemented with 4.5 µM TDZ or 11.1 and 22.2 µM BA (6.5, 6.0, 5.8, respectively). The shoots regenerated from nodes showed best elongation. On the control medium and on the media with the lowest level of BA or TDZ, their average length was 31.0–37.8 mm. The growth regulator-free medium and the media with a low level of BA were the most effective in inducing roots.

PL

Juka słoniostopa (Yucca elephantipes) jest cenną rośliną pojemnikową do mieszkań, patio, a także do ogrodów zimowych. Tradycyjna metoda rozmnażania wegetatywnego większości gatunków ozdobnych juki jest mało wydajna, stąd zastosowanie metody kultur in vitro stwarza duże możliwości zwiększenia współczynnika mnożenia przy produkcji tych roślin na skalę masową. Badano wpływ BA (0,4; 2,2; 4,4; 11,1; 22,2 µM) i TDZ (0,5; 2,3; 4,5; 11,4; 22,7 µM) na namnażanie pędów Yucca elephantipes Regel na pożywce Murashige’a i Skooga (MS). Eksplantaty rosnące na pożywce bez regulatorów wzrostu stanowiły kontrolę. Pobrano dwa rodzaje eksplantatów: wierzchołki pędów i odcinki węzłowe, które pochodziły z kultur sterylnych. Porównując zdolności regeneracyjne eksplantatów Yucca elephantipes, stwierdzono, że więcej nowych pędów i korzeni regenerowało z odcinków węzłowych. Najlepszą regenerację pędów uzyskano z odcinków węzłowych na pożywkach z dodatkiem 4,5 µM TDZ lub 11,1 i 22,2 µM BA (6,5; 6,0; 5,8, odpowiednio). Pędy uzyskane z węzłów wykazywały lepszy wzrost elongacyjny. Na pożywce kontrolnej oraz w obecności niższych stężeń BA lub TDZ ich średnia długość wynosiła 31,0-37,8 mm. Najsilniejszą indukcję korzeni obserwowano na pożywce kontrolnej oraz przy dodatku BA w niskim stężeniu.

Słowa kluczowe

EN

6-benzylaminopurine; thidiazuron; explant type; in vitro propagation; Yucca elephantipes; propagation; ornamental plant; Agavaceae

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Scientiarum Polonorum. Hortorum Cultus
• Rocznik: 2010
• Tom: 09
• Numer: 3
• Opis fizyczny: p.211-219,fig.,ref.

Twórcy

autor

Kozak D.

• Institute of Ornamental Plants and Landscape Architecture, University of Life Sciences in Lublin, 58 Leszczynskiego Str. 20-068 Lublin, Poland

Bibliografia

• Arce-Montoya M., Hernandez-Gonzalez J.A., Rodrigues-Alvares M., Robert M.L., 2007. No corelation between the growth of in vitro cultured of Yucca valida clones and the growth of their mother plants in the field. Plant Cell Tiss. Organ Cult. Plant 88, 35-40.
• Arce-Montoya M., Rodrigues-Alvares M., Hernandez-Gonzalez J.A., Robert M.L., 2006. Micropropagation and field performance of Yucca valida. Plant Cell Rep. 25, 777-783.
• Atta-Alla H., Staden Van J., 1997. Micropropagation and establishment of Yucca aloifolia. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 48, 209-212.
• Atta-Alla H.K., Zaghloul M., Waly A.K., Ascar F.M., 1997. In vitro shoot proliferation, rooting and establishment of Yucca aloifolia, Y. filamentosa, and Y. filamentosa var. Variegata. Ann. Agric. Sci. Moshtohor. 35 (2), 915-934.
• Bentz S.E., Parliman B.J., Talbott H-J., Ackerman W.L., 1988. Factors affecting in vitro propagation of Yucca glauca. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 14, 111-120.
• Bettaieb T., Mhamdi M., Hajlaoui I., 2008. Micropropagation of Nolina recurvata Hemsl.: P-cyclodextrin effects on rooting. Sci. Hort. 117 (4), 366-368.
• Binth L.T., Muoi L.T., Oanth H.T.K., Thang R.D., Phong D.T., 1990. Rapid propagation of Agave by in vitro tissue culture. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 23, 67-70.
• Chukwujekwu J.C., Fennell C.W., Van Staden J.,. 2002. Optimisation of the tissue culture protocol for the endangered Aloepolyphylla. South African J. Bot. 68 (4), 424-429.
• Karpov P., 2004. Clonal propagation of Yucca aloifolia L. Acta Univ. Latviensis, Biol. 675, 177-182.
• Murashige T., Skoog S., 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco cultures. Physiol. Plant., 15, 473-497.
• Osorio-Rosales M.L., Mata-Rosas M., 2005. Micropropagation of endemic and endangered Mexican species of ponytail palms. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 40 (5), 1481-1484.
• Pierik R.L.M., Steegmans H.H.M., 1983.Vegetative propagation of a chimerical Yucca elephantipes Regel in vitro. Sciencia Hort. 21, 261-272.
• Ray T., Saha P., Roy S.C., 2006. Commercial production of Cordyline terminalis (L) Kunth. from shoot apex meristem and assessment for genetic stability of somaclones by isozyme markers. Scientia Hort. 108, 289-294.
• Richwine A.M., Tipton J.L., Thompson G.A., 1996. Micropropagation of Hesperaloe paviflora. In vitro Cell. and Develop. Biol.-Plant. 4, 262-266.
• Rosales M.S.D., Solis A.G.A., Mendez N.L.V., Balch E.P.M., 2008. Effect of cytokinins on the in vitro propagation of Mexican agaves. Revista Fitotecnia Mexicana 31 (4), 317-322.
• Sakr S.S., El-Khateeb M.A., Abd-El-Kareim A.H., 1999. In vitro production of Yucca elephantipes. Bull. of Faculty of Agric. Univ. Cairo. 50 (2), 265-282.
• Santacruz-Ruvalcaba F., Gutierrez-Pulido H., Rodriguez-Garay B., 1999. The efficient in vitro propagation of Agaveparrasana Berger. Plant Cell Tiss. Organ Cult. 56 (3), 163-167.