Przyczyny odporności na fungicydy grzybów patogenicznych dla roślin

• Autorzy: Pieczul K.

Warianty tytułu

EN

The reasons of fungicide resistance of plant pathogenic fungi

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Ochrona upraw przed grzybami patogenicznymi dla roślin jest jednym z podstawowych elementów zapewniających wysokie plony. Niestety, odporność na fungicydy jest zjawiskiem coraz częściej występującym u patogenów. Przyczyną zaniku ochronnego działania stosowanych substancji czynnych są najczęściej mutacje w genach białek targetowych dla fungicydów. Do innych czynników powodujących wzrost odporności grzybów na fungicydy zalicza się m.in. zwiększenie ekspresji w/w białek, syntezę alternatywnych enzymów zastępujących funkcje blokowanych enzymów lub usuwanie z komórek fungicydów przez transportery ABC i MFS. Obecnie, ze względu na wzrost częstości tego zjawiska coraz większe znaczenie odgrywa stosowanie fungicydów zgodnie z praktykami zapobiegającymi powstawaniu odporności u grzybów.

EN

Crop protection against plant pathogenic fungi is one of the basics ensuring high yields. Unfortunately, resistance to fungicides has the tendency to occur more frequently. The causes of the decline of active substances protective effect are usually mutations in genes of fungicide target proteins. The other factors of increasing resistance level include overexpression of target protein, synthesis of alternative enzymes replacing functions of inhibited enzymes or removal of fungicides from cells by ABC and MFS protein transporters. Currently, due to the increased incidence of this phenomenon is important to use fungicides according to practices preventing the formation of fungi resistance.

Słowa kluczowe

PL

choroby roslin; choroby grzybowe; grzyby patogeniczne; odpornosc na fungicydy; przyczyny

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zagadnienia Doradztwa Rolniczego
• Rocznik: 2015
• Numer: 1
• Opis fizyczny: s.83-93,bibliogr.

Twórcy

autor

Pieczul K.

• Zakład Mikologii, Instytut Ochrony Roślin - Państwowy Instytut Badawczy w Poznaniu

Bibliografia

• 1. Albertini C., Gredt M., Leroux P. (1999): Mutations of the b-tubulin gene associated with different phenotypes of benzimidazole resistance in the cereal eyespot fungi Tapesia yallundae and Tapesia acuformis. Pestic. Biochem. Physiol. 64: 17-23.
• 2. Avenot H.F., Michailides T.J. (2010): Resistance to boskalid fungicide in Alternaria alternata isolates from pistachio in California. Plant Dis. 91: 1345-1350.
• 3. Avenot H.F., Michailides T.J. (2010): Progress in understanding molecular mechanisms and evolution of resistance to succinate dehydrogenase inhibiting (SDHI) fungicides in phytopathogenic fungi. Crop Protection 29: 643-651.
• 4. Bolton M.D. Birla K., Rivera-Varas V., Rudolph K.D., Secor G.A. (2012): Characterization of CbCyp51 from field isolates of Cercospora beticola. Phytopathology 102: 298-305.
• 5. Bolton M.D., Riviera V., Secor G. (2013): Identification of the G143A mutation associated with Qol resistance in Cercospora beticola field isolates from Michigan, United States. Pest Manag. Sci. 69: 35–39.
• 6. Broniarek-Niemiec A., Bielenin A. (2007): Odporność Venturia inaequalis na fungicydy strobilurynowe w sadach jabłoniowych w Polsce. Progress in Plant Protection/ Postępy w Ochronie Roślin. 47(2): 62-65.
• 7. Cools H.J., Mullins J.G.L., Fraaije B.A., Parker J.E., Kelly D.E., Lucas J.A., Kelly S.L. (2011): Impact in recently emerged sterol 14-demethlase (Cyp51) variants of Mycosphaerella graminicola on azole fungicide sensivity. Appl. Environ. Microbiol. 77: 3830-3837.
• 8. Davidse L.C. (1986): Benzimidazole fungicides: mechanism of action and biological impact. Annu. Rev. Phytopathol. 24: 43–65.
• 9. Davidson R.M., Hanson L.E., Franc G.D., Panella L. (2006): Analysis of β-tubulin gene fragments from benzimidazole-sensitive and tolerant Cercospora beticola. J. Phytopathology 154 (6): 321–328.
• 10. Deising H.B., Reiman S., Pascholati S.F. (2008): Mechanism and significance of fungicide resistance. Braz. J. Microbiol. 39: 286–295.
• 11. Fernandez-Ortuno D., Tores J.A., de Vicente A., Perez-Garcia A. (2008): Mechanism of resistance to Qol fungicides in phytopathogenic fungi. Int. Microbiol. 11: 1–9.
• 12. FRAC (2012): FRAC Code List. Fungicide sorted by mode of action. www.frac.info
• 13. FRAC (2013): List of Plant Pathogenic organisms Resistant to Disease Control Agents.www.frac.info
• 14. Horsefield R., Yankovskaya V., Sexton G., Whittingham W., Shiomi K., Omura S., Byrne B., Cecchini G., Iwata S. (2006): Structural and computational analysis of the quinone-binding site of complex II (succinate-ubiquinone oxidoreductase): a mechanism of electron transfer and proton conduction during ubiquinone reduction. J. Biol. Chem. 281: 7309-7316.
• 15. Karaoglanidis G.S., Thanassoulopoulos C.C. (2003): Cross-resistance patterns among sterol biosynthesis inhibiting fungicides (SBIs). Eur. J. Plant. Pathol. 109 (9): 929–934.
• 16. Kawchuk L.M., Hutchison L.J., Verhaeghe C.A., Lunch D.R., Bains P.S., Holley J.D. (2002): Isolation of the b-tubulin gene and characterization of thiabendazole resistance in Gibberella pulicaris. Can.J. Plant Pathol. 24: 233-238.
• 17. Lepesheva G.I., Waterman M.R. (2007): Sterol 14-demethylase cytochrome P450 (Cyp51), a P450 in all biological kingdoms. Biochemica et Biophysica Acta. 1770: 467-477.
• 18. Leroux P., Gredt M., Remuson F., Micoud A., Sophie-Walker A. (2013): Fungicide resistance status in French populations of the wheat eyespot fungi Oculimcula acuformis and Oculimacula yallundae Pest Manag. Sci. 69(1): 15–26.
• 19. Ma Z., Michailides T.J. (2005): Advances in understanding molecular mechanism of fungicide resistance and molecular detection of resistant genotypes in phytopathogenic fungi. Crop Prot. 24: 853–863.
• 20. Malandrakis A., Markoglou A., Nikou D., Vontas J., Ziogas B. (2011); Molecular diagnostic for detecting the cytochrome b G143S – QoI resistance mutation in Cercospora beticola. Pest. Biochem. Physiol. 100: 87–92.
• 21. Nikou D., Malandrakis A., Konstantakaki M., Vontas J., Markoglou A., Ziogas B. (2009): Molecular characterization and detection of overexpressed C-14 alpha-demethylase-based DMI resistance in Cercospora beticola field isolates. Pest. Biochem. Physiol. 95: 18–27.
• 22. Pieczul K, Korbas M. (2014): Stopień odporności na fungicydy izolatów Oculimacula acuformis i O. yallundae – sprawców łamliwości źdźbła zbóż. Progress in Plant Protection/Postępy w Ochronie Roślin. 54(3): 339-344.
• 23. Pieczul K. (2015): Identyfikacja szczepów Mycosphaerella graminicola odpornych na strobiluryny w Polsce. Streszczenia 55 Sesji Naukowej Instytutu Ochrony Roślin –Państwowego Instytutu Badawczego. s 73.
• 24. Pieczul K., Łacka A. (2015): Odporność krzyżowa Cercospora beticola na fungicydy DMI. Streszczenia 55 Sesji Naukowej Instytutu Ochrony Roślin – Państwowego Instytutu Badawczego. s 58.
• 25. Pieczul K, Perek A. (2013): Odporność na fungicydy izolatów Cercospora beticola pochodzących z terenu Wielkopolski. Progress in Plant Protection/Postępy w Ochronie Roślin. 53(4): 796-800.
• 26. Pieczul K, Perk A. (2015): Przyczyny odporność izolatów Cercospora beticola (chwościk buraka) na strobiluryny w Wielkopolsce. Progress in Plant Protection/Postępy w Ochronie Roślin. 55(1): 45-48.
• 27. Pieczul K, Piszczek J. (2012): Identyfikacja szczepów Cercospora beticola odpornych na benzimidazole metodą RFLP. Progress in Plant Protection/Postępy w Ochronie Roślin. 52(4): 781-783.
• 28. Russell P.E. (2005): A century of fungicide evolution. Journal of Agricultural Science. 143: 11-25.
• 29. Schnabel G., Jones A.L. (2001): The 14-demethylase (Cyp51) gene is overexpressed in Venturia inaequalis strains resistance to myclobutanil. Phytopathology 91: 102-110.
• 30. Wood P.M., Hollomon D.W. (2003): A critical evaluation of the role of alternative oxidase in the performance of strobilurin and related fungicides acting at the Qo site of complex III. Pest Manag Sci. 59: 499-511.
• 31. Wynard R.A., Brown J.K.M. (2005): Sequence variation in the Cyp51 gene of Blumeria graminis associated with resistance to sterol demethylase inhibiting fungicides. Fungal Genet. Biol. 42: 726-735.