Wpływ stanu fizycznego podłoża na prawidłowość rozwoju zarodków somatycznych szparaga ozdobnego

• Autorzy: Pindel A.

Warianty tytułu

EN

The effect of media hardness on the ornamental asparagus somatic embryos development

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Zarodki somatyczne otrzymywano drogą pośredniej embriogenezy somatycznej z kalusa indukowanego z odcinków międzywęźli siewek szparaga ozdobnego odmiany Sprengeri (Asparagus densiflorus) na pożywce UM z 2,0 mg·dm⁻³ 2,4-D i 0,25 mg·dm⁻³ kinetyny [Pindel 2000]. Embriogenną tkankę umieszczano na pożywkach o składzie podstawowym jak w LS z dodatkiem 0,02 mg·dm⁻³ pikloramu i 0,2 mg·dm⁻³ BA: płynnej (okresowo wstrząsanej przy 100 rpm) oraz zestalanych agarem Difco, Oxoid i Phytagelem™ Obserwowano wpływ różnych rodzajów agarów i ich stężeń na prawidłowość rozwoju zarodków somatycznych. Stwierdzono, że Phytagel™ w stężeniu 0,3% gwarantował największą liczbę (83%) normalnie rozwiniętych zarodków.

EN

Somatic embryos were obtained via indirect embryogenesis from ornamental asparagus. Calli were induced from the intemodal segments of seedlings Asparagus densiflorus Sprengeri cv. on UM medium with 2.0 mg·dm⁻³ 2,4-D and 0.25 mg·dm⁻³ kinetin [Pindel 2000]. The embryogenic tissues were grown on liquid medium (temporary immersion) on a rotary shaker at 100 rpm and on Agar Difco, Oxoid or Phytagel™ - solidified LS media with the addition of 0.02 mg·dm⁻³ Picloram and 0.2 mg·dm⁻³ BA. The differences between the type and concentrations of gelling agents on somatic embryos development were observed. It was concluded that Phytagel™ was very effective for normally development of ornamental asparagus somatic embryos. At the hardness of 0.3% of Phytagel TM 83% of normal developed somatic embryos were obtained.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2007
• Tom: 523
• Opis fizyczny: s.169-174,tab.,fot.,bibliogr.

Twórcy

autor

Pindel A.

Bibliografia

• Beruto M., Beruto D., Debergh P. 1999. Influence of agar on in vitro cultures. I. Physicochemical properties of agar and agar gelled media. In Vitro Cell. Dev. Biol.- Plant 35: 86 - 93.
• Debergh P. C. 1983. Effects of agar brand and concentration on the tissue culture medium. Physiol. Plant. 59: 270 - 276.
• Linsmaier E. M., Skoog F. 1965. Organic growth factor requirements of tobacco cultures. Physiol. Plant. 18: 100 - 127.
• Loscutov A. V., Beninger C. W., Ball T. M., Hosfield G. L., Nair M., Sink K. C. 1999. Optimization of in vitro conditions for stigma-like-structure production from half-ovary explants of Crocus sativus L. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 35: 200 - 205.
• Mohomed-Yassen Y. 2001. Influence of agar and activated charcoal on uptake of gibberellin and plant morphogenesis in vitro. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 37: 204 - 205.
• Perez-Tornero O., Egea J., Olmos E., Burgos L. 2001. Control of hyperhydricity in micropropagated apricot cultivars. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 37: 250 - 254.
• Pierik R. L. M., Oosterkamp J., Manschot G. A. J. Barth T., Scholten H. J. 1997. Agar brand, a dominating factor for shoot growth of juvenile and adult Quercus robur L. ‘Fastigiata” in vitro. Plant Tiss. Cult. and Biot. 3/1: 27 - 31.
• Pindel A. 2000. Przydatność różnych metod in vitro w rozmnażaniu szparagów ozdobnych. Zesz. Nauk. AR w Krakowie 266: 1 - 69.
• Triplett B. A., Johnson D. S. 1999. Adding gelling agents to cotton ovule culture media leads to subtle changes in fiber development. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 35: 265 - 270.
• Uchimiya H., Murashige T. 1974. Evaluation of parameters in the isolation of viable protoplasts from cultured tobacco cells. Plant Physiol. 54: 936 - 944.
• Varshney A., Dhavan V., Srivastava P. S. 2000. A protocol for in vitro mass propagation of Asiatic hybrids of lily through liquid stationary culture. In Vitro Cell. Dev. Biol.- Plant 36: 383 - 391.
• Vikrant, Rashid A. 2003. Somatic embryogenesis from mesocotyl and leaf-base segments of Paspalum scrobiculatum L., a Minor Millet. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 39: 485 - 489.
• Wang Z. Y., Scott M., Hopkins A. 2002. Plant regeneration from embryogenic cell suspension cultures of Lolium temulentum. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 38: 446 - 450.