Ocena skuteczności metod inwersji faz antygenów rzęskowych Salmonella

• Autorzy: Zajac M. , Hoszowski A. , Skarzynska M. , Lalak A. , Samcik I. , Wasyl D.

Warianty tytułu

EN

Assessment of the efficacy of phase inversion methods in Salmonella diagnostics

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

EN

Expression of flagellar antigens is necessary to determine the complete antigenic structure of a Salmonella isolate. In many cases, this involves techniques that make it possible to select bacterial cells capable of expressing the currently inhibited antigen phase. The aim of the study was to compare the effectiveness of three available methods used for phase inversion of the flagellar antigens of Salmonella: Gard’s plate, Craigie’s tube and the paper bridge method. A total of 137 isolates with the expression of somatic antigen and only one of the two flagella phases were selected for the study. The three techniques identified Salmonella serovars in 83.2% (114/137) of the isolates tested. The paper bridge method proved to be the most effective technique, identifying inhibited antigens in 97.3% of isolates, followed by Gard’s plate and Craigie’s tube, which were successful in, respectively, 60.5% and 40.3% of cases. The specificity of each method was 100%. The test lasted 24 hours for all isolates tested by Gard’s plate method, from 48 to 96h in the paper bridge method, and at least 48 h in Craigie’s tube method. The results show that the paper bridge method is a simple and inexpensive technique of phase inversion, highly effective in Salmonella identification. However, if rapid identification is required, Gard’s plate can be used simultaneously with the paper bridge method, so that the test can be continued by the latter method if the expected result is not achieved within the first day.

Słowa kluczowe

PL

bakterie; Salmonella; identyfikacja; antygeny rzeskowe; inwersja faz antygenow rzeskowych; metody; metoda mostka bibulowego; plytka Garda; probowka Craigie'a; skutecznosc; porownanie

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Weterynaryjna
• Rocznik: 2015
• Tom: 71
• Numer: 12
• Opis fizyczny: s.796-800,rys.,tab.,fot.,bibliogr.

Twórcy

autor

Zajac M.

• Zakład Mikrobiologii, Państwowy Instytut Weterynaryjny - Państwowy Instytut Badawczy w Puławach, Al.Partyzantów 57, 24-100 Puławy

autor

Hoszowski A.

• Zakład Mikrobiologii, Państwowy Instytut Weterynaryjny - Państwowy Instytut Badawczy w Puławach, Al.Partyzantów 57, 24-100 Puławy

autor

Skarzynska M.

• Zakład Mikrobiologii, Państwowy Instytut Weterynaryjny - Państwowy Instytut Badawczy w Puławach, Al.Partyzantów 57, 24-100 Puławy

autor

Lalak A.

• Zakład Mikrobiologii, Państwowy Instytut Weterynaryjny - Państwowy Instytut Badawczy w Puławach, Al.Partyzantów 57, 24-100 Puławy

autor

Samcik I.

• Zakład Mikrobiologii, Państwowy Instytut Weterynaryjny - Państwowy Instytut Badawczy w Puławach, Al.Partyzantów 57, 24-100 Puławy

autor

Wasyl D.

• Zakład Mikrobiologii, Państwowy Instytut Weterynaryjny - Państwowy Instytut Badawczy w Puławach, Al.Partyzantów 57, 24-100 Puławy

Bibliografia

• 1. Achtman M., Wain J., Weill F. X., Nair S., Zhou Z., Sangal V., Krauland M. G., Hale J. L., Harbottle H., Uesbeck A., Dougan G., Harrison L. H., Brisse S.: Multilocus sequence typing as a replacement for serotyping in Salmonella enterica. PLoS pathogens 2012, 8, e1002776.
• 2. Baker S., Holt K., Whitehead S., Goodhead I., Perkins T., Stocker B., Hardy J., Dougan G.: A linear plasmid truncation induces unidirectional flagellar phase change in H:z66 positive Salmonella Typhi. Mol. Microbiol. 2007, 66, 1207-1218.
• 3. Bonifield H. R., Hughes K. T.: Flagellar phase variation in Salmonella enterica is mediated by a posttranscriptional control mechanism. J. Bacteriol. 2003, 185, 3567-3574.
• 4. Chiou C. S., Huang J. F., Tsai L. H., Hsu K. M., Liao C. S., Chang H. L.: A simple and low-cost paper-bridged method for Salmonella phase reversal. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2006, 54, 315-317.
• 5. Dauga C., Zabrovskaia A., Grimont P. A.: Restriction fragment length polymorphism analysis of some flagellin genes of Salmonella enterica. J. Clin. Microbiol. 1998, 36, 2835-2843.
• 6. Davies R. H., Wray C.: Immunomagnetic separation for enhanced flagellar antigen phase inversion in Salmonella. Lett. Appl. Microbiol. 1997, 24, 217-220.
• 7. EFSA/Biohaz. Scientific opinion on monitoring and assesment of public health risk of “Salmonella Typhimurium-like” strains. EFSA Journal 2010, 8, 1-44.
• 8. Fabre L., Zhang J., Guigon G., Le Hello S., Guibert V., Accou-Demartin M., De Romans S., Lim C., Roux C., Passet V., Diancourt L., Guibourdenche M., Issenhuth-Jeanjean S., Achtman M., Brisse S., Sola C., Weill F. X.: CRISPR typing and subtyping for improved laboratory surveillance of Salmonella infections. PLoS One 2012, 7, e36995.
• 9. Fitzgerald C., Collins M., Van Duyne S., Mikoleit M., Brown T., Fields P.: Multiplex, bead-based suspension array for molecular determination of common Salmonella serogroups. J. Clin. Microbiol. 2007, 45, 3323-3334.
• 10. Grimont P. A. D., Weill F.-X.: Antigenic formulas of the Salmonella serovars. 9th editon ed., WHO Collaborating Centre for Research on Salmonella, Institute Pasteur, Paris 2007.
• 11. Guard J., Sanchez-Ingunza R., Morales C., Stewart T., Liljebjelke K., Van Kessel J., Ingram K., Jones D., Jackson C., Fedorka-Cray P., Frye J., Gast R., Hinton A.: Comparison of dkgB-linked intergenic sequence ribotyping to DNA microarray hybridization for assigning serotype to Salmonella enterica. FEMS Microbiol. Lett. 2012, 337, 61-72.
• 12. Hoszowski A., Skarżyńska M., Wasyl D., Zając M., Lalak A., Samcik I., Wnuk D.: Serowary Salmonella występujące u zwierząt, w żywności i paszach w Polsce w latach 2005-2010. Med. Weter. 2012, 68, 411-417.
• 13. Hoszowski A., Wasyl D.: Pożywka agarowa AKG do ekspresji faz antygenów rzęskowych Salmonella, sposób jej wytwarzania oraz zastosowanie pożywki do identyfikacji antygenów rzęskowych Salmonella. Państwowy Instytut Weterynaryjny – Państwowy Instytut Badawczy, Puławy 2012, P-401498.
• 14. Imre A., Olasz F., Nagy B.: Development of a PCR system for the characterisation of Salmonella flagellin genes. Acta Vet. Hung. 2005, 53, 163-172.
• 15. Issenhuth-Jeanjean S., Roggentin P., Mikoleit M., Guibourdenche M., De Pinna E., Nair S., Fields P. I., Weill F. X.: Supplement 2008-2010 (no. 48) to the White-Kauffmann-Le Minor scheme. Res. Microbiol. 2014, 165, 526-530.
• 16. Juenker A. P.: A rapid method of phase isolation in Salmonella cultures. J. Bacteriol. 1946, 52, 609.
• 17. Kilger G., Grimont P. A.: Differentiation of Salmonella phase 1 flagellar antigen types by restriction of the amplified fliC gene. J. Clin. Microbiol. 1993, 31, 1108-1110.
• 18. Madajczak G.: Salmonella multiphasic flagellar antigen. Postępy Hig. Med. Dosw. 2012, 66, 446-451.
• 19. Mcquiston J. R., Parrenas R., Ortiz-Rivera M., Gheesling L., Brenner F., Fields P. I.: Sequencing and comparative analysis of flagellin genes fliC, fljB, and flpA from Salmonella. J. Clin. Microbiol. 2004, 42, 1923-1932.
• 20. Prendergast D. M., Grady D. O., Mccann A., Mccabe E., Fanning S., Egan J., Fanning J., Gutierrez M.: Application of PCR for rapid detection and serotyping of Salmonella spp. from porcine carcass swabs following enrichment in semi-solid agar. Food Res. Int. 2012, 45, 993-999.
• 21. Schrader K. N., Fernandez-Castro A., Cheung W. K., Crandall C. M., Abbott S. L.: Evaluation of commercial antisera for Salmonella serotyping. J. Clin. Microbiol. 2008, 46, 685-688.
• 22. Smith N. H., Selander R. K.: Molecular genetic basis for complex flagellar antigen expression in a triphasic serovar of Salmonella. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1991, 88, 956-960.
• 23. Wattiau P., Boland C., Bertrand S.: Methodologies for Salmonella enterica subsp. enterica subtyping: gold standards and alternatives. Appl. Environ. Microbiol. 2011, 77, 7877-7885.
• 24. Yoshida C., Lingohr E. J., Trognitz F., Maclaren N., Rosano A., Murphy S. A., Villegas A., Polt M., Franklin K., Kostic T., Kropinski A. M., Card R. M.: Multi-laboratory evaluation of the rapid genoserotyping array (SGSA) for the identification of Salmonella serovars. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2014, 80, 185-190.
• 25. Zając M., Hoszowski A., Wasyl D.: Identification of common, non-typable and autoagglutinating Salmonella strains with Premi®Test Salmonella Assay. Acta Vet. Hung. 2013, 61, 425-431.