Kwitnienie mieszańca Cattleya (Orchidaceae) w kulturach in vitro

• Autorzy: Cybularz-Urban T. , Bach A.

Warianty tytułu

EN

Flowering of Cattleya hybrid (Orchidaceae) in vitro cultures

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Materiałem doświadczalnym był blado-fioletowo kwitnący mieszaniec Cattleya waltersiana x C. marone pochodzący z Ogrodu Botanicznego UJ, porażony wirusem pierścieniowej plamistości Odontoglossum (ORSV). Materiał ten został wprowadzony w warunki kultury in vitro przez izolację merystemów z wierzchołków wzrostu pędów (wielkości około 2-4 mm), a następnie namnażany w formie kultury pędowej na pożywce MS w modyfikacji Kozak [1991]. Kulturę prowadzono w stałej temperaturze 25°C±2°C, przy wilgotności względnej wynoszącej około 70%, w warunkach fotoperiodu 16/8 godz. (dzień/noc) i natężeniu promieniowania światła białego wynoszącego 80 µmol·m⁻²·s⁻¹, pasażując w 8-tygodniowych cyklach. Po 14 miesiącach kultury na niektórych eksplantatach pędowych wykształciły się spontanicznie drobne zniekształcone kwiaty. Kwitnące w kulturach in vitro pędy charakteryzowały się brakiem wyraźnych zmian u liści, jednakże kwiaty nie były w pełni wykształcone morfologicznie. Najokazalsza część okwiatu odpowiadała warżce osłaniającej niedokształcony prętosłup. Wybarwienie kwiatów było zbliżone do wybarwienia okazałych kwiatów roślin donorowych prezentujących typowe dla obecności tego wirusa rozbicie barwy. Ich zakwitanie mogło być wywołane wysokim poziomem cytokinin lub/i obecnością ORSV.

EN

The study was conducted on a hybrid Cattleya waltersiana x C. marone having light-violet flowers, derived from the Botanical Garden of Jagiellonian University. The plant was infected with Odontoglossum ringspot tobamovirus (ORSV). Shoot apical meristem (2-4 mm long) was isolated from this material, transferred into in vitro culture and then, propagated as a shoot culture on the MS medium with Kozak’s modification [1991]. The culture was maintained at 25°C±2°C, relative humidity 70%, under 16 h photoperiod from white light of 80 µmol·m⁻²·s⁻¹ intensity, and with 8-week subcultures. Some shoot explants spontaneously developed tiny deformed flowers after 14 months of culture. The shoots flowering in in vitro cultures were characterized by unchanged leaves but flowers were not fully developed morphologically. The most manifest part of the perianth corresponded to the lip covering underdeveloped column. The color of flowers was similar to large flowers of the donor plants, showing color break typical for the presence of the virus. The flowering might have been caused by a high level of cytokines and/or ORSV infection.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2007
• Tom: 523
• Opis fizyczny: s.51-57,fot.,bibliogr.

Twórcy

autor

Cybularz-Urban T.

autor

Bach A.

Bibliografia

• Campos K. O., Kerbauy G. B. 2004. Thermoperiodic effect of flowering endogenous hormonal status in Dendrobium (Orchideaceae). Journal of Plant Physiol. 161: 1385 - 1387.
• Chang C., Chang W. C. 2003. Cytokinins promotion of flowering in Cymbidium ensi - folium var. misericors in vitro. Plant Growth Regul. 39: 217 - 221.
• Chia T. F., Arditti J., Segren M. J., Hew Ch. S. 1999. Review: in vitro flowering in orchids. Lindleyana 14 (2): 60 - 76.
• Clark M. F., Adams S. M. 1977. Characteristics of the microplate method of enzyme - linked immunosorbent assay for the detection of plant viruses. J. Gen. Virol. 34: 457 - 483.
• Cybularz-Urban T., Hanus-Fajerska E. 2006. Therapeutic effect of cytokinin sequence application on virus-infected Cattleya tissue cultures. Acta Biol. Crac. Series Bot.48/2: 27 - 32.
• Duan J. X., Yazawa S. 1994. In vitro floral development in x Doriella Tiny (Doritis pulcherrima xKingiellaphillipinensis). Scientia Hort. 59: 253 - 264.
• Duan J. ., Yazawa S. 1995. Floral induction and development in Phalaenopsis in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 43: 71 - 74.
• Grant M., Mansfield J. 1999. Early events in host - pathogen interactions. Curr. Opin. Plant Biol. 2/4: 312 - 319.
• Hsu H. F., Yang Ch. H. 2002. An orchid (Oncidium Grower Ramsey) A P3-like MADS gen regulates floral formation and invitation. Plant Cell Physiol. 43(10): 1198 - 1209.
• Kerbauy G. B. 1984. In vitro flowering of Oncidium varicosum mericlones (Orchidaceae). Plant Sci. Lett. 35: 73 - 75.
• Kostenyuk J., Oh B. J., So I. S. 1999. Induction of early flowering in Cymbidium niveo- marginatum Mak in vitro. Plant Cell Rep. 19: 1 - 5.
• Kozak D. 1991. Shoot regeneration from various parts of Narcissus cv. Carlton through tissue culture. Prace ISiK, Ser. B 16: 41 - 47.
• Martinez C., Pons E., Prats G., Leon J. 2004. Salicylic acid regulates flowering time and links defence responses and reproductive development. Plant J. 37: 209 - 217.
• Mudalige G. R., Keuhnle R. . 2004. Orchid biotechnology in production and improvement. Hort Science 39(1): 11 - 17.
• Nowak B. 1999. Regeneracja śliwy (Prunus domestica L.) odmiany Węgierka Zwykła z eksplantatów porażonych wirusem ospowatości śliw. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 469: 581 - 586.
• Scorsa R. 1982. In vitro flowering. Hort. Rev. 4: 106 - 127.
• Taylor N. J., Light M. E., Van Staden J. 2005. In vitro flowering of Kniphofia leucocephala: influence of cytokinins. Plant Cell. Tissue and Organ Culture 83: 327 - 333.
• Tran Thanh Van K. 1999. Floral and vegetative defferentiation in vitro and in vivo, w: Morfogenesis in Plant Tissue Cultures. Soh W. Y., Bhojwani Sat S. (Eds), Kluwer, Dordrecht, The Netherlandes: 215 - 233.
• Tsai W. C., Lee P. F., Chen H. I., Hsiao Y. Y., Wei W. J., Pan Z. N., Chuang M. H., Kuoh C. S., Chen H. H. 2005. PeMADS6, a GLOBOSA/PISTILLATA-like gen in Phalaenopsis questris involved in petaloid formation and correlated with flower longevity and ovary development. Plant Cell Physiol. 46(7): 1125 - 1139.
• Tsao C. V., Postman I. D., Reed B. M. 1999. Single and multiple virus infections reduce in vitro multiplication of Malling Landmark’ raspberry. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 35/3, 41A: 1013.
• Vaz A. P. A., Figueiredo-Ribeiro R. C. L., Kerbauy G. B. 2004. Photoperiod and temperature effect on growth and flowering of P. pussilla,an epiphyc orchid. Plant Physiology and Biochemistry 42: 411 - 415.
• Wilson W. J., Kennedy G. C., Peacock W., Dennis S. E. 2005. Microarray analysis reveals vegetative molecular phenotypes of Arabidopsis flowering-time mutants. Plant Cell Physiol. 46(8): 1190 - 1201.
• Wisler G. C. 1989. How to control orchid viruses: The complete guidebook. Published by Maupin Hause Publishers.
• Yon H. E., Sun Y. J., Hwan I. K., Tae Y., Hee CH. L., Su T. K., Yoeop P. K., 2003. Growth flowering and variation of somaclones as affected by subcultures and natural materials supplemented to media in Phalenopsis. Korean Journal of Horticultural Science and Technology 21(4): 362 - 368.
• Yu H., Goh C. J. 2000a. Differential gene expression during floral transition in an orchid hybridDendrobium Madame Thong-In. Plant Cell Rep. 19: 926 - 93.
• Yu H., Goh C. J. 2000b. Identification and characterization of three orchid MADS box genes of the AP1/AGL9 subfamily during floral transition. Plant Physiol. 123: 1325 - 1336.
• Yu H., Yang S. H, Goh C. J. 2000. DOH 1, a class I knox gene, is required for maintenance of the basic plant architecture and floral transition in orchid. Plant Cell 12: 2143 - 2159.