Comparison of economic effectiveness of applying different hormonal preparations for reophile cyprinid fish reproduction stimulation based on the example of asp Aspius aspius [L.] and ide Leuciscus idus [L.]

• Autorzy: Hakuc-Blazowska A , Kupren K. , Turkowski K. , Targonska K. , Jamroz M. , Krejszeff S. , Kwiatkowski M. , Zarski D. , Kucharczyk D.

Warianty tytułu

PL

Porownanie oplacalnosci stosowania roznych preparatow hormonalnych do symulacji rozrodu karpiowatych ryb reofilnych na przykladzie bolenia Aspius aspius [L.] i jazia Leuciscus idus [L.]

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Assessment of the economic effectiveness of hormonal stimulation application in reophile cyprinid fish reproduction based on the example of asp Aspius aspius (L.) and ide Leuciscus idus (L.) was the goal of the studies presented in this paper. Three hormonal preparations: Ovopel, Ovaprim and carp pituitary were tested during this study. Economic effectiveness of application of those hormonal preparations for asp and ide reproduction stimulation considering the relative working fertility of asp and ide, effectiveness of the selected hormonal preparations and their price were assessed. The cost of hormonal injection per 1000 spawn grains and per 1000 spawn grains in eyed stage was assumed for the measure of economic effectiveness. In case of both studied species injections with Ovaprim and Ovopel were more economic than stimulation with carp pituitary. This is linked to the high application effectiveness of GnRH analogues with dopamine inhibitors found in controlled reproduction of asp and ide. The effectiveness of those hormonal preparations is confirmed by a high percentage of ovulations as well as the high survival rate of the embryos to the eyed stage.

PL

Celem badań była ocena ekonomicznej efektywności stosowania stymulacji hormonalnej w rozrodzie karpiowatych ryb reofilnych na przykładzie bolenia Aspius aspius (L.) i jazia Leuciscus idus (L.). Do badań zastosowano trzy środki hormonalne: Ovopel, Ovaprim i przysadkę mózgową karpia. Oceniono efektywność ekonomiczną zastosowania tych preparatów do stymulacji rozrodu bolenia i jazia, biorąc pod uwagę płodność roboczą względną bolenia i jazia, skuteczność wybranych preparatów hormonalnych i ich cenę. Jako miarę efektywności ekonomicznej przyjęto koszt iniekcji hormonalnej w przeliczeniu na uzyskane 1000 ziaren ikry i na 1000 ziaren ikry w stadium zaoczkowania. W przypadku obu badanych gatunków iniekcje hormonalne z użyciem Ovaprimu i Ovopelu w porównaniu z stymulacją przysadką mózgową karpia są bardziej opłacalne. Ma to związek ze stwierdzoną wysoką skutecznością stosowania analogów GnRH wraz z inhibitorami dopaminy w kontrolowanym rozrodzie bolenia i jazia. O skuteczności tych środków hormonalnych świadczy zarówno wysoki odsetek owulacji, jak i wysoki odsetek przeżywalności embrionów do stadium zaoczkowania.

Słowa kluczowe

PL

hormonal preparation; application; cyprinid fish; fish; reproduction stimulation; asp; Aspius aspius; ide; Leuciscus idus; hormonal stimulation; economic effectiveness

• Wydawca: -
• Czasopismo: Polish Journal of Natural Sciences
• Rocznik: 2009
• Tom: 24
• Numer: 4
• Opis fizyczny: p.224-234,ref.

Twórcy

autor

Hakuc-Blazowska A

• University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-957 Olsztyn, Poland

autor

Kupren K.

autor

Turkowski K.

autor

Targonska K.

autor

Jamroz M.

autor

Krejszeff S.

autor

Kwiatkowski M.

autor

Zarski D.

autor

Kucharczyk D.

Bibliografia

• AUGUSTYN L. 2002. Sztuczny rozród świnki, Chondrostoma nasus (L.) i brzany, Barbus barbus (L.) z Popradu. [W:] Wylęgarnia 2001–2002. Red. Z. Okoniewski, E. Brzuska. Wyd. IRŚ, Olsztyn: 29–36.
• BABIAK I., GLOGOWSKI J., KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1998. Cryopreservation of sperm from asp Aspius aspius. Progr. Fish-Cult., 60: 146–148.
• BIENIARZ K., EPLER P. 1991. Rozród ryb. Wyd. Lettra, Kraków, 1–202.
• BŁACHUTA J. 1998. Rola i znaczenie rodzimych gatunków karpiowatych ryb reofilnych w ekosystemach rzek. [W:] Karpiowate ryby reofilne. Red. H. Jakucewicz, R. Wojda. Wyd. PZW, Warszawa, 17–21.
• CEJKO B.I., KOWALSKI R.K., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., KREJSZEFF S., ŻARSKI D., GLOGOWSKI J. 2009. Influence of the length of time after hormonal stimulation on selected parameters of milt of ide Leuciscus idus L.. Aquacult. Res. [in press].
• CIERSZKO A., DĄBROWSKI K., KUCHARCZYK D., DOBOSZ S., GORYCZKO K., GLOGOWSKI J. 1999. The presence of uric acid, an antioxidantive substance, in fish seminal plasma. Fish Physiol. Biochem., 21(4): 313–315.
• CIEŚLA M. 1998. Wyniki badań nad opracowaniem metodyki sztucznego rozrodu jazia, Leuciscus idus. [In:] Karpiowate ryby reofilne. Red. H. Jakucewicz, R. Wojda. Wyd. PZW, Warszawa, 41–49.
• DAS S.K. 2004. Evaluation of a New Spawning Agent, Ovopel in Induced Breeding of Indian Carps. Asian Fish. Sci., 17: 313–322.
• DVORAK J. 1982. Umely vyter a podchov pludku Parmy. Ryb., 1: 53–54.
• GLOGOWSKI J., BABIAK I., KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M. 1997. The effect of individual male variability on cryopreservation of bream (Abramis brama (L.)) sperm. Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 281–285.
• GLOGOWSKI J., BABIAK I., KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M., PIROS B. 1999. Some properties of bream Abramis brama L. sperm and its cryopreservation. Aquacult. Res., 30: 765–772.
• HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KUCHARCZYK D., KUPREN K., TARGOŃSKA K. 2008. Comparison of economic effectiveness of pikeperch summer fry production independence of reproduction methods. [In:] Percid Fish Culture For Research to Production. Eds. P. Fontaine, P. Kestemont, F. Teletcheta, N. Wang. Presses Universitaires de Namur, Namur (Belgium), 110–111.
• HORVATH L., SZABO T., BURKE J. 1997. Hatchery testing of GnRH analogue-containing pellets on ovulation in four cyprinid species. Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 281–292.
• JAMRÓZ M., HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KUCHARCZYK D., KWIATKOWSKI M., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., MAMCARZ A. 2008a. Wpływ stosowania preparatu Ovaprim na efekty pozasezonowego oraz sezonowego rozrodu jazia (Leuciscus idus L.) w warunkach kontrolowanych. [W:] Biotechnologia w akwakulturze. Red. Z. Zakęś, J. Wolnicki, K. Demska-Zakęś, R. Kamiński, D. Ulikowski. Wyd. IRS, Olsztyn, 159–164.
• JAMRÓZ M., KUCHARCZYK D., HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KREJSZEFF S., KUJAWA R., KUPREN K., KWIATKOWSKI M., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., CEJKO B.I., GLOGOWSKI J. 2008b. Comparing the effectiveness of Ovopel, Ovaprim and LH-RH analogue used in the controlled reproduction of ide, Leuciscus idus (L.). Arch. Pol. Fish., 16(4): 363–370.
• KŁODZIŃSKA H., OKONIEWSKI Z. J. 1998. Ovopel – nowy środek do stymulacji rozrodu ryb. [W:] Wylęgarnia 1997–1998. Red. J. Waluga. Wyd. IRS, Olsztyn, 45–49.
• KOURIL J., PRIKRYL I. 1988. Pracovni plodnost jikernacek bolena draveho (Apius aspius L.) z udolni nadrze Żelivka pri umelem vyteru. Bul. VURH, Vodnany, 4: 16–19.
• KOWALSKI R., GLOGOWSKI J., KUCHARCZYK D., GORYCZKO K., DOBOSZ S., CIERESZKO A. 2003. Proteolytic activity and electrophoretic profiles of proteases from seminal plasma of teleosts. J. Fish Biol., 63: 1008–1019.
• KOWALSKI R., GLOGOWSKI J., KUCHARCZYK D., MAK M., DOBOSZ S., ZAKĘŚ Z., CIERESZKO A. 2004. Characterization of gelatinolytic activity in seminal plasma of some teleost fish. Aquacult. Int., 12: 57–68.
• KREJSZEFF S., KUCHARCZYK D., KUPREN K., TARGOŃSKA K., MAMCARZ A., KUJAWA R., KACZKOWSKI Z., RATAJSKI S. 2008. Reproduction of chub, Leuciscus cephalus L., under controlled conditions. Aquacult. Res., 39: 907–912.
• KREJSZEFF S., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2009. Domestication affects spawning of the ide (Leuciscus idus) – preliminary study. Aquaculture, 295: 145–147.
• KUCHARCZYK D. 2002. Rozród kontrolowany i androgeneza wybranych ryb karpiowatych. UWM, Olsztyn, Rozpr. Monogr., 63: 1–80.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., ŁUCZYŃSKI M., GLOGOWSKI J., BABIAK I., WYSZOMIRSKA E. 1997a. Induced spawning in bream, Abramis brama (L.), using carp pituitary extract and hCG. Aquacult. Res., 28: 139–144.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E. 1997b. Artificial spawning in bream (Abramis brama (L.)). Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 203–207.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E. 1997c. Induced spawning in rudd (Scardinius erythrophthalmus L.). Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 209–213.
• KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M., KUJAWA R., CZERKIES P. 1997d. Effect of temperature on embryonic and larval development of bream (Abramis brama L.). Aquat. Sci., 59: 214–224.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., SKRZYPCZAK A.,WYSZOMIRSKA E. 1998a. Rozród bolenia (Aspius aspius), jazia (Leuciscus idus L.) i klenia (Leuciscus cephalus L.) w warunkach kontrolowanych poza okresem tarła naturalnego. [W:] Karpiowate ryby reofilne. Red. H. Jakucewicz, R. Wojda. Wyd. PZW, Warszawa, 57–64.
• KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M., KUJAWA R., KAMIŃSKI R., ULIKOWSKI D., BRZUZAN P. 1998b. Influences of temperature and food on early development of bream (Abramis Brama L.). Arch. Hydrobiol., 141: 243–256.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E., ULIKOWSKI D. 1999. Artificial spawning of ide Leuciscus idus under controlled conditions. EJPAU 2(2): 05 (www.ejpau.media.pl).
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., TARGOŃSKA-DIETRICH K., WYSZOMIRSKA E., GLOGOWSKI J., BABIAK I., SZABO T. 2005. Induced spawning in bream (Abramis brama L.) using pellets containing GnRH. Czech J. Anim. Sci., 50: 89–95.
• KUCHARCZYK D., BOREJKO A., TARGOŃSKA K., ROŻEK W., CHWALUCZYK R., KOWALSKI R., GLOGOWSKI J. 2007. Wpływ Ovaprimu na efekty rozrodu jazia (Leuciscus idus). [W:] Rozród, podchów, profilaktyka ryb jeziorowych i innych gatunków. Red. J. Wolnicki, Z. Zakęś, R. Kamiński. Wyd. IRS, Olsztyn, 31–35.
• KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., HLIWA P., GOMUŁKA P., KWIATKOWSKI M., KREJSZEFF S., PERKOWSKI J. 2008. Reproductive parameters of common carp (Cyprinus carpio L) spawners during natural season and out-of-season spawning. Reprod. Biol., 8 (3): 285–289.
• KUJAWA R. 2004. Biologiczne podstawy podchowu larw reofilnych ryb karpiowatych w warunkach kontrolowanych. UWM, Olsztyn, Rozpr. Monogr., 88: 1–88.
• KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1997. Effect of temperature on embryonic development of asp (Aspius aspius L.). Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 139–143.
• KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1999. A model system for keeping spawners of wild and domestic fish before artificial spawning. Aquacult. Eng., 20: 85–89.
• KUPREN K., BŁAŻOWSKA-HAKUĆ A., TARGOŃSKA K., KUCHARCZYK D., TURKOWSKI K. 2008a. Applications of chosen hormonal agents in pikeperch reproduction under controlled conditions – some economic aspects. [In:] Percid Fish Culture For Research to Production. Eds. P. Fontaine, P. Kestemont, F. Teletcheta, N. Wang. Presses Universitaires de Namur, Namur (Belgium), 120–121.
• KUPREN K., TURKOWSKI K., KUCHARCZYK D., KREJSZEFF S., ŻARSKI D., HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., TARGOŃSKA K., KWIATKOWSKI M., JAMRÓZ M., CZARKOWSKI T. 2008b. Economic aspects of rearing larval asp, Aspius aspius (L.) and ide, Leuciscus idus (L.) in closed recirculating systems. Arch. Pol. Fish., 16(4): 413–420.
• PENCZAK T., KRUK A., KOSZALIŃSKI H., ZIĘBA G. 2000. Ichtiofauna rzeki Bzury. Rocz. Nauk. PZW, 13: 23–33.
• PETER R.E., LIN H.R., KRAAK G. VAN DER, LITTLE M. 1993. Releasing hormones, dopamine antagonists and induce spawning. [In:] Recent Advances in Aquaculture. Eds. Muir J.F., Roberts R.J. Blackwell Sci. Publ. Ltd, Oxford, 25–30.
• ŚLIWIŃSKI J. 1998. Sztuczne tarło bolenia (Aspius aspius L.). [W:] Karpiowate ryby reofilne. Red. H. Jakucewicz, R. Wojda. Wyd. PZW, Warszawa, 57–64.
• TARGOŃSKA-DIETRICH K., ZIELAZNY T., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., KUJAWA R. 2004. Out-of-season spawning of cultured ide (Leuciscus idus L.) under controlled conditions. EJPAU, 7(2): 02 (www.ejpau.media.pl).
• TLUSTY M. 2002. The benefits and risks of aquacultural production for the aquarium trade. Aquaculture, 205: 203–219.
• TURKOWSKI K., KUCHARCZYK D., KUPREN K, HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KWIATKOWSKI M. 2008. Economic aspects of the experimental rearing of asp, Aspius aspius (L.), ide, Leuciscus idus (L.), and dace Leuciscus leuciscus (L.) under controlled conditions. Arch. Pol. Fish., 16(4): 397–411.
• VOSTRADOVSKY J., VASA J. 1981. Bolen dravy (Aspius aspius L.) – nowy obiekt umeleho chovu. Bul. VURH Vodany, 3: 10–13.
• WITKOWSKI A., CIEŚLA M., NAPORA K. 1997. Jaź. Wyd. IRS, Olsztyn, 1–158.
• WOJTCZAK M., GLOGOWSKI J., KOŁDRAS M., KUCHARCZYK D., CIERESZKO A. 2003. Characterization of protease inhibitors of seminal plasma of cyprinids. Aquat. Liv. Res., 16(5): 461–465.
• WOLNICKI J. 2005. Intensive rearing of early stages of cyprinid fishes under controlled conditions. Arch. Pol. Fish. 13(1): 5–87.
• ŻARSKI D., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., CHWALUCZYK R., KREJSZEFF S., KWIATKOWSKI M., JAMRÓZ M. 2008a. Wpływ środka hormonalnego Ovaprim na efektywność rozrodu bolenia (Aspius aspius) w warunkach kontrolowanych. [In:] Biotechnologia w akwakulturze. Red. Z. Zakęś, J. Wolnicki, K. Demska-Zakęś, R. Kamiński, D. Ulikowski. Wyd. IRS, Olsztyn, 153–158.
• ŻARSKI D., TARGOŃSKA K., RATAJSKI S., KACZKOWSKI Z., KUCHARCZYK D. 2008b. Reproduction of nase, Chondrostoma nasus (L.), under controlled conditions. Arch. Pol. Fish., 16(4): 355–362.
• ŻARSKI D., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., JAMRÓZ M., KREJSZEFF S., MAMCARZ A. 2009. Application of Ovopel, Ovaprim and their combination in controlled reproduction of two rheophilic cyprinids. Pol. J. Nat. Sc., 24(4): 235–244.