Influence of water temperature on eggs incubation time and embryonic development of fish from genus Leuciscus

• Autorzy: Kupren K , Mamcarz A. , Kucharczyk D. , Prusinska M. , Krejszeff S.

Warianty tytułu

PL

Wplyw temperatury wody na czas trwania inkubacji ikry oraz rozwoju embrionalnego ryb z rodzaju Leuciscus

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Wild living spawners of dace Leuciscus leuciscus (L.), ide L. idus (L.) and chub L. cephalus (L.), were obtained from rivers of central (the Pisa River basin) and northern (the Pasłęka River basin) Poland and next transported to a hatchery for artificial reproduction. The obtained eggs were dry fertilized and next incubated in water as different constant temperatures ranging from 4.5 to 29.0°C. The hatched embryos were kept at the same temperatures until the moment of complete yolk sac resorption and later fed ad libitum on live nauplial Artemia sp. stages. The power function was applied for determination of the relation between the temperature and time until and achievement of each of the thirteen characteristic stages of embryonic development. It was shown that the pace of embryonic development increased with the temperature increase. In the majority of cases, at identical thermal conditions, both the incubation time and the pace of embryonic development were much less diversified among individual of the same species originating from different population than between the individual species. The obtained data finds application in optimization of early raring process and as a consequence will be an important tool in protection of endangered species.

PL

Dziko żyjące tarlaki jelca Leuciscus leuciscus (L.), jazia L. idus (L.) i klenia L. cephalus (L.) pozyskano z rzek Polski centralnej (zlewnia Pisy) i północnej (zlewnia Pasłęki), a później przetransportowano do wylegarni w celu przeprowadzenia sztucznego rozrodu. Otrzymaną ikrę zapłodniono na sucho, a następnie inkubowano w wodzie o różnych stałych temperaturach z zakresu 4,5 – 29°C. Wyklute zarodki przetrzymywano w tych samych temperaturach do momentu całkowitej resorpcji woreczków żółtkowych oraz karmiono ad libitum żywymi stadiami nauplialnymi Artemia sp. Zależność między temperaturą a czasem do wyklucia i osiągnięcia każdego z 13 charakterystycznych stadiów rozwoju embrionalnego określono za pomocą funkcji potęgowej. Wykazano, że tempo rozwoju embrionalnego wzrastało wraz ze wzrostem temperatury. W większości przypadków w jednakowych warunkach termicznych zarówno czas trwania inkubacji, jak i tempo rozwoju embrionalnego były wyraźnie mniej zróżnicowane między dwiema badanymi populacjami jednego gatunku niż między poszczególnymi gatunkami. Otrzymane dane znajdą zastosowanie w optymalizacji procesu podchowowego, a przez to będą stanowić ważne narzędzie ochrony zagrożonych populacji.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Polish Journal of Natural Sciences
• Rocznik: 2008
• Tom: 23
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.461-481,fig.,ref.

Twórcy

autor

Kupren K

• University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Michala Oczapowskiego 5, 10-957 Olsztyn, Poland

autor

Mamcarz A.

autor

Kucharczyk D.

autor

Prusinska M.

autor

Krejszeff S.

Bibliografia

• BALON E.K. 1975a. Reproductive guilds of fishes. J. Fish. Res. Bd. Can., 32: 821-864.
• BALON E.K. 1975b. Terminology of intervals in fish development. J. Fish. Res. Bd. Can., 32 (9): 1663-1670.
• BALON E.K. 1990. Epigenesist of an epigeneticist: the development of some alternative concepts on the early ontogeny and evolution of fishes. Guelph. Ichtiol. Rev., 1: 1-42.
• BLAXTER J.H.S. 1969. Development: eggs and larvae. Reproduction and Growth, Fish Physiology, 3: 177-252.
• BLAXTER J.H.S. 1992. The effect of temperature on larval fishes. Neth. J. Zool., 42: 336-357.
• BŁACHUTA J. 1998. Rola i znaczenie rodzimych gatunków ryb reofilnych w ekosystemach rzek. Karpiowate ryby reofilne. Mat. Konf., Wyd. PZW, Warszawa, ss. 17-24.
• BRYLIŃSKA M. 2000. Ryby słodkowodne Polski. PWN, Warszawa.
• BRZUSKA E., BIENIARZ K. 1977. Metoda przyżyciowego określania dojrzałości płciowej samic karpia w związku z iniekcjami homogenatu przysadki mózgowej karpia. Oprac. broszurowe IRŚ, 105: 3-27.
• CALTA M. 2000. Morphological development and growth of chub (Leuciscus cephalus L.) larvae. J. Appl. Ichthyol., 16: 83-85.
• DZIEKOŃSKA J. 1956. Studies on embryonic development of fish. I. Observation on the spawning and the embryonic development of bream (Abramis brama L) in the Vistula delta. Pol. Arch. Hydrobiol., 3: 291-305.
• ECONOMOU A.N., DAOULAS C., PSARRAS T. 1991. Growth and morphological development of chub, Leuciscus cephalus L. during the first year of life. J. Fish Biol., 39: 398-408.
• ELLIOTT J.M., HUMPESCH U.H., HURLEY M.A. 1987. A comparative study of eight mathematical models for the relationship between water temperature and hatching time of eggs of freshwater fish. Archive für Hydrobiolgie., 109: 257-277.
• FLOREZ F. 1972. The effect of temperature on incubation time, growth and lethality of embryos, larvae and juveniles of the ide, Idus idus (L.). Rep. Inst. Freshw. Res. Drottningholm, 52: 50-64.
• GADOMSKI D.M., CADDELL S.M. 1996. Effects of temperature on the development and survival of eggs of four coastal California fishes. Fish. Bull. 94: 41-48.
• HAMEL P., MAGNAN P., EAST P., LAPOINTE M., LAURENDEAU P. 1997. Comparison of different models to predict the in situ embryonic developmental rate of fish, with special reference to white sucker (Catostomus commersoni). Can. J. Fish. Aquatic Sci., 54: 190-197.
• HARZEVILI A.S., CHARLEROY D. DE, AUVERX J., VUGHT I., SLYCKEN J. VAN 2003. Larval rearing of chub, Leuciscus cephalus (L.) using decapsulated Artemia as direct food. J. Appl. Ichthyol., 19: 123-125.
• HERZIG A., WINKLER H. 1986. The influence of temperature on the embryonic development of three cyprinid fishes, Abramis brama, Chalcaburnus chalcoides and Vimba vimba. J. Fish Biol., pp. 28: 171-181.
• KAMLER E. 1992. Early life history of fish. An energetics approach. Chapman & Hall, London, pp. 267.
• KAMLER E., KECKEIS H., BAUER-NEMESCHKAL E. 1998. Temperature-induced changes of survival, development and yolk partitioning in Chondrostoma nasus. J. Fish Biol., 53: 658-682.
• KAMLER E. 2002. Ontogeny of yolk-feeding fish: an ecological perspective. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 12: 79-103.
• KENNEDY M. 1969. Spawning and early development of the dace Leuciscus leuciscus (L.). J. Fish Biol., 1: 249-259.
• KOBLICKAJA A.F. 1981. Opredelitel molodi presnovodnykh ryb. Legkaja i Pishhevaya Promyshlennost, Moskva.
• KOKUREWICZ B. 1969. The influence of temperature on the embryonic development of the perches (Perca fluviatilis L.) and Lucioperca lucioperca. Zool. Pol., 19 (1): 47-67.
• KOKUREWICZ B. 1970. The effect of temperature on embryonic development of Tinca tinca (L.) and Rutilus rutilus (L.). Zool. Pol., 20: 317-337.
• KOKUREWICZ B. 1971. Warunki termiczne, a rozród i rozwój niektórych gatunków ryb. Oprac. broszurowe IRŚ, 47: 1-18.
• KRYŻANOWSKIJ S.G. 1949. Ekologo-morfologiceskie zakonomernosti razvitija karpovych, vjunovych i somovych ryb (Cyprinoidei i Siluroidei). Tr. Inst. Morf. Zhivotn., 1: 5-332.
• KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M, KUJAWA R., CZERKIES P. 1997. Effect of temperature on embryonic and larval development of bream (Abramis brama L.). Aquat. Sci., 59: 214-221.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E., ULIKOWSKI D. 1999. Artificial spawning of ide (Leuciscus idus L.) under controlled conditions. EJPAU 2 (2),
• KUCHARCZYK D. 2002. Rozród kontrolowany i androgeneza wybranych gatunków ryb karpiowatych. Rozprawy i Monografie, 63: 1-81.
• KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1999. A model system for keeping spawners of wild and domestic fish before artificial spawning. Aquacult. Engineering, 20: 85-89.
• KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., SKRZYPCZAK A. 1998. The rearing methods of ide (Leuciscus idus L.) and dace (Leuciscus leuciscus L.) on artificial diets. Europ. Aquacult. Soc., Spec. Pub., 26: 153-154.
• KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 2000. The rearing methods of chub (Leuciscus leuciscus L.) on artificial diets. Europ. Aquacult. Soc. Spec. Publ., 28: 356-356.
• ŁUCZYŃSKI M., KIRKLEWSKA A. 1984. Dependence of Coregonus albula embryogenesis rate on the incubation temperature. Aquacult., 42: 43-55.
• MAMCARZ A., KUPREN K., KUCHARCZYK D., KUJAWA R. 2005. Influence of temperature on, body size and yolk sac volumes of three larval rheophilic cyprinids (genus Leuciscus). Europ. Aquacult. Soc., Spec. Pub., 36: 310-313.
• MANN R.H.K. 1996. Environmental requirements of European non-salmonid fish in rivers. Hydrobiol., 323: 223-235.
• MILLS C.A. 1980. Spawning and rearing eggs of the dace Leuciscus leuciscus (L.). Fish. Mgmt., 1: 67-72.
• PENAZ M. 1968. Development of the chub, Leuciscus cephalus (Linnaeus, 1758) in the post-hatching period. Zool. Listy, 17: 269-278.
• PENAZ M., STERBA O. 1969. Notes to the incubation period, growth and mortality of the chub, Leuciscus cephalus (Linne, 1758), in the early life-history stages. Vestnik Ceskoslovenske Spolecnosti Zoologicke, 33: 56-70.
• PENAZ M. 1974a. Influence of water temperature on incubation and hatching in Chondrostoma nasus (Linnaeus, 1758). Zool. Listy, 23: 53-59.
• PENAZ M., WOHLGEMUTH E., HAMACKOVA J., KOURIL J. 1981. Early ontogeny of the tench, Tinca tinca. I. Embryonic period. Folia Zool., 30(2): 165-176.
• PENAZ M., WOHLGEMUTH E., HAMACKOVA J., KOURIL J. 1982. Early ontogeny of the tench, Tinca tinca. II. Larval period. Folia Zool., 31(2): 175-180.
• PENAZ M., PROKES M., KOURIL J., HAMACKOVA J. 1983. Early development of the carp, Cyprinus carpio. Acta Sci. Nat. Acad. Sci. Bohem. Brno, 17: 1-39.
• RECHULICZ J., OSTASZEWSKA T., WOJDA R. 2002. Water temperature effects on incubation of ide (Leuciscus idus L.) eggs and selected parameters of the larvae. Acta Sci. Pol. Piscaria, 1: 35-46.
• TAGAWA M., HIRANO T. 1987. Presence of thyroxine in eggs and changes in its content during early development of chum salmon, Onchorynchus keta. Gen. Compar. Endocr., 68: 129-135.
• TAKIZAWA K., FUJITA Y., OGUSHI Y., MATSUNO S. 1994. Relative change in body length and weight in several fish larvae due to formalin fixation and preservation. Fisheries Sciences, 60: 355-359.
• TARGONSKA-DIETRICH K., ZIELAZNY T., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., KUJAWA R. 2004. Out-of-season spawning of cultured ide ( Leuciscus idus L.) under controlled conditions. EJPAU 7 .
• TROTTER A.J., PANKHURST D.A., MOREHEAD D.T., BATTAGLENE S.C. 2003. Effect of temperature on initial swim bladder inflation and related development in cultured striped trumpeter (Latris lineata) larvae. Aquacult., 221: 141-156.
• URHO L. 2002. Characters of larvae – what are they? Folia. Zool., 51(3): 161-186.