Haploid embryogenesis in capsaicinoid forms of soft-flesh Capsicum spp.

• Autorzy: Nowaczyk P , Nowaczyk L.

Warianty tytułu

PL

Haploidalna embriogeneza u kapsaicynoidowych form soft-flesh Capsicum spp.

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The investigated material involved three pungent soft-flesh forms selected from a Capsicum frutescens L. x C. annuum L. hybrid. Capsaicinoid contents, determined by the HPLC technique in the fruit pericarp, amounted to 100 mg. kg-1. The anthers were cultured in vitro employing the method described by Chambonnet (1988) for C. annuum L. with modification involving an increase in kinetin content in R1 medium to 0.2 mg. dm-3. The efficacy of embryogenesis ranged between 0.25% and 4.12%, related to the ratio of the number of obtained plants to the number of cultured anthers, depending on genotype and the employed medium. Conversion of the embryos into plants and the general efficacy of androgenesis were highest in one line. In all of them, cytometrically determined DNA content in cells of leaves in the obtained regenerates amounted 1C.

PL

Materiałem badawczym były trzy ostre linie soft-flesh wyselekcjonowane z mieszańca Capsicum frutescens L. x C. annuum L. Zawartość kapsaicynoidów, oznaczona metodą HPLC, w perykarpie owoców sięgała poziomu 100 mg. kg-1. Pylniki były prowadzone w kulturach in vitro według metody opisanej przez Chamboneta (1988) dla C. annuum L. z modyfikacją w zakresie zwiększenia udziału kinetyny w pożywce R1 do 0,2 mg. dm-3. Efektywność embriogenezy wahała się od 0,25% do 4,12%, w relacji liczba wyłożonych pylników – liczba uzyskanych roślin, zależnie od genotypu i pożywki. Konwersja zarodków w rośliny i ogólna efektywność androgenezy była najwyższa u jednej linii. Zawartość DNA określona cytometrycznie w komórkach liści uzyskanych regeneratów wynosiła u wszystkich z nich 1C. Rośliny były zatem efektem haploidalnej androgenezy.

Słowa kluczowe

EN

capsicum; interspecific hybrid; genetic variability; hybrid; DNA content; genotypic response; haploid; kinetin; embryogenesis; capsaicinoid form

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2009
• Tom: 55
• Numer: 3
• Opis fizyczny: p.251-256,fig.,ref.

Twórcy

autor

Nowaczyk P

• University of Technology and Life Sciences, Bernardynska 6, 85-029 Bydgoszcz, Poland

autor

Nowaczyk L.

Bibliografia

• 1. Srinivasan K. Spices as influencers of body metabolism: an overview of three decades of research. Euphytica 2005; 158:347-57.
• 2. Deorukhakar A, Krishnan S, Sehti G, Aggarwal B. Back to basics: how natural products can provide the basis for new therapeutics. Expert Opin Inverting Drugs 2007; 16,11:1753-73.
• 3. Nowaczyk P, Nowaczyk L, Banach M, Przyborowska D. Technological Characteristics of Capsicum spp. Soft-Flesh Forms. Acta Hort 2005; 744:455-9.
• 4. Ferrie AMR. Doubled haploid production in nutraceutical species: a review. Euphytica 2007; 158:347-57.
• 5. Nowaczyk P, Kisiała A, Olszewska D. Induced androgenesis of Capsicum frutescens L. Acta Physiol Plant 2006; 28(1):35-9.
• 6. Collins MD, Wasmund LM, Bosland PW. Improved Method for Quantifying Capsaicinoids in Capsicum Using High-performance Liquid Chromatography. Hort Science 1995; 30,1:137-9.
• 7. Chambonnet D. Production of haploid pepper plants. Bulletin Interne de la Station d’Amelioration des Plantes Maraicheres d’Avignon-Montfavet. France 1988:1-10.
• 8. Galbraith DW, Harkins KR, Maddox JM, Ayres NM, Sharma DP, Firoozabady E. Rapid flow cytometry analysis of the cell cycle in intact plant tissues. Science 1983; 122:468-75.
• 9. Nowaczyk P, Nowaczyk L. The quality features and the fertility of pepper (Capsicum annuum L.) hybrid initial forms. In: Abak F, Buyukalaca S, Dasgan Y (eds.). XI Eucarpia Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant. Gurdal Ofset Ltd. Adana 2001:53-6.
• 10. Koleva-Gudeva LR, Spasenoski M, Traikowa F. Somatic embryogenesis in pepper anther culture: The effect of incubation treatment and different media. Sci Hort 2006; 111(2):114-9.
• 11. Kintzios S, Drossopoulos JB, Lymperopoulos Ch. Effect of vitamins and inorganic micronutrients on callus growth and somatic embryogenesis from leaves of chili pepper. Plant Cell Tiss Org Cult 2001; 67:55-62.
• 12. Supena EDJ, Suharsono S, Jacobsen E, Custers JBM. Successful development of a shed-microspore culture protocol for doubled haploid production in Indonesian hot pepper (Capsicum annuum L.). Plant Cell Rep 2005; 25:1-10.
• 13. Kim M, Jang IC, Park EJ, Yoon M, Lee Y. Embriogenesis and plant regeneration of hot pepper (Capsicum annuum L.) through isolated microspore culture. Plant Cells Rep 2008; 27(3):425-34.
• 14. Mityko J, Andrasfalvy A, Csillery G, Fari M. Anther-culture response in different genotypes and F1 hybrids of pepper (Capsicum annuum L.). Plant Breed 1995; 114:78-80.
• 15. Rodeva VN, Irikova TP, Todorova VJ. Anther culture of pepper (Capsicum annuum L.): comparative study on effect of genotype. Biotechnol Biotec Eq 2004; 18:34-8.
• 16. Nowaczyk P, Olszewska D, Kisiała A. Individual reaction of Capsicum F2 hybrid genotypes in anther cultures. Euphytica 2009;168:225-33.