Próby stymulacji produkcji metabolitów wtórnych w kulturach in vitro Ginkgo biloba L.

• Autorzy: Szewczyk A.

Warianty tytułu

EN

The studies of stimulation of the secondary metabolite production in in vitro cultures of Ginkgo biloba L.

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Kultury zawiesinowe Ginkgo biloba L. wyprowadzono z tkanek kalusowych regenerowanych z liści okazów żeńskich. Kultury prowadzono na podłożu Murashige- Skooga z dodatkiem pikloramu (4 mg·dm⁻³) oraz BA (2 mg·dm⁻³ ). Zbadano wpływ stężenia i sposobu dodawania elicytora - jasmonianu metylu na akumulację flawonoidów oraz wzrost hodowli zawiesinowych. Stwierdzono, że najlepszą metodą jest dodatek 25 µM jasmonianu metylu w 14 dniu hodowli. Analizy ekstraktów metanolowych prowadzono metodą HPLC. Detekcję aglikonów flawonoidów prowadzono po hydrolizie glikozydów 25% wodnym roztworem HCl. Wyniki sugerują, że dodatek jasmonianu metylu może stymulować kultury zawiesinowe Ginkgo biloba do zwiększenia produkcji flawonoidów.

EN

Cell suspension cultures of Ginkgo biloba L. were initiated from female plant callus cultures. Cultures were maintained on the Murashige-Skoog medium supplemented with picloram (4 mg·dm⁻³) and BA (2 mg·dm⁻³). The aim of this study was to investigate the impact of elicitor concentration and elicytor-adding time on the flavonoid accumulation and the cell growth of Ginkgo biloba cell suspensions. Methyl jasmonate was used as the elicytor. The optimum concentation of methyl jasmonate (25 µM) and time to add elicitor (14 the day of inoculation) was found. The analyses of methanol extracts were conducted by the HPLC method. Aglycons of flavonoids were detected after the hydrolisis of glycosides in 25% aqueous HCl. The results suggest that the addition of an elicytor to Ginkgo biloba cell suspension cultures could stimulate the production flavonoids.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2007
• Tom: 523
• Opis fizyczny: s.223-227,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Szewczyk A.

Bibliografia

• Beek T. A. 2000. Ginkgo biloba. Harwood Academic Publishers, Amsterdam.
• Kuzovkina I. N., Guseva A. V., Alterman I. E., Karnachuk R. A. 2001. Flavonoid production in transformed Scutellaria baicalensis roots and ways of its regulation. Russian J. Plant Physiol. 48: 523 - 528.
• Lu M. B., Wong H. L., Teng W. L. 2001. Effects of elicitation on the production of saponin in cell culture of Panax ginseng. Plant Cell Rep. 20: 674 - 677.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant 15: 473 - 497.
• Plata N., Konczak-Islam I., Jayram S., McClelland K., Woolford T., Franks P. 2003. Effect of methyl jasmonate and p-coumaric acid on anthocyanin composition in sweet potato cell suspension culture. Biochem. Engineering Journ. 14: 171 - 177.
• Walker T. S., Bais H. P., Vivanco J. M. 2002. Jasmonic acid-induced hypericin production in cell suspension cultures of Hypericum perforatum L. (St. John’s wort). Phytochemistry 60: 289 - 293.
• Wichtl M. 1997. Teedrogen und Phytopharmaka. Wissenschaft. Verl., Stuttgart: 257 - 260.
• Zhao P., Yuko I., Isao K., Yasukuni E., Hirobumi Y. 2004. Stimulating the production of homoisoflavonoids in cell suspenion cultures of Caesalpinia pulcherrina using cork tisssue. Phytochemistry 65: 2455 - 2461.