PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2010 | 554 |

Tytuł artykułu

Wykrywanie wirusa liściozwoju czereśni w orzechu włoskim

Warianty tytułu

EN
Detection of Cherry leaf roll virus in walnut

Języki publikacji

PL

Abstrakty

PL
Jednym z ważnych gospodarczo patogenów orzecha włoskiego jest wirus liściozwoju czereśni (Cherry leaf roll virus, CLRV). Patogen jest sprawcą choroby objawiającej się nekrozą miejsca szczepienia podkładki z odmianą szlachetną oraz zamieraniem gałęzi i całych drzew. Próby liści zebrane z drzew różnych odmian i klonów orzecha włoskiego rosnących w kolekcji odmian Instytutu Sadownictwa i Kwiaciarstwa oraz uprawianych amatorsko w kilku rejonach kraju przetestowano na obecność CLRV przy użyciu metod ELISA i RT-PCR. W 13 spośród 30 badanych drzew orzecha włoskiego potwierdzono obecność wirusa testem ELISA przeprowadzonym w dwóch terminach - w czerwcu i w lipcu. Wyższe odczyty absorbancji w teście ELISA uzyskiwano w pierwszym z tych terminów. Wykazano przydatność techniki „one-step RT-PCR” do wykrywania CLRV w orzechu włoskim i większą czułość tej metody, w porównaniu z testem ELISA. Właściwości biologiczne siedmiu izolatów CLRV (O1, O2, O4, O6, O10, O14 i O15) określono na podstawie reakcji zielnych roślin różnicujących: Chenopodium quinoa, C. amaranticolor, Nicotiana clevelandii, N. benthamiana, N. tabacum ʻWhite Barley’ i ‘Samsun’ oraz Cucumis sativus. Izolaty CLRV różniły się pod względem właściwości biologicznych. Tylko dwa z nich (O1 i O2) wywoływały objawy na roślinach ogórka. Najwcześniej obserwowano symptomy po inokulacji N. tabacum izolatem O1, który ponadto wywoływał na roślinach tego gatunku silniejsze objawy chorobowe w porównaniu z objawami występującymi po zakażeniu pozostałymi izolatami.
EN
The presence of Cherry leaf roll virus in walnut trees was showed using biological tests as well as ELISA and RT-PCR methods. The virus was detected in 13 out of 30 tested trees grown in four different localizations. Higher absorbance data in ELISA were obtained when leaf samples were collected in June, lower - in July. One-Step RT-PCR was an efficient method for detection the virus in walnut trees and more sensitive than ELISA. The studied isolates differed in their biological properties. Only two (O1 and O2) out of seven isolates induced symptoms on Cucumis sativus indicator plants. To our knowledge it is the first report of the occurrence of Cherry leaf roll virus in walnut in Poland.

Wydawca

-

Rocznik

Tom

554

Opis fizyczny

s.27-34,tab.,wykr.,fot.,bibliogr.

Twórcy

  • Instytut Sadownictwa i Kwiaciarstwa im.Szczepana Pieniążka, ul.Pomologiczna 18, 96-100 Skierniewice
autor

Bibliografia

  • Brandte M., Büttner C. 2001. Occurrence, transmission and diagnosis of cherry leaf roll nepovirus - a literature review. Pflanzenschutzberichte 59: 1-19.
  • Buchhop J., von Bargen S., Büttner C. 2009. Differentiation of Cherry leaf roll virus isolates from various host plants by immunocapture-reverse transcription-polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism according to phylogenetic relations. J. Virol. Methods 157: 147-154.
  • Cajza M., Jaśniewicz K. 2009. Bez czarny i bez koralowy - naturalni gospodaize wirusa liściozwoju czereśni. Prog. Plant Protec./Post. Ochrony Roślin 49: 599-602.
  • Clark M.F., Adams A.N. 1977. Characteristics of the microplate method of enzymelinked immunosorbent assay for detection of plant viruses. J. Gen. Virol. 34: 475-483.
  • Cooper J.I. 1980. The prevalence of cherry leaf roll virus in Juglands regia in the United Kingdom. Acta Phytopathol. Acad. Sc. Hung. 15: 139-145.
  • Delbos R., Kerlan C., Dunez J., Lansad M., Dosba F., Germain E. 1983. Virus infection of walnuts in France. Acta Hort. 130: 123-131.
  • Gentkow J., Rebenstorf K., von Bargen S., Büttner C. 2005. Biological and molecular characteristics of Cherry leaf roll virus (CLRV) isolates from different host plants. Symposium on Plant Protection and Plant Health in Europe - Introduction and Spread of Invasive Species, Berlin 2005: 227-228.
  • Jones A.T. 1973. A comparison of some properties of four strains of cheny leaf roll virus. Ann. Appl. Biol. 74: 211-217.
  • Jones A.T. 1985. Cherry leaf roll virus. CM/AAB Description of plant viruses, No. 306.
  • Jones A.T., Koenig R., Lessemann D.-E., Hamacher J., Nienhaus F., Winter S. 1990. Serological comparison of isolates of Cherry leaf roll virus from diseased beech and birch trees in a forest decline area in Germany with other isolates of the virus. J. Phytopathol. 129: 339-344.
  • Kobyłko T. 2000. Występowanie wirusów mozaiki ogórka i liściozwoju czereśni na omiegu kaukaskim (Doronicum caucasicum M. Bieb.). Acta Agr. et Silv. 38: 35-44.
  • Kölber M., Nemeth M., Szentivanyi P. 1982. Routine testing of English walnut mother trees and group testing of seeds by ELISA for detection of cherry leaf roll vims infection. Acta Hort. 130: 161-171.
  • Kumari S. 2009. Detection of cherry leaf roll virus and strawbeny latent ring spot virus by one-step RT-PCR. Plant Protect. Sci. 45: 140-143.
  • Massalski P.R., Cooper J.I. 1984. The location of virus-like particles in the male gametophyte of birch, walnut, cherry naturally infected with CLRV and its relevance to vertical transmission of the virus. Plant Pathology 33: 255-262.
  • Mircetich S.M., Rowhani A. 1984. The relationship of cherry leaf roll virus and blackline disease of English walnut trees. Phytopathology 74: 423-428.
  • Mircetich S.M., Samborn R.R., Ramos D.E. 1980. Natural spread, graft-transmission, and possible etiology of walnut blackline disease. Phytopathology 70: 962-968.
  • Ozturk M.O., Sipahioglu H.M., Ocak M., Ustan M. 2008. Cherry leafroll virus in Juglans regia in the Lake van Basin of Turkey. J. Plant Pathol. 90: 75-79.
  • Pallás V., Rowhani A., Daubert S., Bruening G. 1992. Properties and translation studies of cherry leaf roll virus (CLRV). Acta Hort. 309: 45-54.
  • Rebenstorf K., Candresse T., Dulucq M.J., Büttner C., Obermeier C. 2006. Host species-dependent population structure of a pollen-borne plant virus, cheny leaf roll virus. J. Virology 80: 2453-2462.
  • Rebenstorf K., Gentkow J., Obermeier C., Candresse T., von Bargen S., Büttner C. 2005. Characterization of cherry leaf roll virus (CLRV) isolates from different host plants. Phytomedizin 35: 30-31.
  • Rowhani A., Mircetich S.M. 1988. Pathogenicity on walnut and serological comparisons of cherry leafroll virus strains. Phytopathology 78: 817-820.
  • Rowhani A., Mircetich S.M., Shepherd R.J., Cucuzza J.D. 1985. Serological detection of cherry leafroll virus in English walnut trees. Phytopathology 75: 48-52.
  • Wang S., Gergerich R.C., Wickizer S.L., Kim K.S. 2002. Localization of transmissible and non-transmissible viruses in the vector nematode Xiphinema americanum. Phytopathology 92: 646-653.
  • Werner R., Mülbach H.P., Büttnet C. 1997. Detection of cherry leaf roll nepovirus (CLRV) in birch, beech and petunia by immunocapture RT-PCR using a conserved primer pair. Eur. J. Forest Pathol. 27: 309-318.
  • Zhou Y., Civerolo E.L., Melvin J.A. 1998. Comparative nucleotide sequences of the coat protein-encoding region of the genomes of cherry leafroll virus strains infecting walnut. Acta Hort. 472: 321-329.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.dl-catalog-11b9c513-79c9-4230-ae86-be64d5590e3c
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.