65 years of in vitro culture in Poland

• Autorzy: Zenkteler M. , Zenkteler E.
• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

This paper is a short review of historical development of the tissue culture method in Poland. Similarly to the rest of the world, in vitro technology in Poland has progressed in many directions simultaneously. Its main fields are closely interconnected by natural sequences of biological processes and integrade one into another. The best results, driven by the prospects of practical applications, have been achieved within the areas of meristem culture and micropropagation of valuable genotypes, somaclonal variation, production of haploids and DH plants, somatic embryogenesis, in vitro culture of embryos and ovules, improvement of plant disease resistance, somatic hybridization and transformation of plants. Due to the fact that in vitro domain is a very broad science the authors are aware that this review might not fully cover all the scientists working with tissue culture and their achievements.

Słowa kluczowe

EN

in vitro culture; history; plant tissue; in vitro technology; Poland

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Societatis Botanicorum Poloniae
• Rocznik: 2013
• Tom: 82
• Numer: 3
• Opis fizyczny: p.183-192,ref.

Twórcy

autor

Zenkteler M.

• Institute of Experimental Biology, Adam Mickiewicz University, Umultowska 89, 61-614 Poznan, Poland

autor

Zenkteler E.

• Institute of Experimental Biology, Adam Mickiewicz University, Umultowska 89, 61-614 Poznan, Poland

Bibliografia

• 1. Becker W. Zarys badań nad hodowlą tkanki roślinnej in vitro. Kosmos. 1934;25:44–56.
• 2. Czosnowski J. Charakterystyka fizjologiczna trzech typów tkanek Vitis vinifera: normalnej, tumora bakteryjnego (crown-gall) i tumora chemicznego, hodowanych in vitro. Pr Kom Biol Pozn Tow Przyj Nauk.1952;13:189–208.
• 3. Czosnowski J. Metabolism of excised embryos of Lupinus luteus L. I. Effect of metabolic inhibitors and growth substances on the water uptake. Acta Soc Bot Pol. 1962;31(1):153–152.
• 4. Czosnowski J. Metabolism of excised embryos of Lupinus luteus L. II. The water uptake as influence by external concentration. Acta Soc BotPol. 1962;31(1):683–691.
• 5. Czosnowski J. Metabolism of excised embryos of Lupinus luteus L. III. Comparative study of cultured embryos and normal seedling axes. ActaSoc Bot Pol. 1962;31(1):693–702.
• 6. Rogozińska J. Analiza wpływu substancji rakotwórczych na strukturę i biochemizm tkanek roślinnych hodowanych in vitro [PhD thesis]. Poznań:Adam Mickiewicz University; 1958.
• 7. Rogozińska JH, Helgeson JP, Skoog F. Tests for kinetin-like growth promoting activities of triacanthine and its isomer, 6-(γ,γ- dimethylallylamino)-purine. Physiol Plant. 1964;17(1):165–176. http://dx.doi.org/10.1111/j.1399-3054.1964.tb09029.x
• 8. Rogozińska JH, Bryan PA, Whaley WG. Development changes in the distribution of carbohydrates in the maize root apex. Phytochemistry.1965;4(6):919–924. http://dx.doi.org/10.1016/S0031-9422(00)86269-X
• 9. Rogozińska JH, Gośka M, Kużdowicz A. Induction of plants from anthers of Beta vulgaris cultures in vitro. Acta Soc Bot Pol. 1977;46:471–479.
• 10. Rogozińska JH, Drozdowska L. Występowanie glukozynolanów u rzepaku w kulturach in vitro. Biul IHAR. 1981;145:125–127.
• 11. Allsopp A, Szweykowska A. Foliar abnormalities, including repeated branching and root formation, induced by kinetin in attached leaves of Marsilea.Nature. 1960;186(4727):813–814. http://dx.doi.org/10.1038/186813b0
• 12. Szweykowska A. The effects of kinetin and IAA on shoot development in Funaria hygrometrica and Ceratodon purpureus. Acta Soc Bot Pol.1962;31(3):553–557.
• 13. Leonard NJ, Achmatowicz S, Loeppky RN, Carraway KL, Grimm WA,Szweykowska A, et al. Development of cytokinin activity by rearrangementof 1-substituted adenines to 6-substituted aminopurines: inactivation byN6, 1-cyclization. Proc Natl Acad Sci USA. 1966;56(2):709–716.
• 14. Szweykowska A, Ratajczak W, Schneider J. Studies on the activity of kinetin in cultures of Funaria hygrometrica. I. Bud-inducing activity of kinetinand protein synthesis. Acta Soc Bot Pol. 1968;37(1):145–155.
• 15. Szweykowska A. Regulation of organogenesis in cell and tissue cultures by phytohormones. In: Schütte HR, Gross D, editors. Regulation of developmentalprocesses in plants: Proceedings of the International Conference,Halle, July 1977. Jena: Gusttav Fischer; 1978. p. 219–235.
• 16. Szweykowska A. Hormonal control of protein synthesis in plants. In: Purohit SS, editor. Hormonal regulation of plant growth and development.Dordrecht: Kluwer Academic Publishers; 1985. p. 2–36. (vol 2).
• 17. Rogozińska JH, Maciejewska T, Prusińska U, Szweykowska A. The activity of deaza- and aza-purine analogues of cytokinins in gametophoresinduction in protonema cultures of Funaria hygrometrica. Acta Soc BotPol. 1976;65(3):335–340.
• 18. Woźny A, Szweykowska A. Effect of cytokinins and antibiotics on chloroplast development in cotyledons of Cucumis sativus. Biochem Physiol Pflanz. 1975;168:195–209.
• 19. Zenkteler M, Hildebrandt AC, Cooper DC. Growth in vitro of mature and immature carrot embryos. Phyton. 1961;17:125–128.
• 20. Zenkteler M. Test tube fertilization in Dianthus caryophyllus Linn. Naturwissenschaft. 1965;54:645–646. http://dx.doi.org/10.1007/BF00637702
• 21. Zenkteler M. Test tube fertilization of ovules in Melandrium album Mill. with pollen grains of several species of the Caryophyllaceae family. Experientia.1967;23:775. http://dx.doi.org/10.1007/BF02154172
• 22. Zenkteler M. Sztuczne zapładnianie zalążków i otrzymywanie mieszańców w hodowli in vitro w rodzinie Caryophyllaceae. Pr Kom Biol PTPN.1969;33:59–132.
• 23. Zenkteler M. Test tube fertilization of ovules in Melandrium album Mill. with pollen grains of Datura stramonium L. Experientia. 1970;26:661.http://dx.doi.org/10.1007/BF01898751
• 24. Zenkteler M. In vitro production of haploid plants from pollen grains of Atropa belladonna L. Experientia. 1971;27:187. http://dx.doi.org/10.1007/BF02138897
• 25. Zenkteler M. Development of embryos and seedlings from pollen grains in Lycium halimifolium Mill. in vitro culture. Biol Plant. 1972;14:420–422.http://dx.doi.org/10.1007/BF02932983
• 26. Zenkteler M, Stefaniak B. Induction of androgenesis in anthers of Hordeum vulgare cultured in vitro on leaves and calluses. Plant Sci Lett.1982;26:219–225. http://dx.doi.org/10.1016/0304-4211(82)90094-3
• 27. Zaklukiewicz K. Otrzymywanie ziemniaków wolnych od wirusów poprzez kultury tkanek. Biul Inst Ziemn. 1971;7:69–77.
• 28. Zaklukiewicz K, Sekrecka D. Mikrorozmnażanie jako metoda przygotowania wolnych od porażenia materiałów wyjściowych dla hodowlizachowawczej ziemniaka. Hod Rośl Nasien. 1994;4-5:21–28.
• 29. Turska E. Znaczenie mikrobulw w produkcji ziemniaka w Polsce. Ziemn Pol. 1995;4:21–25.
• 30. Zaklukiewicz K, Sekrecka D. Kolekcja in vitro (bank genów) odmian ziemniaka jako źródło zdrowych odmian ziemniaka. Ziemn Pol. 1994;4:4–11.
• 31. Strzelczyk-Zyta D, Kryszczuk A, Zimnoch-Guzowska E. Metody utrzymywania zasobów genowych ziemniaka w banku genów IHAR OddziałMłochów. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro,Międzyzdroje 8–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 153.
• 32. Oszkinis W, Lindner Z, Oszkinisowa K. Obtaining of virus free carnation plants (Dianthus caryophyllus L. v. semperflorens flore pleno). Biul IHAR. 1974;3–4:115–123.
• 33. Kowalska A. 33 Występowanie, identyfikacja i zwalczanie chorób wirusowych w Polsce [PhD thesis]. Warsaw: Warsaw University of Life Sciences – SGGW; 1970.
• 34. Kowalska A, Kochman J. Studies on the properties of Carnation mottle virus and Carnation ringspot virus isolated in Poland. J Phytopathol.1972;74(4):329–341. http://dx.doi.org/10.1111/j.1439-0434.1972.tb02588.x
• 35. Zenkteler E. Uwalnianie roślin od wirusów metodą hodowli wierzchołków pędów. In: Zenkteler M, editor. Hodowla komórek i tkanek roślinnych.Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 1984. p. 156–208.
• 36. Zenkteler E, Malepszy S. Kultura merystemów i uwalnianie roślin od wirusów. In: Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific PublishersPWN; 2001. p. 33–42.
• 37. Kukułczanka K. Metoda kultur merystematycznych w produkcji roślin ozdobnych wolnych od chorób wirusowych. Przegl Inf Zieleń Miejska. 1968;1:32–41.
• 38. Kukułczanka K, Paluch B. Zastosowanie peptonu bacutil (peptobak) w hodowli merystematycznej tkanki Cymbidium Sw. Acta Agrobot.1971;24(1):53–62.
• 39. Kukułczanka K, Prędota-Twarda B. Effect of morphactin on differentiation and development of Cymbidium Sw. protocorms cultured in vitro. ActaSoc Bot Pol. 1973;42(2):281–284.
• 40. Kukułczanka K, Kromer K. Restitutive regeneration of Phalaenopsis in vitro cultures. Acta Univ Vratisl. 1984;667(30):1–14.
• 41. Kukułczanka K, Kromer K, Klonowska B, Cząstka B. Wpływ temperatury na przechowywanie kultur Drosera in vitro. Pr OB PAN. 1991;1:63–68.
• 42. Hempel M, Gabryszewska E. Studies of in vitro multiplication of carnation. VI. The influence of some cytokinins on shoot proliferation. Pr InstSadownictwa Kwiaciarstwa w Ski. 1986;8:143–148.
• 43. Gabryszewska E, Hempel M. The influence of cytokinins and auxins on Alstroemeria in tissue culture. Acta Hortic. 1985;167:295–300.
• 44. Podwyszyńska M, Hempel M. The factors influencing acclimatization of Rosa hybrida plants multiplied in vitro to greenhouse conditions. ActaHortic. 1988;226:693–642.
• 45. Gabryszewska E, Marasek A. Wpływ tidiazuronu na wzrost kalusa i regenerację pędów peonii (Paeonia hybrida) in vitro. Zesz Nauk AR W Krakowie. 1997;50:177–181.
• 46. Orlikowska T, Gabryszewska E. In vitro propagation of Acer rubrum cv. ‘Red Sunset’. J Fruit Ornament Plant Res. 1995;3(4):195–204.
• 47. Orlikowska T, Kucharska D, Nowak E, Rojek Z. Influence of silver nitrate on regeneration and transformation of roses. J Appl Genet. 1996;37A:123–125.
• 48. Orlikowska T. Influence of growth regulators and antibiotics on regeneration of Kalanchoe blossfeldiana Poeln in vitro. Biol Bull Poznań. 2001;38:29–34.
• 49. Borkowska B. Zmienność w kulturach in vitro. Wiad Bot. 1995;39(3–4):53–57.
• 50. Podwyszyńska M, Niedoba K, Korbin M, Marasek A. Somaclonal variation in micropropagated tulips determined by phenotype and DNA markers.Acta Hortic. 2006;714:211–219.
• 51. Malepszy S, Śmiech M. Selekcja i testowanie cech w kulturze in vitro. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish ScientificPublishers PWN; 2001. p. 136–143.
• 52. Malepszy S, Niemirowicz-Szczytt K, Przybecki Z. Biotechnologia w genetyce i hodowli roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 1999.
• 53. Skucińska B, Miszke W, Kruczkowska H. Studies on the use of interspecific hybrids in tobacco breeding. Obtaining of fertile hybrids by propagationin vitro. Acta Biol Crac Ser Biol. 1977;20:81–88.
• 54. Malepszy S. Uzyskiwanie roślin w kulturach kalusowych haploidów Nicotiana sylvestris Speg. et Comes in vitro. Acta Biol. 1977;3:9–17.
• 55. Zimny J, Oleszczuk S, Czaplicki AZ, Woś H, Kozdój J, Sowa S, et al. Application of androgenesis in basic research and breeding of cereals. ActaBiol Crac Ser Bot. 2009;51(1 suppl):1–29.
• 56. Ponitka A, Ślusarkiewicz-Jarzina A. Effect of genotype and media composition on embryo induction and plant regeneration from anther culture intriticale. J Appl Genet. 1997;38:253–258.
• 57. Oleszczuk S, Sowa S, Zimny J. Androgenic response to preculture stress in microspore cultures of barley. Protoplasma. 2006;228(1–3):95–100. http://dx.doi.org/10.1007/s00709-006-0179-x
• 58. Laib Y, Szarejko I, Polok K, Małuszyński M. Barley anther culture for doubled haploid mutant production. MBNL. 1996;42:13–15.
• 59. Czaplicki AZ, Pilch J, Zimny J. Androgenesis – a method for using biodiversity in wheat improvement. Biotechnologia. 2012;93(2):221.
• 60. Skrzypek E, Stawicka A, Czyczyło-Mysza I, Pilipowicz M, Marcińska I. Wpływ wybranych czynników na indukcję androgenezy u owsa (Avenasativa L.). Zesz Probl Post Nauk Roln. 2009;534:273–281.
• 61. Nałęczyńska A, Cegielska T. Dihaploid production in Brassica napus L. by in vitro androgenesis. Genet Pol. 1984;25(3):271–276.
• 62. Cegielska-Taras T, Szała L. Direct production of double haploid plants from microspore-derived embryos of winter oilseed rape (Brassica napusL.). Rośliny Oleiste. 1998;19:353–357.
• 63. Cegielska-Taras T, Tykarska T, Szała L, Kuraś L, Krzymański J. Direct plant development from microspore-derived embryos of winter oilseed rape Brassicanapus L. ssp. oleifera (DC.) Metzger. Euphytica. 2002;124(3):341–347.http://dx.doi.org/10.1023/A:1015785717106
• 64. Bartkowiak-Broda I, Cegielska-Taras T. Progress and status of doubled haploids of winter oilseed rape (Brassic napus L.) production. Biotechnologia. 2006;4:107–115.
• 65. Górecka K, Krzyżanowska D, Górecki R. The influence of several factors on the efficiency of androgenesis in carrot. J Appl Genet. 2005;46(3):265–269.
• 66. Górecka K, Krzyżanowska D, Kiszczak W, Kowalska U, Górecki R. Carrot doubled haploids. In: Touraev A, Forster BP, Jain SM, editors. Advances inhaploid production in higher plants. New York NY: Springer Science; 2009.p. 231–239. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4020-8854-4_20
• 67. Górecka K, Krzyżanowska D, Kiszczak W, Kowalska U. Plant regeneration rom carrot (Daucus carota L.) anther culture derived embryos. Acta Physiol Plant. 2009;31(6):1139–1145. http://dx.doi.org/10.1007/s11738-009-0332-1
• 68. Gałązka J, Wroniewicz R, Niemirowicz-Szczytt K. Cucumber (Cucumis sativus L.) microspore isolation and in vitro culture conditions. Biotechnologia.2012;93(2):225.
• 69. Adamus A, Samek L. Effect of selected factors on the androgenesis in microspore cultures of white cabbage (Brassica oleracea var. capitata).Biotechnologia. 2012;93(2):228.
• 70. Cichorz S, Litwiniec A, Gośka M. Evaluation of genetic diversity in doubled haploids and maternal lines of sugar beet (Beta vulgaris L.). Biotechnologia.2012;93(2):231.
• 71. Gośka M. Haploidy i podwojone haploidy buraka cukrowego (Beta vulgaris L.) oraz możliwości ich wykorzystania w hodowli. Monogr Rozpr NaukIHAR. 1997;2:1–81.
• 72. Michalik B, Adamus A, Nowak E. Gynogenesis in Polish onion cultivars. J Plant Physiol. 2000;156(2):211–216. http://dx.doi.org/10.1016/S0176-1617(00)80308-9
• 73. Michalik B, Adamus A, Nowak E. Induction of haploid plants in Polish onion cultivars. Acta Hortic. 1997;447:377–378.
• 74. Zenkteler M, editor. Hodowla komórek i tkanek roślinnych. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 1984.
• 75. Adamski J, Sulinowski S, Kurchańska G, Surma M. Zastosowanie metody bulbozowej w hodowli jęczmienia. II. Charakterystyka linii autoploidalnychotrzymanych u mieszańców Emir × Himalays. Hod Rośl. 1984;5–6:6–8.
• 76. Gzyl J, Gwóźdź EA. Selection in vitro and accumulation of phytochelatins in cadmium tolerant cell line of cucumber (Cucumis sativus). PlantCell Tiss Organ Cult. 2005;80(1):59–67. http://dx.doi.org/10.1007/s11240-004-8808-6
• 77. Ratajczak L. Regulacja enzymatyczna pierwotnej biosyntezy aminokwasów w łubinie żółtym. Poznań: Wyd Nauk UAM; 1981.
• 78. Ratajczak W. Asparaginian – centralny aminokwas w metabolizmie azotowym roślin motylkowatych. Poznań: Wydawnictwo NaukoweUAM; 1984.
• 79. Ratajczak W, Gwóźdź EA, Ratajczak L. Effects of asparagine and methionine on storage protein synthesis in cultured lupin cotyledons. Acta PhysiolPlant. 1988;10:143–149.
• 80. Morkunas I, Borek S, Formela M, Ratajczak L. Plant responses to sugar starvation. In: Chang CF, editor. Carbohydrates – comprehensive studieson glycobiology and glycotechnology. New York NY: InTech; 2012. p.409–438. http://dx.doi.org/10.5772/51569
• 81. Niemirowicz-Szczytt K, Kubicki B. Cross fertilization between cultivated species of genera Cucumis L. and Cucurbita L. Genet Pol. 1979;20:117–125.
• 82. Zenkteler M. In vitro fertilization and wide hybridization in higher plants. CRC Crit Rev Plant Sci. 1990;9(3):267–279. http://dx.doi. org/10.1080/07352689009382290
• 83. Stefaniak B. The in vitro development of isolated rye proembryos. Acta Soc Bot Pol. 1987;56(1):37–42.
• 84. Góralski G, Przywara L. In vitro culture of early globular-stage embryos of Brassica napus L. Acta Biol Crac Ser Bot. 1998;40:53–60.
• 85. Jach M, Przywara L. Somatic embryogenesis and organogenesis induced on the immature zygotic embryos of sunflower (Helianthus annuus L.) – the role of genotype. Acta Biol Crac Ser Bot. 1999;41(1 suppl):41.
• 86. Rakoczy-Trojanowska M, Malepszy S. A method for increased plant regeneration from immature F1 and BC1 embryos of Cucurbita maxima Duch.× C. pepo L. hybrids. Plant Cell Tissue Organ Cult. 1989;18(2):191–194.http://dx.doi.org/10.1007/BF00047744
• 87. Stolarz A, Lörz H. Somatic embryogenesis, in vitro manipulation and plant regeneration from immature embryos of hexaploid Triticale (×Triticosecale Witt.). Z Pflanzenzüchtg. 1986;96:353–362.
• 88. Zimny J, Becker D, Brettschneider R, Lörz H. Fertile transgenic Triticale (×Triticosecale Witt.). Mol Breed. 1995;1(2):155–164. http://dx.doi.org/10.1007/BF01249700
• 89. Oleszczuk S, Sowa S, Zimny J. Direct embryogenesis and green plant regeneration from isolated microspores of hexaploid triticale (×TriticosecaleWitt. cv. Bogo). Plant Cell Rep. 2004;22:885–893.
• 90. Wędzony M. Otrzymywanie i wykorzystanie linii podwojonych haploidów u zbóż. Biotechnologia. 2001;1(52):51–62.
• 91. Zwierzykowski Z, Zwierzykowska E, Ślusarkiewicz-Jarzina A, Ponitka A. Regeneration of anther-derived plants from pentaploid hybrids of Festucaarundinacea × Lolium multiflorum. Euphytica. 1999;105(3):191–195. http://dx.doi.org/10.1023/A:1003479915606
• 92. Sobiech K, Książczyk T, Ślusarkiewicz-Jarzina A, Ponitka A, Zwierzykowski W, Zwierzykowski Z. Obtaining and cytogenetic identification of tetraploid hybrids Lolium spp. × Festuca pratensis. Biotechnologia. 2012;93(2):234.
• 93. Zenkteler M, Wojciechowicz M, Bagniewska-Zadworna A, Jeżowski S. Preliminary results on studies of in vivo and in vitro sexual reproductionof Salix viminalis L. Dendrobiology. 2003;50:37–42.
• 94. Zenkteler M, Wojciechowicz M, Bagniewska-Zadworna A, Zenkteler E, Jeżowski S. Intergeneric crossability studies on obtaining hybridsbetween Salix viminalis and four Populus species: in vivo and in vitropollination of pistils and the formation of embryos and plantlets. Trees.2005;19(6):638–643. http://dx.doi.org/10.1007/s00468-005-0427-2
• 95. Zenkteler M, Wojciechowicz MK, Bagniewska-Zadworna A, Jeżowski S, Baisheva EZ. Preliminary results on obtaining hybrids between Salixviminalis and Populus sp. through the technique of in vitro pollination ofcatkins. In: Jeżowski S, Wojciechowicz MK, Zenkteler E, editors. Alternativeplants for sustainable agriculture. Poznań: IPG, PAS; 2006. p. 63–83.
• 96. Bagniewska-Zadworna A, Wojciechowicz MK, Zenkteler M, Jeżowski S, Zenkteler E. Cytological analysis of hybrid embryos of intergeneric crossesbetween Salix viminalis and Populus species. Aust J Bot. 2010;58(1):42–48.http://dx.doi.org/10.1071/BT09188
• 97. Bagniewska-Zadworna A, Zenkteler M, Zenkteler E, Wojciechowicz MK, Barakat A, Carlson JE. A successful application of the embryo rescue technique as a model for studying crosses between Salix viminalis and Populus species. Aust J Bot. 2011;59(4):382–392. http://dx.doi.org/10.1071/BT10270
• 98. Płażek A, Dubert F. Optimization of medium for callus induction and plant regeneration of Miscanthus ×giganteus. Acta Biol Crac Ser Bot.1999;41(1 suppl):56.
• 99. Głowacka K, Zenkteler M, Jeżowski S. Mikropropagacja Miscanthus ×giganteus Greef & Den (Poaceae) z niedojrzałych kwiatostanów. In: Materiały X ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin “Biotechnologia roślinna w biologii, farmacji i rolnictwie”. Bydgoszcz, 15–17.09.2003. Bydgoszcz: ATR Bydgoszcz; 2003. p. 38.
• 100. Głowacka K, Jeżowski S, Kaczmarek Z. In vitro induction of polyploidy by colchicine treatment of shoots and preliminary characterisation of inducedpolyploids in two Miscanthus species. Ind Crops Prod. 2010;32(2):88–96.http://dx.doi.org/10.1016/j.indcrop.2010.03.009
• 101. Przyborowski JA, Sulima P, Jóźwik M. Indukcja somatycznej embriogenezy z mezofilu liścia ślazowca pensylwańskiego (Sida hermaphrodita Rusby).In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologiiroślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 100.
• 102. Rybczyński JJ, Zduńczyk W. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration in the genus Secale. Theor Appl Genet. 1986;73(2):267–271. http:// dx.doi.org/10.1007/BF00289284
• 103. Zimny J, Rybczyński JJ. Somatic embryogenesis of triticale. In: Horn W, Jensen CJ, Odenbach W, Schieder O, editors. Genetic manipulation inplant breeding. Berlin: Walter de Gruyter; 1986. p. 507–510.
• 104. Rybczyński JJ. Plant regeneration in highly embryogenic callus, cell suspension and protoplast cultures of Trifolium fragiferum L.(Leguminosae). Plant Cell Tissue Organ Cult. 1997;51:159–170. http://dx.doi.org/10.1023/A:1005930209494
• 105. Menke-Milczarek I, Zimny J. Histological study of wheat somatic embryogenesis. Acta Biol Crac Ser Bot. 1999;41(1 suppl):50.
• 106. Mikuła A, Rybczyński JJ. Somatic embryogenesis of Gentiana genus I. The effect of the preculture treatment and primary explant origin onsomatic embryogenesis of Gentiana cruciata (L.), G. pannonica (Scop.),and G. tibetica (King). Acta Physiol Plant. 2001;23(1):15–25. http://dx.doi.org/10.1007/s11738-001-0017-x
• 107. Pilarska M, Konieczny R, Tuleja M, Kuta E. Efficient plant regeneration of Trifolium nigrescens via somatic embryogenesis. Acta Biol Crac Ser Bot.1999;41(1 suppl):21.
• 108. Burza W, Malepszy S. In vitro culture of Cucumis sativus L. XVIII. Plants from protoplasts through direct somatic embryogenesis. Plant Cell TissueOrgan Cult. 1995;41(3):259–266. http://dx.doi.org/10.1007/BF00045090
• 109. Szczygieł K, Hazubska-Przybył T, Bojarczuk K. Somatyczna embriogeneza wybranych gatunków drzew iglastych. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencjikultur in vitro i biotechnologii roślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006.Szczecin: Print Group; 2006. p. 102.
• 110. Bach A, Pawłowska B. Effect of light qualities on cultured in vitro ornamental bulbous plants. In: Teixeira da Silva JA, editor. Floriculture, ornamental and plant biotechnology. Advances and topical issues. Hongkong: Global Science Books; 2006. p. 271–276. (vol 2).
• 111. Bach A, Pawłowska B, Pulczynska K. Utilization of soluble carbohydrates in shoot and bulb regeneration of Hyacinthus orientalis L. in vitro. ActaHortic. 1992;2(325):487–492.
• 112. Bach A, Warchoł M, Savona M. Wpływ substancji wzrostowych na organogenezę i somatyczną embriogenezę u śnieżyczki Elwesa (Galanthuselwesii Hook). Zesz Probl Post Nauk Rol. 2002;488:565–570.
• 113. Ruduś I, Kępczyńska E, Kępczyński J. Regulation of Medicago sativa L. somatic embryogenesis by gibberellins. Plant Growth Regul. 2002;36(1):91–95. http://dx.doi.org/10.1023/A:1014751125297
• 114. Ruduś I, Kępczyński J, Kępczyńska E. The influence of the jasmonates and abscisic acid on callus growth and somatic embryogenesis in Medicagosativa L. tissue culture. Acta Physiol Plant. 2001;23(1):103–107. http://dx.doi.org/10.1007/s11738-001-0029-6
• 115. Ruduś I, Kępczyńska E, Kępczyński J. Comparative efficacy of abscisic acid and methyl jasmonate for indirect somatic embryogenesis in Medicago sativa L. Plant Growth Regul. 2006;48(1):1–11. http://dx.doi.org/10.1007/ s10725-005-5136-8
• 116. Kępczyńska E, Ruduś I, Kępczyński J. Endogenous ethylene in indirect somatic embryogenesis of Medicago sativa L. Plant Growth Regul.2009;59(1):63–73. http://dx.doi.org/10.1007/s10725-009-9388-6
• 117. Gaj MD. Factors influencing somatic embryogenesis induction and plant regeneration with particular reference to Arabidopsis thaliana (L.)Heynh. Plant Growth Regul. 2004;43(1):27–47. http://dx.doi.org/10.1023/B:GROW.0000038275.29262.fb
• 118. Gaj MD, Zhang S, Harada JJ, Lemaux PG. Leafy cotyledon genes are essential for induction of somatic embryogenesis of Arabidopsis. Planta. 2005;222(6):977–988. http://dx.doi.org/10.1007/s00425-005-0041-y
• 119. Gaj MD, Trojanowska A, Ujczak A, Mędrek M, Kozioł A, Garbaciak B. Hormone-response mutants of Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. impaired in somatic embryogenesis. Plant Growth Regul. 2006;49(2–3):183–197. http://dx.doi.org/10.1007/s10725-006-9104-8
• 120. Ledwoń A, Gaj MD. LEAFY COTYLEDON1, FUSCA3 expression and auxin treatment in relation to somatic embryogenesis induction in Arabidopsis.Plant Growth Regul. 2011;65(1):157–167. http://dx.doi.org/10.1007/s10725-011-9585-y
• 121. Bach A. Technologia sztucznych nasion. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 295–306.
• 122. Kikowska M, Thiem B. Alginate-encapsulated shoot tips and nodal segments in micropropagation of medicinal plants. A review. Herba Pol. 2011;57(4):45–57.
• 123. Mikuła A, Rybczyński JJ. Krioprezerwacja narzędziem długoterminowego przechowy wania komórek, tkanek i organów pochodzących z kultur invitro. Biotechnologia. 2006;4(75):145–163.
• 124. Olszowska O, Pytlewska A, Skorupińska K, Szypuła W. Poliprenole w kulturze zawiesinowej Taxus. In: Materiały X ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin “Biotechnologia roślinna w biologii,farmacji i rolnictwie”. Bydgoszcz, 15–17.09.2003. Bydgoszcz: ATR Bydgoszcz;2003. p. 101.
• 125. Thiem B, Wesołowska M, Skrzypczak L. Eryngium planum w kulturze in vitro. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologiiroślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 89.
• 126. Budzianowska A, Skrzypczak L, Krawczyk A, Budzianowski J. Glukozydy fenyloetanoidowe w kulturach in vitro Plantago lanceolata L. In: MateriałyX ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin“Biotechnologia roślinna w biologii, farmacji i rolnictwie”. Bydgoszcz, 15–17.09.2003. Bydgoszcz: ATR Bydgoszcz; 2003. p. 95.
• 127. Grajek W. Biosynteza metabolitów wtórnych w kulturach in vitro. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish ScientificPublishers PWN; 2001. p. 306–341.
• 128. Ekiert H. Accumulation of biologically active furanocoumarins within in vitro cultures of medicinal plants. In: Ramawat KG, editor. Biotechnologyof medicinal plants: vitalizer and therapeutic. Enfield NH: SciencePublishers; 2004. p. 267–296.
• 129. Wysokińska H, Chmiel A. Produkcja roślinnych metabolitów wtórnych w kulturach organów transformowanych. Biotechnologia. 2006;4(75):124–135.
• 130. Chmiel A. Przemysł biotechnologiczny leku roślinnego. Farm Pol. 2002;58(3):103–110.
• 131. Furmanowa M. Znaczenie biotechnologii roślinnej w wytwarzaniu cytostatyków. Biotechnologia. 1992;4(19):27–36.
• 132. Szypuła W, Pietrosiuk A, Olszowska O, Furmanowa M. Wroniec widlasty Huperzia selago w kulturze in vitro; badania biotechnologiczne i fitochemiczne.In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro ibiotechnologii roślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group;2006. p. 202.
• 133. Wysokińska H, Chmiel A. Biotransformacje substancji chemicznych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish ScientificPublishers PWN; 2004. p. 144–170.
• 134. Grajek W. Kultury roślinne w bioreaktorach. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 87–143.
• 135. Chmiel A, Wysokińska H. Biotechnologia korzeni włośnikowatych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish ScientificPublishers PWN; 2001. p. 433–446.
• 136. Królicka A, Szpitter A, Maciąg M, Biskup E, Gilgenast E, Romanik G, et al. Antibacterial and antioxidant activity of the secondary metabolites fromin vitro cultures of the Alice sundew (Drosera aliciae). Biotechnol ApplBiochem. 2009;53(3):175–184. http://dx.doi.org/10.1042/BA20080088
• 137. Chmiel A. Biotechnologia farmaceutyczna: dokonania wieku XX i oczekiwania wieku XXI. Biotechnologia. 2002;4(59):56–78.
• 138. Czech-Kozłowska M, Krzywański Z. Phenolic compounds and the polyphenoloxidase and peroxidase activity in callus tissue culture-pathogen combination of red raspberry and Didymella applanata (Niessl.) Sacc. J Phytopathol.1984;109(2):176–182. http://dx.doi.org/10.1111/j.1439-0434.1984.tb00704.x
• 139. Kozłowska M, Krzywański Z. Effect of 2,4-D and benzyladenine on colonization of red raspberry callus tissue with Didymella applanata (Niessl)Sacc. and on accumulation of phenolics. Acta Physiol Plant. 1988;10:25–30.
• 140. Kostyn K, Czemplik M, Czuj T, Kulma A, Szopa J. Early flax response to Fusarium. Acta Biol Crac Ser Bot. 2009;51(2 suppl):31.
• 141. Boba A, Kulma A, Kostyn K, Szopa J. Changes in terpenoid level after Fusarium treatment in flax. Acta Biol Crac Ser Bot. 2009;51(1 suppl):33.
• 142. Rutkowska-Krause I, Mankowska G, Łukaszewicz M, Szopa J. Regeneration of flax (Linum usitatissimum L.) plants from anther culture and somatictissue with increased resistance to Fusarium oxysporum. Plant Cell Rep.2003;22(2):110–116. http://dx.doi.org/10.1007/s00299-003-0662-1
• 143. Weigt D, Nawracała J, Popowska D, Nijak K. Examination of ability to androgenesis of spring wheat genotypes resistant to Fusarium. Biotechnologia.2012;93(2):226.
• 144. Czubacka A, Doroszewska T. Obtaining tobacco double haploids containing different sources of resistance to PVY. Acta Biol Crac Ser Bot.1999;41(1 suppl):16.
• 145. Żebrowska JI. In vitro selection in resistance breeding of strawberry (Fragaria ×ananassa Duch.). Commun Agric Appl Biol Sci.2010;75(4):699–704.
• 146. Żebrowska JI. Efficacy of resistance selection to Verticillium wilt in strawberry (Fragaria ×ananassa Duch.) tissue culture. Acta Agrobot.2011;64(3):3–12. http://dx.doi.org/10.5586/aa.2011.024
• 147. Grzebelus E, Derlaga K, Wiśniowska M, Piwowarczyk B, Grzebelus D. Wpływ toksyn produkowanych przez Alternaria radicina na kulturyprotoplastów Daucus carota. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencjikultur in vitro i biotechnologii roślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin:Print Group; 2006. p. 54.
• 148. Grzybek J. Kultury mycelialne jako źródło aktywnych metabolitów. In: Materiały VII ogólnopolskiej konferencji “Kultury in vitro w Polsce. Stanaktualny i perspektywy”. Poznań-Błażejewko. 9–11.05.1994. Poznań:Sorus; 1994. p. 18
• 149. Orczyk W. Rośliny otrzymane w wyniku fuzji protoplastów. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 355–362.
• 150. Zenkteler E. Współczesne metody wykrywania i eliminowania drobnoustrojów podczas mikrorozmnażania. Biotechnologia. 1998;1(40):149–166.
• 151. Łojkowska E. Diagnostyka molekularna roślin. Wykrywanie obecności czynników chorobotwórczych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 462–519.
• 152. Zimnoch-Guzowska E, Flis B, Lebecka R, Marczewski W, Mietkiewska E, Syller J. Elements of biotechnology applied to potato breeding at IHAR Młochów. In: Hrazdina G, editor. Use of agriculturally important genesin biotechnology. Ohmsa: IOS Press; 2000. p. 32–36. (NATO Sci A, LifeSci; vol 319).
• 153. Pojnar E, Cocking EC. Formation of cell aggregates by regenerating isolated tomato fruit protoplasts. Nature. 1968;218(5138):289–289. http://dx.doi.org/10.1038/218289a0
• 154. Pojnar E, Willison JHM, Cocking EC. Cell-wall regeneration by isolated tomato-fruit protoplasts. Protoplasma. 1967;64(4):460–480. http://dx.doi.org/10.1007/BF01666544
• 155. Pindel A, Lech M, Surówka J. Description of regenerated from protoplasts Lycopersicon glandulosum, L. peruvianum and L. esculentum Stevens ×Rodade hybrid. Acta Biol Crac Ser Bot. 1998;40:41–46.
• 156. Piwowarczyk B, Pindel A. Isolation and culture of gras-pea (Lathyrus sativus L.) protoplasts-studies on viability and cell wall reconstruction.In: Abstracts of the IV Central European Congress of Life Sciences Eurobiotech. Cracow, Poland 12–15 Oct, 2011. Cracow: BiT; 2011. p. 101.
• 157. Orczyk W. Otrzymywanie i znaczenie mieszańców somatycznych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish ScientificPublishers PWN; 2009. p. 101–121.
• 158. Orczyk W, Przetakiewicz J, Nadolska-Orczyk A. Somatic hybrids of Solanum tuberosum – application to genetics and breeding. Plant Cell TissueOrgan Cult. 2003;74(1):1–13. http://dx.doi.org/10.1023/A:1023396405655
• 159. Przetakiewicz J, Nadolska-Orczyk A, Orczyk W. Tetraploidalne mieszańce somatyczne ziemniaka (Solanum tuberosum L.) otrzymane z linii diploidalnych.In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii.Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 85.
• 160. Nadolska-Orczyk A. Mechanizm transformacji genetycznej komórki roślinnej za pomocą Agrobacterium tumefaciens. Biotechnologia. 4(55):100–107.
• 161. Orlikowska T, Malepszy S. Hodowla odmian transgenicznych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN;2001. p. 446–455.
• 162. Przetakiewicz J, Orczyk W, Nadolska-Orczyk A. Transformacja genetyczna pszenicy i jeczmienia za pomocą Agrobacterium tumefaciens. In: MateriałyXI Ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii. Międzyzdroje6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 69.
• 163. Szopa J, Skała J. Rozpoznanie i identyfikacja roślin transgenicznych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 254–260.
• 164. Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001,2004,2009.
• 165. Stefaniak B. Komórki in vitro. In: Woźny A, Przybył K, editors. Komórki roślinne w warunkach stresu. Poznań: Wydawnictwo Naukukowe UAM;2004. p. 1–167. (vol 2).
• 166. Legocki AB, editor. Transformowanie i regeneracja roślin. Poradnik laboratoryjny. Poznań: IBCH, PAS; 1999.

Identyfikatory

DOI

10.5586/asbp.2013.022