PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników

Czasopismo

2008 | 54 | 3 |

Tytuł artykułu

Induced accumulation of phenolic acids in winter triticale [Triticosecale Wittm.] under insects feeding

Warianty tytułu

PL
Nagromadzanie kwasow fenolowych w pszenzycie ozimym [Triticosecale Wittm.] indukowane zerowaniem owadow

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
The total amount of the identified phenolics was similar in leaves of both cultivars noninfested by the insects. However, higher content of ferulic acid and o-coumaric acid was found in the less acceptable triticale (Lamberto cv.) than in more acceptable Marko cv. After infestation an increase in content of the most phenolics was observed. The cereal leaf beetle brought the highest changes in the gallic, chlorogenic, salicylic, syringic and ferulic acid. The grain aphid feeding resulted in the increase of gallic, chlorogenic, vanilic, caffeic, syringic and salicylic acids. Moreover, much higher induction of phenolic biosynthesis occurred within seedlings of Lambero cv. than in Marko one. The differences in phenolic acids level within triticale tissues induced by the chewing and sucking-piercing insects are discussed.
PL
Zawartość sumy zidentyfikowanych kwasów fenolowych była podobna w obu badanych odmianach. Jednocześnie wykazano, że stężenie kwasu ferulowego i o-kumarowego było wyższe w siewkach odmiany Lamberto odznaczającej się wyższą odpornością niż w bardziej podatnej odmianie Marko. Żerowanie badanych owadów wywołało wzrost zawartości oznaczanych związków w obu odmianach pszenżyta. W odpowiedzi na atak skrzypionki zbożowej obserwowano zwiększenie poziomu kwasów: galusowego, chlorogenowego, salicylowego, syrynginowego i ferulowego. Mszyca zbożowa wywołała natomiast wzrost zawartości kwasów galusowego, chlorogenowego, wanilinowego, kawowego, syrynginowego oraz salicylowego. Należy podkreślić, że znacznie wyższą indukcję biosyntezy związków fenolowych stwierdzono w siewkach odmiany Marko.

Wydawca

-

Czasopismo

Rocznik

Tom

54

Numer

3

Opis fizyczny

p.33-40,fig.,ref.

Twórcy

  • University of Podlasie, Prusa 12, 08-110 Siedlce, Poland

Bibliografia

  • 1. Dicko MH, Gruppen H, Traoré AS, Voragen AGJ, van Berkel WJH. Phenolic compounds and related enzymes as determinants of sorghum for food use. Biotechnol Mol Biol Rev 2006; 1:21-38.
  • 2. Dixon RA, Achnine L, Kota P, Liu CJ, Redy SMS, Wang L. The phenylpropanoid pathway and plant defence – a genomics perspective. Mol Plant Pathol 2002; 3:371-90.
  • 3. Mustafa NR, Verpoorte R. Chorismate-derived C6C1 compounds in plants. Planta 2005; 222:1-5.
  • 4. Naczk M, Shahidi F. Phenolics in cereals, fruits and vegetables: Occurrence, extraction and analysis. J Pharm Biomed Anal 2006; 41:1523-42.
  • 5. Bernards M, Båstrup-Spohr L. Phenylpropanoid metabolism induced by wounding and insect herbivory. In: Schaller A (ed.). Induced resistance to herbivory. Springer Science Business Media B.V., 2008;189-211.
  • 6. Dempsey DA, Shah J, Klessig DF. Salicylic acid and disease resistance in plants. Crit Rev Plant Sci 1999; 18: 547–75.
  • 7. Moran PJ, Thompson GA. Molecular responses to aphid feeding in Arabidopsis in relation to plant defence pathways. Plant Physiol 2001; 125:1074-85.
  • 8. Stout MJ, Fidantsef AL, Duffey SS, Bostock RM. Signal interactions in pathogen and insect attack: systemic plant-mediated interactions between pathogens and herbivores of the tomato, Lycopersicon esculentum. Physiol Mol Plant Pathol 1999; 54: 115-30.
  • 9. Kowalski R, Wolski T. Evaluation of phenolic acid content in Silphium perfoliatum L. leaves, inflorescences and rhizomes. Electronic J Pol Agricult Univ, Hort. 2003; 6:3.
  • 10. Janas KM, Cvikrová M, Pałagiewicz A, Szafranska K, Posmyk MM. Constitutive elevated accumulation of phenylpropanoids in soybean roots at low temperature. Plant Sci 2002; 163:369-73.
  • 11. Cabrera HM, Muñoz O, Zuñiga GE, Corcuera LJ, Argañdona VH. Changes in ferulic acid and lipid content in aphid-infested barley. Phytochemistry 1995; 39:1023-6.
  • 12. Blassioli Moraes MC, Birkett MA, Gordon-Weeks R, Smart LE, Martin JL, Barry JP et al. cis-Jasmonate induces accumulation of defence compounds in wheat, Triticum aestivum. Phytochemistry 2008; 69:9-17.
  • 13. Slesak E, Slesak M, Gabrys B. Effect of methyl jasmonate on hydroxamic acid content, protease activity, and bird cherry-oat aphid Rhopalosiphum padi (L.) probing behavior. J Chem Ecol 2001; 27: 2529-43.
  • 14. Ding H, Lamp RL, Ames N. Inducible production of phenolic acids in wheat and antibiotic resistance to Sitodiplosis mosellana. J Chem Ecol 2000; 26: 969-84.
  • 15. Santiago R, Malvar RA, Baamonde MD, Revilla P, Souto XC. Free phenols in maize pith and their relationship with resistance to Sesamia nonagrioides (Lepidoptera: Noctuidae) attack. J Econ Entomol 2005; 98:1349-56.
  • 16. Hahlbrock K, Sheel D. Physiology and molecular biology of phenylpropanoid metabolism. Ann Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 1989; 40:347-69.
  • 17. Bernards MA, Lewis NG. Alkyl ferulates in wound healing potato tubers. Phytochemistry 1992; 31: 3409-12.
  • 18. Hammerschmidt R. Induced disease resistance: how do induced plants stop pathogens? Physiol Mol Plant Pathol 1999; 55: 77-84.
  • 19. Namiki M. Antioxidants/antimutagens in food. CRC Critical Rev Sci Nutri 1990; 29:273-300.
  • 20. Khattab H. The defense mechanism of cabbage plant against phloem-sucking aphid (Brevicoryne brassicae L.). Aust J Basic Appl Sci 2007; 1:56-62.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-article-ccbcf438-d8c2-4665-8561-b59fc4de405e
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.