Effect of plant growth regulators and explant types on induction and growth of callus of Primula veris L.

• Autorzy: Morozowska M. , Wesolowska M. , Glowicka-Woloszyn R. , Kosinska A.

Warianty tytułu

PL

Wpływ regulatorów wzrostu i rodzaju eksplantatów na indukcję kalusa i wzrost pierwiosnka lekarskiego (Primula veris L.)

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Primula veris L. (Primulaceae) is a well-known medicinal herb. The callus induction response of three explant types: roots, cotyledons, and hypocotyls of four-week-old cowslip seedlings were evaluated. The highest statistically different callus induction rate was 93.6% and was obtained from root explants on MS medium supplemented with 0.1 mg/l BA and 5.0 mg/l PIC. Calli also appeared on 83.3% of cotyledon explants on MS medium supplemented with 1.0 mg/l BA and 3.5 mg/l 2,4-D and on 81.0% of root explants on MS medium supplemented with 0.1 mg/l KIN and 2.0 mg/l 2,4-D. These values were not statistically different. The average time required for callus initiation was 4 to 6 weeks, however, it depended on the explants type. The most suitable condition for callus proliferation and growth was MS medium with 0.5 mg/l TDZ and 0.1 mg/l NAA, and with 1.0 mg/l BA and 2.0 mg/l or 3.5 mg/l 2,4-D. No light conditions proved to be more favourable for cowslip calli induction and growth.

PL

Primula veris L. (Primulaceae) to znana roślina lecznicza. Opracowano metodę otrzymywania in vitro tkanki kalusowej z trzech rodzajów eksplantatów: korzeni, liścieni i hypokotyli z czterotygodniowych siewek pierwiosnka lekarskiego. Najwyższy, istotny statystycznie i wynoszący 93,6% indukcji tkanki kalusowej uzyskano z eksplantatów korzeniowych na podłożu Murashige i Skooga (MS) zawierającego 0,1 mg/l BA i 5,0 mg/l PIC. Indukcję kalusa obserwowano także na 83,3% eksplantatów liścieniowych na pożywce MS uzupełnionej 1,0 mg/l BA i 3,5 mg/l 2,4-D oraz na 81,0% eksplantatów korzeniowych na pożywce MS zawierającej 0,1 mg/l KIN i 2,0 mg/l 2,4-D. Średni czas potrzebny do inicjacji kalusa wyniósł 4 do 6 tygodni i zależał od rodzaju eksplantatu. Podłoża MS uzupełnione 0,5 mg/l TDZ i 0,1 mg/l NAA oraz 1,0 mg/l BA i 2,0 mg/l lub 3,5 mg/l 2,4-D okazały się najodpowiedniejszymi dla dalszego rozwoju i wzrostu zregenerowanej tkanki kalusowej. Warunki bez dostępu światła były korzystniejsze dla indukcji i wzrostu tkanki kalusowej pierwiosnka lekarskiego.

Słowa kluczowe

EN

plant growth; growth regulator; explant type; callus induction; growth; callus; Primula veris; proliferation

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2013
• Tom: 59
• Numer: 3
• Opis fizyczny: p.17-25,fig.,ref.

Twórcy

autor

Morozowska M.

• Department of Botany, Poznan University of Life Sciences, Wojska Polskiego 71 c, 60-625 Poznan, Poland

autor

Wesolowska M.

• Department of Pharmaceutical Botany of Plant Biotechnology, Poznan University of Medical Sciences, Sw.Marii Magdaleny 14, 61-861 Poznan, Poland

autor

Glowicka-Woloszyn R.

• Department of Economics and Agrobusiness, Poznan University of Life Sciences, Wojska Polskiego 28, 60-637 Poznan, Poland

autor

Kosinska A.

• Department of Pharmaceutical Botany of Plant Biotechnology, Poznan University of Medical Sciences, Sw.Marii Magdaleny 14, 61-861 Poznan, Poland

Bibliografia

• 1. Huck CW, Huber CG, Lagoja IM, Ongania KH, Scherz H, Bonn GK, et al. Isolation and structural elucidation of 3’,4’,5’-trimethoxyflavone from the flowers of Primula veris. Planta Med 1999; 65: 491.
• 2. Huck CW, Huber CG, Ongania KH, Bonn GK. Isolation and characterization of methoxylated flavones in the flowers of Primula veris by liquid chromatography and mass spectrometry. J Chromatogr A 2000; 870: 453-462.
• 3. Stecher G, Huck CW, Stöggl WM, Bonn GK. Phytoanalysis: a challenge in phytomics. Trends Anal Chem 2003; 22: 1-14.
• 4. Budzianowski J, Morozowska M, Wesołowska M. Lipophilic flavones of Primula veris L. from field cultivation and in vitro cultures. Phytochemistry 2005; 66:1033-1039.
• 5. Budzianowski J, Morozowska M, Wesołowska M. Comparative study of lipophilic flavones in Primula veris L. from natural localities, field cultivation and in vitro culture. Abstracts of the 5th International Symposium on Chromatography of Natural Products (ISCNP). The Application of Chromatographic Methods in Phytochemical and Biomedical Analysis 2006; 19-22 June 2006, P-15: 66. Lublin, Poland.
• 6. Budzianowski J, Wollenweber E. Rare flavones from the glandular leaf exudate of the oxlip, Primula elatior L. Nat Prod Commun 2007; 2(3):267-270.
• 7. Edenharder R, Tang X. Inhibition of the mutagenicity of 2-nitrofluorene, 3-nitrofluoranthrene, and 1-nitropyrene by flavonoids, coumarins, quinines and other phenolic compounds. Food Chem Toxicol 1997; 35: 357-372.
• 8. Lee JE, Safe S. 3’,4’-Dimethoxyflavone as an aryl hydrocarbon receptor antagonist in human breast cancer cells. Toxicol Sci 2000; 58: 235-242.
• 9. Mata-Greenwood E, Ito A, Westenburg H, Cui B, Mehta RG, Kinghorn AD et al. Discovery of novel inducers of cellular differentiation using HL-60 promyelocytic cells. Anticancer Res 2001; 21: 1763-1770.
• 10. Tokalov SV, Kind B, Wollenweber E, Gutzeit HO. Biological effects of epicuticular flavonoids from Primula denticulata on human leukaemia cells. J Agr Food Chem 2004; 52: 239-245.
• 11. Paszel A, Okarma M, Stryczyńska M, Budzianowski J, Rybczyńska M. The influence of lipophilic flavones of Primula veris on proliferation of HL60 cells overexpressing MPR. Acta Biochim Pol 2007; 54, Suppl. 4:156. Abstr. 42nd Meeting of the Polish Biochem. Soc., Szczecin, Poland, 18-21 Sept. 2007.
• 12. Totoń E, Hoffman J, Budzianowski J, Rybczyńska M. Influence of lipophilic flavones of Primula veris on proliferation, invasion and viability of HeLa cells overexpressing PKCεA/E. Acta Biochim Pol 2007; 54, Suppl. 3, Abstracts of the fifth International Conference: Inhibitors of Protein Kinases and Workshop Session: Novel Molecular Design and Simulation Methods, 23–27 June 2007, 47 (P17). Warsaw, Poland.
• 13. Szymanowska N, Totoń E, Hoffman J, Budzianowski J, Rybczyńska M. Antiproliferative effect of zapotin on HeLa cells overexpressing constitutively active PKCe. Acta Biochim Pol 2008; 55, Suppl. 3: 129. Abstr. 43nd Meeting of the Polish Biochem. Soc. And the 10th Conf. Pol. Cell Biol. Soc., Olsztyn, Poland, 07-11 Sept. 2007.
• 14. Kozłowski J. Kompleksowa interpretacja zmian zawartości związków biologicznie czynnych w roślinach i surowcach zielarskich. Poznań: Instytut Przemysłu Zielarskiego 1985: 1-55.
• 15. Morozowska M. Vegetative development, flowering, fruiting and saponin content in cultivated cowslip (Primula veris L.) plants. Herba Pol 2004; 50 (2): 28-35.
• 16. Schween G, Schwenkel HG. In vitro regeneration in Primula ssp. via organogenesis. Plant Cell Rep 2002; 20: 1006-1010.
• 17. Schween G, Schwenkel HG. Effect of genotype on callus induction, shoot regeneration, and phenotypic stability of regenerated plants in the greenhouse of Primula ssp. Plant Cell Tissue Org Culture 2003; 72: 53-61.
• 18. Mizuhiro M, Kenichi Y, Ito K, Kadowaki S, Ohashi H, Mii M. Plant regeneration from cell suspensionderived protoplasts of Primula malacoides and Primula obconica. Plant Sci 2001; 160: 1221-1228.
• 19. Morozowska M, Wesołowska M. In vitro clonal propagation of Primula veris L. and preliminary phytochemical analysis. Acta Biol Cacov Bot 2004; 46: 169-176.
• 20. Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tissue culture. Physiol Plant 1962; 15: 473-497.
• 21. Gamborg OL, Miller RA, Ojima K. Nutrient requirement of suspension cultures of soybean root cells. Exp Cell Res 1968; 50: 151-158.
• 22. Okršlar V, Plaper J, Kovač M, Erjavec A, Obermajer T, Rebec A, et al. Saponins in tissue culture of Primula veris L. In Vitro Cell Dev–Pl 2004; 34: 644-651.