Characterization of probiotic properties of Lactobacillus strains

• Autorzy: Modzelewska-Kapitula M , Klebukowska L. , Kornacki K. , Lukaszuk W.

Warianty tytułu

PL

Charakterystyka wlasciwosci probiotycznych szczepow Lactobacillus

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Twenty strains of Lactobacillus sp., previously isolated from infants’ faeces (MODZELEWSKA et al. 2003) were evaluated for their probiotic properties such as resistance to rifampicin, neomycin, kanamycin, chloramphenicol, ampicillin, penicillin, nalidixic acid, gentamycin, colistin, oxaciclin and nitrofurantoin, survivability in the environment similar to the present in the gastrointestinal tract – pH 2 and 3 and bile salts concentration 1.2, 2.5 and 5%. All strains were resistant to colistin and nalidixic acid and susceptible to rifampicin, nitrofurantoin, chloramphenicol and ampicillin. Strains showed high survivability in pH 2 and 3. After 6 h incubation bacterial counts were at the level of 8.3-7.2 log cfu cm⁻³ compared to initial 8.7-7.2 log cfu cm⁻³. In the environment containing 1.2-5% of bile salts bacterial counts after incubation were from below 1 to 6.6 log cfu cm⁻³. Nine strains, which survived in the highest numbers in bile salts solutions, were considered as capable of surviving passage through the gastrointestinal tract, which is one of the basic requirements which probiotic strains must fulfil.

PL

Scharakteryzowano 20 szczepów z rodzaju Lactobacillus, wyizolowanych z kału niemowląt (MODZELEWSKA i in. 2003). Zbadano oporność izolatów na rifampicynę, neomycynę, kanamycynę, chloramfenikol, ampicylinę, penicylinę, kwas nalidyksowy, gentamycynę, kolistynę, oxacyklinę i nitrofurantoinę oraz ich przeżywalność w środowisku zbliżonym do panującego w przewodzie pokarmowym – pH 2 i 3 oraz w obecności soli żółciowych w stężeniach 1.2, 2.5, 5%. Wszystkie szczepy były oporne na działanie kolistyny oraz kwasu nalidyksowego i wrażliwe na rifampicynę, nitrofurantoinę, chloramfenikol i ampicylinę. Ich przeżywalność w roztworach o pH 2 i 3 była wysoka. Liczba komórek bakterii po 6 godzinach inkubacji wynosiła zależnie od szczepu 8.3-6.3 log jtk cm⁻³ przy początkowej liczebności populacji na poziomie 8.7-7.2 log jtk cm⁻³. W środowisku zawierającym 1.2-5.0% soli żółciowych liczebność szczepów po inkubacji wynosiła od poniżej 1 do 6.6 log jtk cm⁻³. 9 szczepów, które wykazały najwyższą przeżywalność w obecności soli żółciowych, uznano za zdolne do przeżycia podczas pasażu przez przewód pokarmowy, co jest jednym z podstawowych wymogów stawianych szczepom probiotycznym.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Polish Journal of Natural Sciences
• Rocznik: 2008
• Tom: 23
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.366-373,fig.,ref.

Twórcy

autor

Modzelewska-Kapitula M

• University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Plac Cieszynski 1, 10-718 Olsztyn, Poland

autor

Klebukowska L.

autor

Kornacki K.

autor

Lukaszuk W.

Bibliografia

• ARICI M., BILGIN B., SAGDIC O., OZDEMIR C. 2004. Some characteristics of Lactobacillus isolates from infant feces. Food Microbiol., 21: 19-24.
• BORRIELLO S.P., HAMMES W.P., HOLZAPFEL W., MARTEAU P., SCHREZENMEIR J., VAARA M., VALTONEN V. 2003. Safety of probiotics that contain lactobacilli or bifidobacteria. Clin. Infect. Dis., 36: 775-780.
• CHARTERIS W.P., KELLY P.M., MORELLI L., COLLINS K. 1998. Antibiotic susceptibility of potentially probiotic Lactobacillus species. J. Food Protect., 61(12): 1636-1643.
• ERKKILÄ S., PETÄJÄ E. 2000. Screening of commercial meat starter cultures at low pH and in the presence of bile salts for potential probiotic use. Meat Sci., 55: 297-300.
• GOMES A.M.P., MALCATA F.X. 1999. Bifidobacterium ssp. and Lactobacillus acidophilus: biological, biochemical, technological and therapeutical properties relevant for use as probiotics. Trends FoodSci. Tech., 10: 139-157.
• HOLZAPFEL W.H, SCHILLINGER U. 2002. Introduction to pre- and probiotics. Food Res. Int., 35: 109-116.
• LIBUDZISZ Z. 2003. Ekosystem jelitowy a probiotyki. Bakterie fermentacji mlekowej. Metabolizm, genetyka, wykorzystanie. Mat. Nauk. Symp., Spała, 76-84.
• MARAGKOUDAKISA P.A., ZOUMPOPOULOUA G., MIARISA C., KALANTZOPOULOSA G., POTB B., TSAKALIDOU E. 2006. Probiotic potential of Lactobacillus strains isolated from dairy products. Int. Dairy J. 16: 189-199.
• MATTILA-SANDHOLM T., MYLLÄRINEN P., CRITTENDEN R., MOGENSEN G., FONDEN R., SAARELA M. 2002. Technological challenges for future probiotic foods. Int. Dairy J., 12: 173-182.
• MODZELEWSKA M., KORNACKI K., KŁĘBUKOWSKA L. 2003. Antimicrobial activity of lactic acid bacteria strains isolated from GI tract of infants against Gram positive and Gram negative bacteria. Commun. Agr. Appl. Biol. Sci., 68(2): 437-440.
• NGUYEN T.D.T., KANG J.H., LEE M.S. 2007. Characterization of Lactobacillus plantarum PH04, a potential probiotic bacterium with cholesterol-lowering effects. Int. J. Food Microbiol., 113: 358-361.
• PARK Y.S., LEE J.Y., KIM Y.S., SHIN D.H. 2002. Isolation and characterization of lactic acid bacteria from feces of newborn baby and from dongchimi. J. Agr. Food Chem., 50: 2531-2536.
• PENNACCHIA C., ERCOLINI D., BLAIOTTA G., PEPE O., MAURIELLO G., VILLANI F. 2004. Selection of Lactobacillus strains from fermented sausages for their potential use as probiotics. Meat Sci., 67: 309-317.
• PENNACCHIA C., VAUGHAN E.E., VILLANI F. 2006. Potential probiotic Lactobacillus strains from fermented sausages: further investigations on their probiotic properties. Meat Sci., 73: 90-101.
• PRASAD J., GILL H., SMART J., GOPAL P. 1998. Selection and characterization of lactobacillus and Bifidobacterium strains for use as probiotics. Int. Dairy J., 8: 993-1002.
• RÖNKA E., MALINEN E., SAARELA M., RINTA-KOSKI M., AARNIKUNNAS J., PALVA A. 2003. Probiotic and milk technological properties of Lactobacillus brevis. Int. J. Food Microbiol., 83: 63-74.
• SAARELA M., MOGEMSEN G., FONDÉN R., MÄTTÖ J., MATTILA-SANDHOLM T. 2000. Probiotic bacteria: safety, functional and technological properties. J. Biotechnol., 84: 197-215.
• SANDERS M.E., KLAENHAMMER T.R. 2001. Invited review: The scientific basis of Lactobacillus acidophilus NCFM functionality as a probiotic. J. Dairy Sci., 84: 319-331.
• TEMMERMAN R., POT B., HUYS G., SWINGS J. 2003. Identification and antibiotic susceptibility of bacterial isolates from probiotic products. Int. J. Food Microbiol., 81: 1-10.
• VINDEROLA C.G., REINHEIMER J.A. 2003. Lactic acid starter and probiotic bacteria: a comparative “in vitro” study of probiotic characteristics and biological barrier resistance. Food Res. Int., 36: 895-904.
• XANTHOPOLOUS V., LITOPOULOU-TZANETAKI E., TZANETAKIS N. 2000. Characterization of Lactobacillus isolates from infant feaces as dietary adjuncts. Food Microbiol., 17: 205-215.
• ZIEMER C.J., GIBSON G.R. 1998. An overview of probiotics, prebiotics and synbiotics in the functional food concept: perspectives and future strategies. Int. Dairy J., 8: 473-479.