Produkcja etylenu i aktywność oksydazy ACC w pąkach w okresie spoczynku letniego i chłodzenia cebul tulipanów

• Autorzy: Wegrzynowicz-Lesiak E.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

W pracy poznano produkcję etylenu oraz zdolności przekształcenia ACC do etylenu przez pąki kwiatowe, całe lub uszkadzane przez pocięcie, w okresie spoczynku letniego i chłodzenia cebul tulipanów. Produkcja etylenu w całych pąkach była niska i nie przekraczała 11 nl·g⁻¹·h⁻¹ w czasie całego okresu przechowywania cebul w 20°C i chłodzenia w 5°C. Najwięcej etylenu produkowały pąki izolowane z cebul pod koniec lipca i na początku sierpnia, a najmniej w czasie chłodzenia cebul. Aktywność oksydazy ACC była podobna lub wyższa niż produkcja etylenu. Uszkodzenie pąków poprzez pocięcie na drobne fragmenty kilkakrotnie zwiększało produkcję etylenu i aktywność oksydazy ACC w porównaniu do pąków całych. Można więc przypuszczać, że w okresie spoczynku letniego niewielkie ilości etylenu są potrzebne do prawidłowego wzrostu i rozwoju pąka, a uszkodzenie indukuje produkcję etylenu oraz stymuluje aktywność oksydazy ACC.

EN

Ethylene production and ACC oxidase activity in whole and wounded flower buds during dormancy and cooling of tulip bulbs, were examined. Ethylene production by whole flower buds was low (below 11 nl·g⁻¹·h⁻¹) during dormancy and cooling of tulip bulbs. The highest level of ethylene production was found when buds were isolated at the end of July and at the beginning of August, and the lowest during cooling of tulip bulbs. ACC oxidase activity was similar or higher than ethylene production without the addition of the precursor. Mechanical wounding of tulip buds (cut into pieces about 2 mm thick), greatly stimulated ethylene production and ACC oxidase activity. These results suggest that during dormancy a little amount of ethylene is required for normal growth and development of flower bud. Mechanical wounding stimulated ethylene production and ACC oxidase activity.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2005
• Tom: 504
• Numer: 1
• Opis fizyczny: s.329-334,rys.,bibliogr.

Twórcy

autor

Wegrzynowicz-Lesiak E.

• Instytut Sadownictwa i Kwiaciarstwa, Skierniewice

Bibliografia

• Abeles F.B., Morgan P.W., Saltveit M.E. 1992. Ethylene in plant biology. Academic Press, Inc. San Diego: 414 ss.
• Alexander L., Grierson D. 2002. Ethylene biosynthesis and action in tomato: a model for climacteric fruit ripening. J. Exp. Bot. 53: 2039-2055.
• Barry C.S., Llop-Tous M.I., Rierson D. 2000. The regulation of 1-aminocyclopropane-1 -carboxylic acid synthase gene expression during the transition from system-1 to system-2 ethylene synthesis in tomato. Plant Physiol. 123: 979-986.
• De Munk W.J., Duineveld T.L.J., Van Der Hulst C.T.C. 1992. The production of Apeldoorn tulips after exposure to ethylene during storage of the planting stock. Acta Hort. 325: 61-70.
• De Wild H.P.J., Peppelenbos H.W., Dijkema M.H.G.E., Gude H. 2002. Defining safe ethylene levels for long term storage of tulip bulbs. Acta Hort. 570: 171-175.
• Dunlap J. R., Robacker K.M. 1994. Wound induced ethylene production from excised muskmelon fruit tissue. J. Hortic. Sci. 69: 189-195.
• Hyodo H., Hashimoto Ch., Morozumi S., Hu W., Tanaka K. 1993. Characterization and induction of the activity of 1-aminocyclopropane-l-carboxylate oxidase in the wounded mesocarp tissue of Cucurbita maxima. Plant Cell Physiol. 34: 667-671.
• Kamerbeek G.A., De Munk W.J. 1976. A review of ethylene effects in bulbous plants. Scientia Hort. 4: 101-115.
• Kamerbeek G.A., Verlind A.L., Schipper J.A. 1971. Gummosis of tulip bulbs caused by ethylene. Acta Hort. 23: 167-172.
• Kanneworff W.A., Van Der Plas L.H.W. 1994. Ethylene formation and the effects of ethylene respiration in tulip bulbs. J. Plant Physiol. 143: 200-206.
• Kende H., Boller T. 1981. Wound ethylene and 1-aminocyclopropane-l-carboxylate synthase in ripening tomato fruit. Planta 151: 476-481.
• Liu J.H., Lee-Tamon S.H., Reid D.M. 1997. Differential and wound-inducible expression of 1-aminocyclopropane-l-carboxylate oxidase genes in sunflower seedlings. Plant Mol. Biol. 34: 923-933.
• Moe R., De Hertogh A.A., Dilley D.R. 1978. Influence of post-special-precooling-treatments on flower development and ethylene evolution from water- and growth regulator-injected tulip bulbs. Meld. Norg. LandbrHogsk. 57: 1-18.
• Prince T.A., Herner R.C., De Hertogh A.A. 1982. Increases in ethylene and carbon dioxide production by Tulipa gesneriana L. Prominence after completion at the cold requirement. Scientia Hort. 16: 77-83.
• Saniewski M. 1980. Rola etylenu we wzroście i rozwoju tulipanów. Post. Nauk Rol. 1: 37-48.
• Tang X., Gomes A.M.T.R., Bhatia A., Woodson W.R. 1994. Pistil-specific and ethylene- regulated expression of 1-aminocyclopropane-l-carboxylate oxidase genes in petunia flowers. Plant Cell 6: 1227-1239.
• Węgrzynowicz E., Saniewski M. 1991. The effect of mechanical wounding of different organs of Hippeastrum x hybr. hort. on ethylene production and ethylene-forming enzyme activity. Bull. Pol. Acad. Sci., Ser. Sci. Biol. 39: 373-377.
• Węgrzynowicz E., Saniewski M. 1992. Distribution of ethylene production and ethylene-forming enzyme activity in different stages of growth and development of tulips. Acta Hort. 325: 285-290.
• Węgrzynowicz-Lesiak E., Saniewski M. 2000. Wpływ uszkodzenia mechanicznego liści tulipana na produkcie etylenu i aktywność oksydazy ACC. Zesz. Nauk. Inst. Sad. i Kwiac. 7: 163-172.
• Yang S.F., Hoffman N.E. 1984. Ethylene biosynthesis and its regulation in higher plants. Annu. Rev. Plant Physiol. 61: 447-450.
• Yu Y.B., Yang S.F. 1980. Biosynthesis of wound ethylene. Plant Physiol. 66: 281-285.