Wpływ szczepów bakterii Lactobacillus plantarum oraz Lactobacillus rhamnosus na skład mikrobioty jelitowej, parametry biochemiczne i morfologię krwi kurcząt brojlerów. Cz.II

• Autorzy: Kuprys-Caruk M. , Chablowska B. , Stefanska I. , Piasecka-Jozwiak K. , Kotyrba D.

Warianty tytułu

EN

The effect of Lactobacillus plantarum and Lactobacillus rhamnosus strains on the gut flora composition, biochemical parameters of blood and morphology of chickens broilers. Part II

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Celem badań zaprezentowanych w II części artykułu była ocena wpływu zastosowania dodatku do wody pitnej preparatu zawierającego potencjalnie probiotyczne szczepy bakterii Lactobacillus plantarum K KKP 593/p oraz Lactobacillus rhamnosus KKP 825 na florę jelitową, parametry biochemiczne oraz morfologię krwi kurcząt brojlerów. Doświadczenie wykonano na 250 kurczętach rasy Ross 308. Czynnikiem doświadczalnym był dodatek preparatu bakteryjnego do wody pitnej w ilości 0,1 g L⁻¹, co odpowiadało dawce 1,0 x 10⁸ jtk L⁻¹ . Kurczęta odchowywano przez 42 dni, żywiono ad libitum sypkimi mieszankami typu starter, grower i finiszer. W trakcie uboju pobrano treść jelita cienkiego i krew w celu wykonania odpowiednich analiz. Stwierdzono, że dodatek preparatu bakteryjnego do wody pitnej miał wpływ na całkowite zahamowanie wzrostu bakterii z gatunku Clostridium perfringens oraz obniżenie liczebności E. coli w przewodzie pokarmowym kurcząt. Dodatek preparatu bakteryjnego do wody nie miał wpływu na wskaźniki biochemiczne krwi w odniesieniu do kwasów żółciowych, kwasu moczowego i białka ogólnego oraz aktywności enzymów: transaminazy asparaginianowej i fosfokinazy kreatynowej. Dodatek preparatu nie miał również wpływu na wskaźniki hematologiczne krwi: liczbę erytrocytów, limfocytów, zawartość hemoglobiny i hematokryt. Tym samym stwierdzono, że stosowanie do wody pitnej preparatu zawierającego potencjalnie probiotyczne szczepy Lactobacillus plantarum K KKP 593/p oraz Lactobacillus rhamnosus KKP 825 stabilizuje skład mikrobioty przewodu pokarmowego oraz nie powoduje negatywnych skutków zdrowotnych kurcząt brojlerów.

EN

The aim of the II part of the study was to evaluate the impact of bacterial preparation addition to drinking water on the composition of gut microbiota, biochemical parameters of blood, as well as morphology of broilers chickens in nutritional experiment. The experiment was performed at 250 Ross 308 broiler chickens reared for 42 days. The experimental factor was the addition of the preparation containing Lactobacillus plantarum K KKP 593/p and Lactobacillus rhamnosus KKP 825 strains to the drinking water at the dose of 0,1 g/L (1,0 x 10⁸ cfu L⁻¹). During the experimental period the broilers were fed with mash feed (starter, grower, finisher). Feed and water were provided for ad libitum consumption. At the end of rearing period chickens were slaughtered, the content of intestinal and blood samples were collected. Results on analysis showed that addition of bacterial preparation to the drinking water decreased the number of E. coli and completely inhibited the growth of Clostridium perfringens in the gastrointestinal tract of chickens. Furthermore, bacterial preparation additive did not impact on the biochemical and morphological blood parameters. It was concluded that bacterial preparation consisting Lactobacillus plantarum K KKP 593/p and Lactobacillus rhamnosus KKP 825 strains added to drinking water stabilizes the intestinal microflora and does not have a negative impact on the health status of chickens broilers.

Słowa kluczowe

PL

bakterie kwasu mlekowego; Lactobacillus plantarum; Lactobacillus rhamnosus; kurczeta brojlery; mikroflora jelitowa; analiza krwi; morfologia krwi; parametry biochemiczne

• Wydawca: -
• Czasopismo: Postępy Nauki i Technologii Przemysłu Rolno-Spożywczego
• Rocznik: 2018
• Tom: 73
• Numer: 2
• Opis fizyczny: s.31-42,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Kuprys-Caruk M.

• Zakład Technologii Fermentacji, Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego im.prof.Wacława Dąbrowskiego, ul.Rakowiecka 36, 02-532 Warszawa

autor

Chablowska B.

• Zakład Technologii Fermentacji, Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego im.prof.Wacława Dąbrowskiego, ul.Rakowiecka 36, 02-532 Warszawa

autor

Stefanska I.

• Katedra Nauk Przedklinicznych, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Szkoła Główna Gospodarstwa Wiejskiego w Warszawie, ul.Nowoursynowska 159, 02-776 Warszawa

autor

Piasecka-Jozwiak K.

• Zakład Technologii Fermentacji, Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego im.prof.Wacława Dąbrowskiego, ul.Rakowiecka 36, 02-532 Warszawa

autor

Kotyrba D.

• Zakład Technologii Fermentacji, Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego im.prof.Wacława Dąbrowskiego, ul.Rakowiecka 36, 02-532 Warszawa

Bibliografia

• 1. Albokhadaim I., Althnainan T., El-Bahr S. (2012). Investigation of selected biochemical parameters of local chickens with different age and sex in Al-ahsa, Saudi Arabia. Pakistan J. Biol. Sci., 15 (17), 827-832.
• 2. Ammor M., Florez A., Mayo B. (2007). Antibiotic resistance in non-enterococcal lactic acid bacteria and bifidobacteria. Food Microbiol., 24, 559-570.
• 3. Arslan M., Ozcan M., Matur E., Coteliogliu U., Ergul E. (2001). The effect of vitamin E on some blood parameters in broilers. Turk. J. Vet. Anim. Sci., 25, 711-716.
• 4. Barski D., Spodniewska A. (2014). Toksykologia weterynaryjna. Wybrane zagadnienia. Uniwersytet Warmińsko-Mazurski, Olsztyn, ISBN: 978-83-63503-16-1.
• 5. Clinical Diagnostic Division (1990). Veterinary reference guide: A summary of reference intervals for use with KODAK EKTACHEM products. Rochester (NY): Eastman Kodak Company.
• 6. Dolga B., Szeleszczuk P. Diagnostyka bakteriologiczna gatunków Enterococcus spp. istotnych w patologii drobiu. Życie Weterynaryjne, 9, 763-768.
• 7. EFSA (2011). Scientific opinion. Technical guidance. Tolerance and efficacy studies in target animals. EFSA Journal; 9 (5):2175 [15 pp.], DOI:10.2903/j.efsa.2011.2175.
• 8. Gaggìa F., Mattarelli P., Biavati B. (2010). Probiotics and prebiotics in animal feeding for safe food production. Inter. J. Food Microb., 141, 15-28.
• 9. Gareau M.G., Wine E., Sherman P.M. (2009). Early life stress induces both acute and chronic colonic barrier dysfunction. NeoRev., 10, 191-197.
• 10. Gilewski R., Wężyk S. (2016). Wpływ cieplnego stresu na jakość mięsa kurcząt brojlerów. OID, (295) 4, 8-16.
• 11. Harr K. (2002). Clinical chemistry of companion avian species: A review. Vet. Clin. Path., 31, 140-151.
• 12. Humphrey T., O’Brien S., Madsen M. (2007). Campylobacters as zoonotic pathogens: a food production perspective. Int. J. Food Microbiol., 117, 237-257.
• 13. Kaceci T., Col R. (2011). Haematological and biochemical values of the blood of pheasants (Phasianus colchicus) of different ages. Turk. J. Vet. Anim. Sci., 35, 149-156.
• 14. Klebaniuk R., Grela E., Kowalczuk-Vasilev E., Florek M., Góźdź J., Pecka S., Danek-Majewska A. (2012).Wpływ ekologicznych dodatków ziołowych w żywieniu zwierząt na ich zdrowotność. W: Wyniki badań z zakresu rolnictwa ekologicznego w 2011 roku. Warszawa: Ministerstwo Rolnictwa i Rozwoju Wsi, ISBN: 978-83-62178-52-0.
• 15. Lan R., Lee S., Kim I. (2017). Effects of Enterococcus faecium SLB 120 on growth performance, blood parameters, relative organ weight, breast muscle meat quality, excreta microbiota shedding, and noxious gas emission in broilers. Poultry Sci., 96 (9), 3246–3253.
• 16. Mazurkiewicz M. 2005. Choroby drobiu. Wydawnictwo Akademii Rolniczej Wrocław, ISBN: 83-89189-76-3.
• 17. Motyl I., Nowak A. (2017). In vitro anti-adherence effect of probiotic Lactobacillus strains on human enteropathogens. Biotechnol. Food Sci. 81 (2), 103-112.
• 18. Olnood Ch., Beski S., Choct M., Iji P. (2015a). Novel probiotics: Their effects on growth performance, gut development, microbial community and activity of broiler chickens. Animal Nutrition 1, 184-191.
• 19. Olnood Ch., Beski S., Iji P., Choct M. (2015b). Delivery routes for probiotics. Effects on broiler performance, intestinal morphology and gut microflora. Animal Nutrition, 1, 192-202.
• 20. Olnood C., Beski S., Choct M., Iji P. (2015c). Use of Lactobacillus johnsonii in broilers challenger with Salmonella sofia. Animal Nutrition, 1, 203-212.
• 21. Schneitz C. 2005. Competitive exclusion in poultry – 30 years of research. Food Control 16, 657–667. Van Immerseel F., De Buck J., Pasmans F., Huyghebaert G., Haesebrouck F., Ducatelle R. (2004). Clostridium perfringens in poultry: an emerging threat for animal and public health. Avian Pathol., 33, 537-549.
• 22. Seifi K., Torshizi M., Rahimi S., Kazemifard M. (2017). Efficiency of early, single-dose probiotic administration methods on performance, small intestinal morphology, blood biochemistry, and immune response of Japanese quail. Poultry Sci., 96 (7), 2151–2158.
• 23. Simaraks S., Chinrasri O., Aengwanich S. (2004). Haematological, electrolyte and serum biochemical values of the Thai indigenous chicken (Gallus domesticus) in Notheastern Thailand. Song Klanakarin J. Sci. Technol., 26, 425-430.
• 24. Willis W.L., Reid L. (2008). Investigating the effects of dietary probiotic feeding regimens on broiler chicken production and Campylobacter jejuni presence. Poultry Sci., 87, 606-611.
• 25. Vila B., Fontgibell A., Badiola I., Esteve-Garcia E., Jiménez G., Castillo M., Brufau J. (2009). Reduction of Salmonella enterica var. enteritidis colonization and invasion by Bacillus cereus var. toyoi inclusion in poultry feeds. Poultry Sci., 88, 975-979.
• 26. Zhang Z., Kim I. (2014). Effects of multistrain probiotics on growth performance, apparent ileac nutrient digestibility, blood characteristics, cecal microbial shedding, and excreta odor contents in broilers. Poultry Sci., 93 (2), 364–370.