Comparison of the applicability of polish varieties of winter wheat for in vitro cultures. Part II: Induction of callus from meristematic tissue of the basis of coleoptile and the first leaf

• Autorzy: Szmider-Zur I , Biesaga-Koscielniak J. , Marcinska I. , Zielinska E. , Dubert F.

Warianty tytułu

EN

Porownanie przydatnosci krajowych odmian pszenicy ozimej do hodowli w kulturach in vitro. Czesc II. Indukcja kalusa z tkanki merystematycznej podstawy koleoptyla i pierwszego liscia

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Badania przeprowadzono na 21 krajowych odmianach pszenicy ozimej, wykorzystując do indukcji kalusa tkankę merystematyczną podstawy koleoptyla i pierwszego liścia. Podstawę porównania stanowiły żywotność, szybkość wzrostu masy oraz zdolności morfogentetyczne kalusa. Uzyskano następujące uszeregowanie odmian pod względem malejącej ich przydatności w hodowli in vitro: (Jubilatka): (Mikon, Rosa); (Lama, Olma, Weneda); (Jawa); (Begra. Kamila); (Alba); (Grana); (Rada); (Arda); (Panda); (Emika); (Almari); (Parada) (odmiany umieszczone w nawiasach nie istotnie różne). Kalus regenerowany z podstawy koleoptyla i pierwszego liścia wykazywał lepszą zdolność do różnicowania w porównaniu z kalusem z mezokotyla. Końcowe uszeregowanie odmian wykazało zgodność z poprzednim uszeregowaniem dokonanym na podstawie tych samych właściwości kalusa regenerowanego z mezokotyla, co potwierdza znaczenie czynnika genetycznego w predeterminacji właściwości tkanki kalusowej. Pozwoliło to wyróżnić odmiany najlepsze pod względem poszczególnych cech kalusa, takich jak szybki wzrost, zachowywanie przez długi e/.;is żywotności, a także zdolność do różnicowania, co umożliwi lepiej dobierać materiał roślinny do zastosowań, w których szczególnie istotna jest jedna z wyżej wymienionych cech tkanki kalusowej.

EN

The investigations were performed using 21 domestic varieties of winter wheal. The bases for the comparison were: viability, rate of growth and morphogenetic ability of the callus. The obtained classification of the varieties in the order of diminishing applicability for in vitro culture was as follows: (Jubilatka); (Mikon, Rosa); (Lama, Olma, Weneda); (Jawa); (Begra, Kamila); (Alba); (Grana), (Rada), (Arda); (Panda); (Emika); (Almari); (Parada) — (varieties in brackets do not significantly differ). Callus regenerated from the base of coleoptile and the first leaf shows higher ability for differentiation when compared to callus of mesocotyl origin. The final classification of the varieties was in good agreement with the previous one obtained by comparison of Ihe callus regenerated from the mesocotyl of the embryo. Moreover, best varieties with respect to the particular properties of the callus (fast growth, sustentation of viability during long-time culture and differentiation ability) were selected.

Słowa kluczowe

PL

hodowla roslin; pszenica ozima; odmiany roslin; odmiany krajowe; kalus; indukcja kalusa; tkanka merystematyczna; koleoptyl; pierwszy lisc; hodowla in vitro

EN

plant breeding; winter wheat; plant cultivar; domestic cultivar; callus; callus induction; meristematic tissue; coleoptile; first leaf; in vitro culture

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Agraria et Silvestria. Series Agraria
• Rocznik: 1995
• Tom: 33
• Opis fizyczny: s.35-43,rys.,bibliogr.

Twórcy

autor

Szmider-Zur I

• Zaklad Fizjologii Roslin im.F.Gorskiego PAN, ul.Podluzna 3, 30-239 Krakow

autor

Biesaga-Koscielniak J.

autor

Marcinska I.

autor

Zielinska E.

autor

Dubert F.

Bibliografia

• [1] Ahuja P. S., Pental D., Cocking E. C.: Plant Regeneration from Leaf Base. Callus and Celt Suspensions of Triticum aestivum Z. Pflanzenzuchtg 89, 139-144, 1982.
• [2] Bartok T., Sagi F: A new, endosperm-supported callus induction method for wheat (Tritical aestivum L.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture 22, 37 40. 1990.
• [3] Haydu Z., Vasil L.K.: Somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf tissues and anthers of Pennisetum purpureum Schum. Theor. Appl. Genet 59, 269-273. 1981.
• [4] Lu C., Vasil L. K.: Somatic emboryogenesis and plant regeneration from leaf tissues of Panicum maximum Jacq. Theor. Appl. Genet. 59, 275-280, 1981.
• [5] Maddock S. E., Laneaster V. A., Risiott R., Franklin J.: Plant regeneration from cultured, immature embryos and inflorescences of 25 cultivars of wheat (Triticum aestivum), .J. Exp. Bot. 34, 915-926, 1983.
• [6] Marcińska L.: Określenie zdolności tkanki kulusowej do przenoszenia indukcji rozwoju generatywnego pszenicy. Ph. D. thesis. Dept. of Agriculture, Academy of Agriculture, Cracow, 1994.
• [7] Menke-Milczarek L., Zimny J.: The Efficiency of Somatic Embryogenesis of Wheat (Triticum aestivum L.). II, Embryogenic Response of Immature Embryo Depending on Genotype arid Medium. Bulletin of the Polish Academy of Sciences, Biological Scienees 40, 3, IS9 195, 1992
• [8] Murashige T., Skoog F.: A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassay with Tobacco Tissue Culture. Physiol. Plant 15, 473-497, 1962.
• [9] Ovesna J., Lhotova M.: Study of Callus Growth and Plant Regeneration in Wheat (Triticum aestivum L). Tissue Cultures. Scientia Agriculturae Bohemoslovaca 19, 4, 243-251, 1987.
• [10] Sears R. G., Deckard E. L.: Tissue Culture Variability in Wheat: Callus Induction and Plant Regeneration. Crop. Sci. 22. 546-550, 1982.
• [11] Szmider L., Biesaga-Kościelniak J., Marcińska L., Dubert E.: Comparison of the applicability of domestic- varieties of winter wheat for in vitro cultures. Part I: Endosperm supported induction of callus mesocotyl of mature embryo. Acta Agr. et Silv. ser, Agr. XXXII, 95-104, 1994.
• [12] Wernicke W., Milkovits L..: Developmental Gradients in Wheat Leaves — Response of l.eaf Segments in Different Genotypes Culture in vitro. J. Plant Physiol. 115, 49-58, 1984.
• [13] Yamada Y.: Tissue culture studies on cereals. In: Reinert J., Bajaj Y. P. S. (Eds): Plant cell, tissue and organ culture. Springer-Verlag, Berlin 1987. 144-158.
• [14] Zamora A. B., Scott K J.: Callus formation and plant regeneration front wheal leaves. Plant Science Letters 29, 183-189, 1983.