Ocena przydatnosci metody ELISA do oznaczania poziomu przeciwcial dla enterowirusow w surowicy i plynie mozgowo-rdzeniowym

• Autorzy: Binduga I. , Gut W. , Jarzabek Z.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

U osób z neuroinfekcją enterowirusową analizowano poziom przeciwciał w surowicy i płynie mózgowo-rdzeniowym. Porównano następujące odczyny: wiązania dopełniacza, neutralizacji, ELISA dla enterowirusowych IgG i IgM. Badanie testem ELISA IgM dla enterowirusów w próbce surowicy z pierwszego pobrania pozwala na potwierdzenie zakażenia u 75% badanych osób, a ocena miejscowej produkcji IgG w oun w tym samym czasie u około 70% badanych, co wskazuje na przydatność tej metody do szybkiej diagnostyki zakażeń enterowirusami.

EN

The usefulness of the methods was compared: complement fixation test (CFT), neutralization test (NT) and ELISA IgG and IgM against enteroviruses for the evaluation of specific immune reaction in sera and cerebrospinal fluid (CSF) samples of patients with confirmed enterovirus infections. The criteria were established for the assessment of ELISA results in rapid diagnosis of enterovirus neuroinfections. The criteria accepted by the producer lowered the sensitivity of the method and the possibility of recognition of local synthesis of antibodies in the CNS. The use of serum negative in CFT and negative CSF as reference for the determination made possible using of that kit for rapid diagnosis of neuroinfections. The modified ELISA IgG test makes possible determination of antibodies in CSF and serum, and accepting the generally recognized criteria for local production of antibodies in the CNS the ELISA test makes possible rapid diagnosis of neuroinfections which is not possible by other methods.

Słowa kluczowe

PL

surowica krwi; enterowirusy; przeciwciala; oznaczanie; plyn mozgowo-rdzeniowy; test ELISA

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Doświadczalna i Mikrobiologia
• Rocznik: 1998
• Tom: 50
• Numer: 3-4
• Opis fizyczny: s.277-284,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Binduga I.

• Panstwowy Zaklad Higieny, 00-791 Warszawa, ul.Chocimska 24

autor

Gut W.

autor

Jarzabek Z.

Bibliografia

• 1. Bell EJ, McCartney RA, Basquill D, Chaudhuri AKR. μ-antibody capture ELISA for the rapid diagnosis of enterovirus infections in patients with aseptic meningitis. J Med Virol 1986; 19: 213-17.
• 2. Boman J, Nilsson B, Juto P. Serum IgA, IgG, IgM responses to different Enteroviruses as measured by a Coxsackie B5-based indirect ELISA. J Med Virol 1992; 38: 32-35.
• 3. Brown F, Wild F. Variation in the coxsackievirus type B5 and its possible role in the etiology of swine vesicular disease. Intervirology 1974; 3: 125-28.
• 4. Chonmaitree T, Ford C, Sanders C, Lucia HL. Comparison of cell cultures for rapid isolation of enteroviruses. J Clin Microbiol 1989; 26: 2576-80.
• 5. Frisk G, Nilsson E, Ehrnst A, Diderholm H. Enterovirus IgM detection: Specificity of μ-antibody-capture radioimmunoassays using virions and procapsids of Coxsackie B virus. J Virol Meth 1989; 24: 191-202.
• 6. Grandien M, Forsgren M, Ehrnst A. Enteroviruses. W: Diagnostic procedures for viral, rickettsial, and chlamydial infections. Red. Lennette EH, Lennette DA i Lennette ET. American Public Health Association, Washington, DC 1995; 279-97.
• 7. Grist NR, Bell EJ, Assaad F. Enteroviruses in human disease. Prog Med Virol 1978; 24: 114-57.
• 8. Gut W. Wirusologiczne i immunologiczne metody diagnostyki wirusowych zakażeń ośrodko¬wego układu nerwowego. W: Postępy neuroradiologii i dziedzin pokrewnych w zakresie diagnostyki i terapii chorób układu nerwowego. Postępy w diagnostyce biochemicznej chorób układu nerwowego. Red. M Wieczorkiewicz i K Niedziela, Ctr Med Szk Podypl, Warszawa 1987; 2-15.
• 9. Gut W. Diagnostyka laboratoryjna zakażeń wirusowych. Profilaxis, Warszawa, październik 1993.
• 10. Gut W, Kowalewska A. Charakterystyka wirusa kleszczowego zapalenia mózgu i metody diagnostyczne stosowane do potwierdzenia wywołanych przez wirus neuroinfekcji. Medycyna Ogólna 1995, I (XXX), 2: 110-15.
• 11. Gut W, Kańtoch M. Diagnostyczne badania wirusologiczne: aktualne możliwości i problemy. Post Nauk Med 1996; 9: 174-79.
• 12. Hermann JE, Hendry RM, Collins MF. Factors involved in enzyme-linked immunoassay of viruses and evaluation of the method for identification of enteroviruses. J Clin Microbiol 1979; 10: 210-17.
• 13. Hummeler K, Hamparian V. Studies on the complement fixing antigens of poliomyelitis. Demonstration of type and group-specific antigens in native and heated viral preparations. J Immunol 1961; 87: 623-26;
• 14. Lipson SM, Walderman R, Costello P, Szabo K. Sensitivity of rhabdomyosarcoma and guinea pig embryo cell cultures to field isolates of difficult-to-cultivate group A coxsackieviruses. J Clin Microbiol 1988; 26: 1298-1303.
• 15. Muir P, Kämmerer U, Kom K i inni. Molecular typing of Enteroviruses: Current Status and Future Requirements. Clin Microbiol Rev 1998; 11: 202-27.
• 16. Prabhakar BS, Haspel NV, McClintock PR, Notkins AL. High frequency of antigenic variants among naturally occurring human coxsackie B4 virus isolates identified by monoclonal antibodies. Nature 1982; 300: 374-76.
• 17. Rotbart HA. Enteroviral infections of the central nervous system. Clin Inf Dis 1995; 20: 971-81.
• 18. Schmidt NJ, Dennis J, Frommhagen LH, Lennette EH. Serologic reactivity of certain antigens obtained by fractionation of Coxsackie viruses in cesium chloride density gradients; J Im¬munol 1963; 90: 654-62.
• 19. Schmidt NF, Guenther RW, Lennette EH. Typing of ECHO virus isolates by immune serum pools. The „Intersecting Serum Scheme”. J Immunol 1961; 87: 623-26.
• 20. Swanink CMA, Veenstra L, Poort YAGM i inni. Coxsackievirus B1 - based antibody-capture enzyme-linked immunosorbent assay for detection of IgG, IgM, IgA with broad specificity for Enteroviruses; J Clin Microb 1993; 31: 3240-46.