Micropropagation of Chamaedaphne calyculata (L.) Moench by direct shoot organogenesis

• Autorzy: Zrobek-Sokolnik A. , Slipiko A. , Kucewicz M. , Milewicz M. , Holdynski C.

Warianty tytułu

PL

Mikrorozmnażanie Chamaedaphne calyculata (L.) Moench metodą bezpośredniej organogenezy pędowej

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The objective of this experiment was to investigate the effect of various concentrations of sucrose, 6-(γ,γ-dimethylallylamino)-purine (2iP) and pH values of Lloyd’s and McCown’s medium (1981, WPM) on the induction of lateral shoot growth in Chamaedaphne calyculata (L.) Moench. The explants were 2–3 cm nodal sections without the apex, with preserved leaves, from plants grown in vitro. The highest regenerative capacity was observed in culture media without cytokinin, with 58 mM sucrose content and pH 5.0. The lowest capacity for shoot organogenesis was reported in media with pH 5.6 with a higher sucrose content (88 mM) and 25 μM of 2iP. 80% of rooted explants were successfully transferred to ex vitro conditions. The survival rate of plantlets reached around 60% after three months of greenhouse cultivation.

PL

Badania podjęte w tej pracy miały na celu zbadanie wpływu różnych stężeń sacharozy, 6-(γ,γ-dimetyloallioamino)-puryny (2iP) oraz odczynu pH pożywki LLOYDA i MCCOWNA (1981,WPM) na efektywność procesu indukcji rozwoju pędów bocznych u Chamaedaphne calyculata (L.) Moench. Eksplantatami były fragmenty węzłowe pozbawione wierzchołka wzrostu pędu o długości od 2 do 3 cm, z zachowanymi liśćmi, pochodzące z roślin hodowlanych w kulturach in vitro. Najwyższy stopień regeneracji stwierdzono na podłożu bez dodatku cytokininy, zawierającym sacharozę w stężeniu 58 mM, o pH 5,0. Najsłabszą organogenezę pędową obserwowano na pożywkach o wyższym stężeniu sacharozy (88 mM), z 2iP o stężeniu 25 μM oraz o pH 5,6. 80% ukorzenionych eksplantatów pomyślnie przeniesiono do warunków ex vitro. Przeżywalność roślinek w warunkach szklarniowych po 3 miesiącach wynosiła około 60%.

Słowa kluczowe

EN

micropropagation; Chamaedaphne calyculata; shoot organogenesis; plant conservation; greenhouse cultivation

• Wydawca: -
• Czasopismo: Polish Journal of Natural Sciences
• Rocznik: 2011
• Tom: 26
• Numer: 3
• Opis fizyczny: p.207-215,fig.,ref.

Twórcy

autor

Zrobek-Sokolnik A.

• Department of Botany and Nature Protection, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, pl.Lodzki 1, 10-719 Olsztyn, Poland

autor

Slipiko A.

autor

Kucewicz M.

autor

Milewicz M.

autor

Holdynski C.

Bibliografia

• ALMEIDA R., GONCALVES S., ROMANO A. 2005. In vitro micropropagation of endangered Rhododendron ponticum L. subsp. Baeticum (Boissier & Reuter) Handel-Mazzetti. Biodiv. Conserv., 14: 1059–1069.
• ANDERSON W.C. 1975. Propagation of rhododendrons by tissue culture. I. Development of a culture medium for multiplication of shoots. Combined Proceedings, International Plants Propagators’ Society, 25: 29–135.
• ANTHONY J.M., SENARATNA T., DIXON K.W., SIVASITHAMPARAM K. 2004. Somatic embryogenesis for mass propagation of Ericaceae – a case study with Leucopogon verticillatus. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 76: 137–146.
• CANTOS M., JUANA L., GARCIA J.L., GARCIA-LINAN M., DOMINGUEZ M.A., TRONCOSO A. 2007. The use of in vitro culture to improve the propagation of Rhododendron ponticum subsp. Beaticum. Cen. Eur. J Biol., 2: 297–306.
• CAO X., FORDHAM I., DOUGLASS L., HAMMERSCHLANG F.A. 2003. Sucrose level influences micropropagation and gene delivery from in vitro propagated highbush blueberry shoots. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 75: 255–259.
• CZERPAK R., PIOTRIWSKA A. 2003. Cytokininy, ich struktura, metabolizm i aktywność biologiczna. KOSMOS. Problemy Nauk Biologicznych, 52: 203–215.
• DEBNATH S.C. 2005. Effects of carbon source and concentration on development of lingonberry (Vaccinium vitis-idaea L.) shoots cultivated in vitro from nodal explants. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant, 41: 145–150.
• KLOSS M. 1999. Chamedafne północna – ginący gatunek borów bagiennych i mszarów torfowcowych. Las Polski, 10: 2–9.
• KRIKORIAN A.D. 1995. Hormones in Tissue Culture and Micropropagation. [In:] Plant Hormones. Ed. P.J. Davues. Kluwer Academic Publishers, Netherlands, ss. 774–796.
• KRUSZELNICKI J. 2001. Chamaedaphne calyculata (L.) Moench, Chamedafne północna. [In:] Polska czerwona księga roślin. Eds. R. Kaźmierczakowa, K. Zarzycki, Instytut Botaniki im. W. Szafera, Polska Akademia Nauk, Kraków, pp. 283–285.
• KYTE L., KLEYN J. 2003. Plants from test tubes. An introduction to micropropagation. Timber Press. Portland, Oregon, 4rd ed., pp. 192–193.
• LITWIŃCZUK W. 2007. Rozmnażanie borówki wysokiej (Vaccinium corymbosum L.) w kulturach in vitro. Wpływ mikrorozmnażania na wzrost i owocowanie krzewów. Wydawnictwo UR, Rzeszów.
• LITWIŃCZUK W., WADAS M. 2008. Auxin-dependent development and habituation of highbush blueberry (Vaccinium × covilleanum But. et Pl.) ‘Herbert’ in vitro shoot cultures. Sci. Hort., 119: 41–48.
• LLOYD G., MCCOWN B. 1981. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Combined Proceedings, International Plants Propagators’ Society, 30: 421–427.
• LYRENE P.M., PERRY J.L. 1988. Blueberries (Vaccinium sp.). [In:] Biotechnology in Agriculture and Forestry. Ed. Bajaj. Crops II. Y.P.S. Springer-Verlag Berlin Heildberg, 6: 181–198.
• MALINOWSKA H., JANYSZEK A., SZCZEPANIAK M. 2004. Propagation of leather leaf Chamaedaphne calyculata (L.) Moench from seeds and shoot cuttings. Dendrobiology, 52: 33–37.
• MCCOWN B.H. 2000. Woody shrubs and trees. [In:] Plant Tissue Culture. Techniques and Experiments. Ed. R.H. Smith. Second edition, pp. 128–133, Academic Press, USA.
• MEINERS J., SHWAB M., SZANKOWSKI I. 2007. Efficient in vitro regeneration systems for Vaccinium species. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 89: 169–176.
• MIKUŁA A., RYBCZYŃSKI J.J. 2006. Krioprezerwacja narzędziem długoterminowego przechowywania komórek, tkanek i organów pochodzących z kultur in vitro. Biotechnologia, 4: 145–159.
• MOK M.C., MARTIN R.C., MOK D.W.S. 2000. Cytokinins: biosynthesis, metabolism and perception. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant, 36: 102–107.
• ORLIKOWSKA T. 1986. Micropropagation of highbush blueberry. Fruit Sci. Rep., 13: 105–115.
• RYBCZYŃSKI J.J., MIKUŁA A. 2007. Biotechnology – an alternative for plant diversity conservation. [In:] Monographs of Botanical Gardens. Eds. J.J., Rybczyński J.T. Puchalski. 1: 126–132.
• SACHS T. 2005. Auxin’s role as an example of the mechanisms of shoot/root relations. Plant Soil, 268: 13–19.
• STEFANIAK B. 2004. Roślinne kultury in vitro, [In:] Komórki roślinne w warunkach stresu. II. Komórki in vitro. Eds. A. Woźny, K. Przybył. Wydawnictwo Naukowe UAM, Poznań, pp. 13–91.
• TOMSONE S., GERTNERE D. 2003. In vitro shoot regeneration from flower and leaf explants in Rhododendron. Biologia Plantarum, 46: 463–465.
• WILIAMS R.R. 1993. Mineral nutrition in vitro – a mechanistic approach. Aust. J. Bot., 41: 237–251.
• ZIMMERMAN R.H., BROOM O.C. 1980. Blueberry micropropagation. Proceedings Conference on Nursery Production of Fruit Plants through Tissue Culture USDA-SEA, Agr. Res. Results ARR-NE, 11: 44–47.