Effect of Sphaeranthus indicus ethanol extract on tissue antioxidant activity in gentamicin induced nephrotoxic rats

• Autorzy: Mathew J E , Mantri A. , Vachala S.D. , Srinivasan K.K. , Movaliya V.

Warianty tytułu

PL

Wplyw wyciagu etanolowego ze Sphaeranthus indicus na aktywnosc antyoksydacyjna tkanek u szczurow z uszkodzeniem nerek spowodowanym gentamycyna

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The purpose of the present study is to investigate whether the alcoholic extract of Sphaeranthus indicus could decrease the intensity of toxicity in albino rats. Gentamicin at a dose of 80mg/kg body weight was administered intraperitonially to albino male Wistar rats for 8 days. Then another set of animals were given the alcoholic extracts of S. indicus along with gentamicin treatment. The antioxidant levels, serum creatinine, serum urea etc were analyzed. The extracts could significantly decrease the gentamicin induced nephrotoxicity as inferred from the tissue antioxidant status in the drug administered animals. Remarkable change was observed in serum creatinine and urea levels. Lipid peroxidation in the kidney and liver tissues was also considerably reduced in S. indicus extract treated animals. The nephrotoxic rats showed lower activities of superoxide dismutase, catalase, glutathione transferase and reduced glutathione content in the liver and kidney which were restored to normal levels by treatment with S. indicus extract. The increased levels of lipid peroxidation in nephrotoxic rats were reverted back to normal levels after the treatment with S. indicus ethanol extract. These results suggest that it has protective effect against gentamicin induced nephrotoxicity which may be attributed to its antioxidant potential.

PL

Celem niniejszej pracy było zbadanie, czy wyciąg alkoholowy ze Sphaeranthus indicus może zmniejszyć rozmiary uszkodzenia nerek u szczurów. Szczurom szczepu Wistar (samcom) podawano dootrzewnowo gentamycynę w dawce 80 mg/kg m.c. przez 8 dni. Druga grupa zwierząt równolegle z gentamycyną otrzymywała wyciąg alkoholowy ze Sphaeranthus indicus. Analizowano aktywność przeciwutleniającą, poziom kreatyniny i mocznika w surowicy. Podawanie tego wyciągu wyraźnie zmniejszało nefrotoksyczność indukowaną gentamycyną, co pozostawało w związku ze zmianami aktywności przeciwutleniającej u zwierząt. Istotną różnicę obserwowano w poziomie kreatyniny i mocznika w surowicy. U zwierząt, którym podawano wyciąg z Sphaeranthus indicus, także bardzo zmniejszyła się peroksydacja lipidów w tkankach nerek i wątroby. U szczurów z uszkodzeniem nerek wystąpiła obniżona aktywność dysmutazy ponadtlenkowej, katalazy, transferazy glutationowej oraz obniżona zawartość glutationu w nerkach i wątrobie. Ich poziomy wróciły do normalnego poziomu po podaniu ekstraktu z Sphaeranthus indicus.Podwyższony poziom peroksydacji lipidów także wracał do normy po podaniu szczurom z objawami nefrotoksyczności etanolowego ekstraktu z S. indicus. Wyniki sugerują, że wyciąg ten może działać protekcyjnie, zapobiegając działaniu nefrotoksycznemu gentamycyny. Może to mieć związek z właściwościami przeciwutleniającymi wyciągu ze Sphaeranthus indicus.

Słowa kluczowe

EN

medicinal plant; herbal plant; Sphaeranthus indicus; ethanol extract; protective activity; antioxidative property; antioxidative activity; oxidative stress; gentamicin; renal damage; nephrotoxicity; rat; Wistar rat; animal test

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2009
• Tom: 55
• Numer: 4
• Opis fizyczny: p.86-95,fig.,ref.

Twórcy

autor

Mathew J E

• Manipal University, Manipal 576104, India

autor

Mantri A.

autor

Vachala S.D.

autor

Srinivasan K.K.

autor

Movaliya V.

Bibliografia

• 1. Shirwaikar A, Prabu KS, Punitha ISR. In vitro antioxidant studies of Sphaeranthus indicus (Linn). Ind J Exp Biol 2006; 44:993-6.
• 2. Chadha YR. The wealth of India. The publications and Information Directorate. CSIR. New Delhi 1976:4-5.
• 3. Said HM. Medicinal Herbal. A textbook for Medical Students and Doctors. Bait Al-Hikmah 1956:239-41.
• 4. Kirtikar KR, Basu BD. Indian Medicinal Plants. India 1918:1-2.
• 5. Vedavathy S, Mrudula VG, Sudhakar A. Tribal Medicines of Chittoor District. Tirupathi. Herbal Folklore Research Centre. India 1997:19-20.
• 6. Kokate CK, Purohit AP, Gokhale SB. Textbook of Practical Pharmacognosy. Nirali Prakashan 1962:90-93.
• 7. Ghosh MN. Fundamentals of Experimental Pharmacology. Calcutta 1984:153-8.
• 8. Ohkawa H, Ohishi N, Yahik. Assay for lipid peroxidation in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem 1979; 95:351-8.
• 9. Beutler E. Cell metabolism. A manual of biochemical methods. Orlands. 1984:153-8.
• 10. Kakker P, Das B, Viswanathan PN. A modified spectrophotometric assay of superoxide dismutase. Ind J Biochem Biophys 1984; 21:130-2.
• 11. Sinha AK. Colorimetric assay of catalase. Anal Biochem 1972; 47:389-94.
• 12. Ghalia AA, Rabboh NA, el Shalakani A, Seada L, Khalifa A. Estimation of glutathione S-transferase and its Pi isoenzyme in tumor tissues and sera of patients with ovarian cancer. Anticancer Res 2000; 20(2B):1229-35.
• 13. Houghton DC, Hartnett M, Campbell-Boswell M, Porter G, Bennett W. A light and electron microscopic analysis of gentamicin nephrotoxicity in rats. Am J Pathol 1976; 82:589-612.
• 14. Humes HD. Aminoglycoside nephrotoxicity. Kidney Int 1988; 33:900-11.
• 15. Laurent G, Kishore BK, Tulkens PM. Aminoglycoside-induced renal phospholipidosis and nephrotoxicity. Biochem Pharmacol 1990; 40:2383-92.
• 16. Simmons CF, Jr, Bogusky RT, Humes HD. Inhibitory effects of gentamicin on renal mitochondrial oxidative phosphorylation J Pharmacol Exp Ther 1980; 214:709-15.
• 17. Williams PD, Holohan PD, Ross CR. Gentamicin nephrotoxicity. II. Plasma membrane changes.Toxicol Appl Pharmacol 1981; 61:243-51.
• 18. Powell JH, Reidenberg MM. Further studies of the response of kidney lysosomes to aminoglycosides and other cations. Biochem Pharmacol 1983; 32:3213-20.
• 19. Ramsammy L, Ling KY, Josepovitz C, Levine R, Kaloyanides GJ. Effect of gentamicin on lipid peroxidation in rat renal cortex. Biochem Pharmacol 1985; 34:3895-3900.
• 20. Walker PD, Shah SV. Gentamicin enhanced production of hydrogen peroxide by renal cortical mitochondria. Am J Physiol 1987; 253:C495-499.
• 21. Yang CL, Du XH, Han YX. Renal cortical mitochondria are the source of oxygen free radicals enhanced by gentamicin. Ren Fail 1995; 17:21-6.
• 22. Ademuyiwa O, Ngaha EO, Ubah FO. Vitamin E and selenium in gentamicin nephrotoxicity. Hum Exp Toxicol 1990; 9:281-8.
• 23. Abdel Gayoum AA, Bashir AA, el-Fakhri MM. Effects of fish oil and sunflower oil supplementations on gentamicin-induced nephrotoxicity in rat. Hum Exp Toxicol 1995; 14:884-8.
• 24. Pedraza CJ, Maldonado PD, Medina CON, Olivares CIM, Granados SMA, Hernandez PR, Ibarra RME. Garlic ameliorates gentamicin nephrotoxicity: Relation antioxidant enzymes. Free Radic Bio Med 2000; 29:602-11.
• 25. Du XH, Yang CL. Nephrology, dialysis, transplantation: Official publication of the European Dialysis and Transplant Association - European Renal Association. Nephrol Dial Transplant 1994; 9:135-40.
• 26. Sandhya P, Varalakshmi P. Effect of lipoic acid administration on gentamicin-induced lipid peroxidation in rats. J Appl Toxicol 1997; 17:405-8.
• 27. Atessahin A, Karahan I, Yilmaz S, Ceribasi AO, Princci I. The effect of manganese chloride on gentamicininduced nephrotoxicity in rats. Pharmacol Res 2003; 48:637-42.
• 28. Kumar V, Kotran RS, Robbins SL. Pathologic Basis of Disease. Philadelphia 1999:15-18.