Aktywnosc oksydazy fenolowej [lakazy] i enzymow celulolitycznych w hodowli Pleurotus ostreatus 251 w pozywce z dodatkiem roznych odpadow lignocelulozowych

• Autorzy: Gorska E B , Szczawinska P. , Russel S.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Pleurotus ostreatus 251 wytwarza lakazę, FP-azę i CMC-azę rosnąc w pożywce z dodatkiem słomy z jęczmienia, pszenicy, żyta, owsa i pszenżyta zarówno w warunkach stacjonarnych i wytrząsanych. Najwyższą aktywność lakazy wykazano w pożywce z dodatkiem słomy jęczmiennej jako jedynego źródła węgla w warunkach stacjonarnych. Dodane do pożywki słomy roślin zbożowych były dobrym induktorem do wytwarzania FP-azy i CMC-azy przez P. ostreatus 251.

EN

Pleurotus ostreatus 251 was able to produce laccase, FP-ase and CMC-ase during growth on culture medium amended with barley, wheat, rye, oat and triti- cale straw both in stationary and shaking conditions. The highest laccase activity was found after 30 days of incubation of the culture medium with barley straw as a single carbon source under the stationary conditions. The investigated cereal straw appears to be also good substrates for FP-ase and CMC-ase production by Pleurotus ostreatus 251.

Słowa kluczowe

PL

hodowla grzybow; aktywnosc enzymatyczna; oksydazy fenolowe; enzymy celulolityczne; substraty; Pleurotus ostreatus; odpady lignocelulozowe

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2005
• Tom: 506
• Opis fizyczny: s.173-180,rys.,bibliogr.

Twórcy

autor

Gorska E B

• Szkola Glowna Gospodarstwa Wiejskiego, ul.Nowoursynowska 166, 02-787 Warszawa

autor

Szczawinska P.

autor

Russel S.

Bibliografia

• Bollag J.M., Leonowicz A. 1984. Comparative studies of extracellular fungal laccases. App. Environ. Microbiol. 48: 849-854.
• Breen A., Singleton F.L. 1999. Fungi in lignocellulose breakdown and biopulping. Environmental Biotechnol. 10: 251-258.
• Burbianka M., Pliszka A., Burzyńska H. 1983. Mikrobiologia żywności. PZWL Warszawa: 520 ss.
• Ghose T.K. 1987. Measurement of cellulase activities. JUPAC, Pure Appl. Chem. 59: 257.
• Hong-Duk Young, Yung Chil Hah, Sa-Ouk Kang 1995. Role of laccase in lignin degradation by white-rot fungi. FEMS Microbiol. Lett. 132: 183-188.
• Koroleva O., Stepanova E., Gavrilova V.P., Yakovleva N.S., Landesman E.O., Yavmetdinov I.S., Yaropol A. I. 2002. Laccase and Mn-peroxidase production by Coriolus hirsutus strain 075 in a jar fermentor. J. Biosc. Bioengineering 93: 449-455.
• Leonowicz A., Grzywnowicz K. 1981. Quantitative estimation of laccase forms in some white-rot fungi using syringaldazine as a substrate. Enzyme Microb. Technol. 3: 55-57.
• Levin L., Forchiassin F. 2001. Ligninolytic enzymes of the white rot Basidiomycete Trametes trogii. Acta Biotechnol. 21: 179-186.
• Masaphy S., Levanon D. 1992. The effect of lignocellulase on lignocellulolytic activity of Pleurotus pulmonaries in submerged culture. Appl. Microbiol. Biotechnol. 36: 828-832.
• Miller G.L. 1959. Use of dinitrosalicylic acidreagent for determination of reducing sugar. Analy. Chem. 31: 426-428.
• Orly Ardon, Zohar Kerem, Yitzhak Hadar 1996. Enhancement of laccase activity in liquid cultures of the ligninolytic fungus Pleurotus ostreatus by cotton stalk extract. J. Biotechnol. 51: 201-207.
• Perez J., Rubia M.D.J., Martinez J. 2002. Biodegradation and biological treatments of cellulose, hemicellulose and lignin: an overview. Int. Microbiol. 5: 53-63.
• Shi Yu Fu, Hui-Sheng Yu, Buswell J. 1997. Effect of nutrient nitrogen and manganese on manganese peroxidase and laccase production by Pleurotus sajor-caju. FEMS Microbiol. Lett. 147: 133-137.
• Tekere M., Mswaka A.Y., Zvauya R., Read J.S. 2001. Growth, dye degradation and ligninolytic activity studies on Zimbabwean white rot fungi. Enzyme Microbiol. Technol. 28: 420-426.