PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2012 | 11 | 6 |

Tytuł artykułu

The influence of the salt composition of basal medium and growth regulators on in vitro growth and development of Tibouchina urvilleana (DC.) Cogn

Autorzy

Treść / Zawartość

Warianty tytułu

PL
Wpływ zestawu soli mineralnych i regulatorów wzrostu na wzrost i rozwój Tibouchina urvilleana (DC.) Cogn. in vitro

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
Tibouchina urvilleana is a very popular small tree or shrub known for its beautiful velvety foliage and violet-blue flowers. It can be used in the mild climate in any landscape or as an indoor container plant in cooler regions. The aim of the present study was to determine the effect of mineral salt composition and growth regulators (BA and IAA) on the growth and development of Tibouchina urvilleana shoots. Shoot tips, obtained from aseptically grown shoots, were cultured on Murashige and Skoog (MS) (full and half strength), Nitsch and Nitsch (NN) or Lloyd and McCown (WPM) media supplemented with BA at 2.5 mg·dm⁻³ and IAA at 0.1 mg·dm⁻³. Also, the effects of BA (1.0, 2.5, 5.0 mg·dm⁻³) and IAA (0.1 or 0.5 mg·dm⁻³) applied alone or in combination were investigated. Explants cultured on medium without growth substances were used as a control. The study results showed that the application of full-strength Murashige and Skoog salt mixture has a more beneficial effect on the growth of the main shoot and the induction of axillary shoots of Tibouchina urvilleana compared to ½ MS, WPM and NN salt mixtures. The number of axillary shoots increases with the increasing concentration of BA (from 1 to 5 mg·dm⁻³), but they are characterized by a smaller length. The combined application of BA and IAA does not have a significant effect on the induction of axillary shoots. The addition of IAA at a concentration of 0.5 mg·dm⁻³ to the media containing BA (1 to 5 mg·dm⁻³) has a beneficial effect on elongation growth of axillary shoots.
PL
Tibouchina urvilleana jest bardzo popularnym niskim drzewem lub krzewem o pięknym welwetowym ulistnieniu i fioletowoniebieskich kwiatach. Może być uprawiana w gruncie w klimacie łagodnym lub w pomieszczeniu w pojemnikach w chłodnych rejonach. Celem badań było określenie wpływu zestawu soli mineralnych oraz regulatorów wzrostu (BA, IAA) na wzrost i rozwój pędów Tibouchina urvilleana. Wierzchołkowe fragmenty pędów, uzyskane z kultur aseptycznych, kultywowano na pożywce Murashige i Skooga (MS) (pełny zestaw i ½ zestawu soli), Nitsch i Nitsch (NN) lub Lloyd i McCown (WPM) zawierającej BA w stężeniu 2,5 mg·dm⁻³ i IAA w ilości 0,1 mg·dm⁻³. Zbadano również wpływ BA (1,0; 2,5; 5,0 mg·dm⁻³) i IAA (0,1 lub 0,5 mg·dm⁻³) zastosowanych pojedynczo oraz w kombinacji. Eksplantaty wyłożone na pożywkę bez regulatorów wzrostu stanowiły kontrolę. Wyniki badań wykazały, że zastosowanie pełnego zestawu soli mineralnych wg Murashige i Skooga, korzystniej wpływa na wzrost pędu głównego i indukcję pędów kątowych Tibouchina urvilleana, w porównaniu z zestawem soli ½ MS, WPM i NN. Wraz ze wzrostem stężenia BA (od 1 do 5 mg·dm⁻³) rośnie liczba pędów kątowych, lecz charakteryzują się one mniejszą długością. Łączne zastosowanie BA i IAA nie ma istotnego wpływu na indukcję pędów kątowych. Dodatek IAA w stężeniu 0,5 mg·dm⁻³ do pożywek zawierających BA (1–5 mg·dm⁻³) wpływa korzystnie na wzrost wydłużeniowy pędów kątowych.

Słowa kluczowe

Wydawca

-

Rocznik

Tom

11

Numer

6

Opis fizyczny

p.59-68,fig.,ref.

Twórcy

autor
  • Department of Ornamental Plants and Landscape Architecture, University of Life Sciences in Lublin, Leszczynskiego 58, 20-068 Lublin, Poland
autor
  • Department of Ornamental Plants and Landscape Architecture, University of Life Sciences in Lublin, Leszczynskiego 58, 20-068 Lublin, Poland

Bibliografia

  • Al Malki A.A.H.S., Imeer K.M.S., 2010. Influence of auxin and cytokinin on in vitro multiplication of Ficus anastasia. African J. Biotech. 9 (5), 635–639.
  • Al-Juboory K.H., 1996. Shoot proliferation of Gardenia jasminoides in vitro. HortSci. 31(4), 587–588.
  • Bashir M.A., Rashid H., Anjum M.A., 2007. In vitro shoot multiplication of six promising strains of jojoba (Simmondsia chinensis). Biotech. 6 (3), 309–315.
  • Desphande S.R., Josekutty P.C., Prathepasenan G., 1998. Plant regeneration from axillary buds of a mature tree of Ficus religiosa. Plant Cell Rep. 17, 571–573.
  • Ebrahim M.K.H., Ibrahim I.A., 2000. In vitro growth and development of Maranta leuconeura (cv. Kerchoviana) as affected by medium gelation and pH value. Egyptian J. Hort. 27(1), 55–67.
  • Furmanowa M., Oledzka H., Józefowicz J., Pietrosiuk A., 1994. Catharanthus roseus (L) F.G. Don-plant regeneration and alkaloid content. Acta Soc. Bot. Poloniae 63 (2), 179–184.
  • Gamborg O.L., Miller R.A., Ojima K., 1968. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell Res. 50, 151–158.
  • He Ch., Dai S., Ma G., 2009. Callus induction and plant regeneration in Tibouchina urvilleana (DC.) Cogn. Propagation of Ornam. Plants. 9 (2), 59–64.
  • Jiang H.-R., Yu F.-X., Liu T.-Y., 2005.Tissue culture and high frequency propagation of Callistemon rigidus. R. Br. Acta Hort. Sinica 32 (3), 541–543.
  • Karim M.Z., Amin M.N., Azad M.A.K., Begum F., Rahman M.M., Islam M.M., Alam R., 2003. Effect of different plant growth regulator on in vitro shoot multiplication of Chrysanthemum morifolium. OnLine J. Biol. Sci. 3 (6) 553–560.
  • Kozak D., Wnuk K., 2005. The influence of cytokinins on the formation and growth of Tibouchina urvilleana Cogn. axillary shoots in vitro. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 504, 127–133.
  • Kozak D., Hetman J., Witek M., 2007. The influence of mineral composition of the medium on in vitro propagation of Kohleria amabilis (Planch. et Linden) Fritsch shoots. Acta Agrobot. 60 (1), 95–99.
  • Kukreja A.K., 1999. In vitro propagation of lemon balm (Melissa officinalis L.) through nodal bud culture of adult plant. J. Spec. Aroma. Crops 8 (2), 171–177.
  • Kyte L., 1990. Plants from test tubes. Timber Press, Portland, Oregon. Lloyd G., McCown B.H., 1980. Commercially – feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture. Int. Plant Prop. Soc. Comb. Proc. 30, 421–427.
  • Lu M.-Ch., 2002. Micropropagation of Morus latifolia Poilet using axillary buds from mature trees. Sci. Hort. 96, 329–341.
  • Murashige T., Skoog F., 1962. A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15, 473–479.
  • Nitsch J.P., Nitsch C., 1969. Haploid plants from pollen grains. Science, 163, 85–87.
  • Onagro V., Leyser O., 2008. Hormonal control of shoot branching. J. Exp. Bot. 59, 67–74.
  • Poospooragi R., 2005. Micropropagation and effect of growth retardants on selected species of Melastomataceae. PhD thesis, Universiti Putra Malaysia.
  • Ramage C.M., Williams R.R., 2002. Mineral nutrition and plant morphogenesis. In Vitro Cell Dev. Biol. – Plant 38, 116–124.
  • Shabbir A., Hameed M., Ali A., Bajwa R., 2009. Effect of different cultural conditions of micropropagation of rose (Rosa indica L.). Pak. J. Bot. 41 (6), 2877–2882.
  • Shahzad A., Parveen S., Fatema M., 2011. Development of a regeneration system via nodal segment culture in Veronica anagallis-aquatica L. – an amphibious medicinal plant. J. Plant Interactions 6 (1), 61–68.
  • Shekafandeh A., 2007. Effect of different growth regulators and source of carbohydrates on in and ex vitro rooting of iranian myrtle. Inter. J. Agric. Res. 2 (2), 152–158.
  • Sumana K.R., Kaveriappa K.M., 2000. Micropropagation of Lagerstroemia reginae Roxb. through shoot bud culture. Indian J. Plant Physiol. 5 (3), 232–235.
  • Sun Y., Zhang D., Smagula J., 2010. Micropropagation of Ilex glabra (L.) A. Gray. HortSci. 45 (5), 805–808.
  • Zobayed S.M.A., 2000. In vitro propagation of Lagerstroemia spp. from nodal explants and gaseous composition in the culture headspace. Environ. Control in Biol. 38 (1), 1–11.
  • Yalcin-Mendi Y., Unek C., Eldogan S., Akakacar Y., Serce S., Curuk P., Kocaman E., 2009. The effect of different hormones on regeneration of gazania (Gazania rigens). Rom. Biotechnol. Lett. 14 (5), 4728–4732.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-7d2a0e7f-84dc-4c82-830b-f267bfa4f669
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.