Biologically active substances in plant extracts from mistletoe Viscum album and trees: fir (Abies alba Mill.), pine (Pinus sylvestris L.) and yew (Taxus baccata L.)

• Autorzy: Barbasz A. , Kreczmer B. , Rudolphi-Skorska E. , Sieprawska A.

Warianty tytułu

PL

Składniki biologiczne aktywne w wyciągach z jemioły jodły (Abies alba Mill.), sosny (Pinus sylvestris L.) i cisu (Taxus baccata L.)

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Taking into account the growing number of reports which confirm the medicinal effects of preparations of plant origin, the paper analyzed the biochemical composition of extracts obtained from mistletoe parasitizing on fir and extracts from fir, pine and yew trees was analyzed. The mistletoe samples were collected in winter, spring, summer and autumn. Mistletoe’s extract is a source of viscotoxines – substances used in a treatment of heart diseases. Yew is also used as a plant which tissues contain substances of high therapeutic value. Extracts obtained from tissues of this plant are used for cancer treatment. The content of protein, soluble sugars and proline were determined in all samples. The biological activity of mistletoe may be connected with high concentrations of almost all investigated metabolites. The level of these compounds were higher than that of extracts from trees. An increased level of proline and malondialdehyde in the tissues of spring mistletoe is probably related to summary effect of environmental stresses in this season (temperature, insolation intensity and duration). Among polyamines, the highest concentration of spermidine in extracts from mistletoe and of spermine in extracts from trees may be a sign of specific metabolism pathway in investigated plants. Among extracts from trees tissues, fir was the richest in studied bioactive substances. The less amounts of all analyzed substances were found in tissues of pine.

PL

Biorąc pod uwagę rosnącą liczbę doniesień potwierdzających lecznicze działanie preparatów roślinnych, w niniejszej pracy analizie poddano parametry biochemiczne ekstraktów pozyskiwanych z jemioły (ze zbiorów w okresie zimowym, wiosennym, letnim i jesiennym), jodły, sosny i cisu. Ekstrakt jemiołowy jest bogatym źródłem składników bioaktywnych, takich jak m.in. wiskuminy, wiskotoskyny, aminy biogenne, związki terpenowe, związki fenolowe, alkaloidy czy flawonoidy. Do badań wykorzystano także potencjalnych żywicieli jemioły tj. jodłę i sosnę, oraz cis jako rośliny, których ekstrakty mają dużą wartość terapeutyczną. Dokonano analizy zawartości białka, cukrów rozpuszczalnych oraz proliny. O wysokiej aktywności biologicznej jemioły, może świadczyć fakt, iż w jej tkankach zaobserwowano prawie ośmiokrotnie wyższe stężenie białka, w porównaniu do tkanek jej żywicieli. Poziom proliny w tkankach jemioły jest ściśle związany z dostępnością do wody. Zbadano także stężenie sumarycznych lipidów oraz produktów peroksydacji lipidów (których miarą było stężenie aldehydu dimalonowgo). Obserwowany wzrost zawartości aldehydu dimalonylowego skorelowany jest ze wzrostem nasłonecznienia w okresie wiosennym, co skutkuje zwiększonym stresem oksydacyjnym. Analizie poddano także zawartość bioaktywnych poliamin oraz jonów potasu, chloru i wapnia w tkankach badanych roślin. Na podstawie uzyskanych wyników pomiarów biochemicznych stwierdzono, iż cykl roczny związany z okresem wegetacyjnym rośliny ma wpływ na skład biochemiczny tkanek jemioły i jest powiązany ze zmianami tych parametrów w tkankach jej żywicieli.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2012
• Tom: 58
• Numer: 1
• Opis fizyczny: p.16-26,fig.,ref.

Twórcy

autor

Barbasz A.

• Institute of Biology, Pedagogical University, Podchorazych 2, 30-084 Krakow, Poland

autor

Kreczmer B.

autor

Rudolphi-Skorska E.

autor

Sieprawska A.

Bibliografia

• 1. Udaya Sri P, Vijaya Sree N, Revathi S, Aswani Kumar YVV, Divya Sri N. Role of herbal medicines in cancer. IJPSR 2010; 1:7-21.
• 2. Asai M, Minami S, Komuta K, Kido T. Improvement in quality of live with vino relbine as a single agent in two patients with recurrent lung cancer. Gan To Kagaku Ryoho 2000; 27:2105-8.
• 3. Jadhav M, Langenburg S, Fontanesi J, Slovis TL, Taub JW. Heptoblastoma with spinal metastases. J Pediatr Hematol Oncol 2000; 22: 524-6.
• 4. Cragg GM, Newman DJ. Plants as a source of anti-cancer agents. J Ethnopharmacol 2005; 22:72-9.
• 5. Fitzpatrick F, Wheeler R. The immunopharmacology of paclitaxel (Taxol), docetaxel (Taxotere), and related agents. Int Immunopharmacol 2003; 3:1699-1714.
• 6. Rohat B, Morsman JM, Murray GI, Figg WD, McLeod HL. Human CYP 1B1 and anticancer agent metabolizm: mechanism for tumor – specific drug inactivation? Pharmacol Exp Ther 2001; 296:537-41.
• 7. Fritz P, Seizer-Schmidt R, Murdter TE, Kroemer HK, Aulitzky W, Andre S, Gabius HJ, Friedel G, Toomes H, Siegle I. Ligands for Viscum album agglutinin and galectin-1 in human lung cancer is there any prognostic relevance? Acta Histohem 1999; 101:239-53.
• 8. Luczkiewicz M, Cisowski W, Kaiser P, Ochocka R, Piotrowski A. Comparative anlysis of phenolic acids in mistletoe plants from various hosts. Acta Pol Pharm 2001; 58:373-9.
• 9. Tabiasco J, Pont F, Fournie JJ, Vercellone A. Mistletoe viscotoxins increase natural killer cell-mediated cytotoxicity. Eur J Biochem 2002; 269:2591-600.
• 10. Ernst E, Schmidt K, Steuer-Vogt MK. Mistletoe for cancer? A systematic review of randomised clinical trials. Int J Cancer 2003: 107:262-7.
• 11. Bradford M. A rapid and sensitive method for the quantitation and sensitivity of microgram quantities of protein utilising the principle of protein – the binding. Anal Biochem 1976; 72:248-54.
• 12. Keles Y, Öncel I. Growth and solute composition on two wheat species experiencing combined influence of stress conditions. Russian J Plant Physiol 2004; 51:203-8.
• 13. Heath RL, Packer L. Photo peroxidation in isolated chloroplasts. I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Arch Biochem Biophys 1968; 125:189-98.
• 14. Bligh EG, Dyer WJ. A rapid method of total lipids extraction and purification. Can J Biochem 1959; 37:911-15.
• 15. Flores HE, Galston A. Analysis of polyamines in higher plants by high performance liquide chromatography. Plant Physiol 1982; 69:701-6.
• 16. Ashraf M., Foolad M.R. Roles of glycine betaine and proline in improving plant abiotic stress resistance. Environ Experim Bot 2007; 59:206-16.Davey MW, Stals E, Panis B, Keulemans J, Swennen RL. Highthroughput determination of malondialdehyde in plant tissues. Anal Biochem 2005; 347:201-7.
• 17. Kabata-Pendias A., Pendias H. Biogeochemia pierwiastków śladowych. Warszawa 1999.
• 18. Marschner H. Mineral nutrition of higher plants. 2nd ed. San Diego 1995.
• 19. Podleśna A. Effect of fertilization on content and uptake of chlorine by oilseed rape under pot experiment conditions. J Elementol 2009; 14:773-8.
• 20. Monroy AF, Dhindsa RS. Low-temperature signal transduction: induction of cold acclimation-specific genes of Alfalfa by calcium at 25 degrees C. Plant Cell 1995; 7:321-31.
• 21. Sangwan V, Foulds I, Singh J, Dhindsa RS. Cold-activation of Brassica napus BN115 promoter is mediated by structural changeds in membranes and cytoskeleton, and requires Ca2+ influx. Plant J 2001; 27:1-12.
• 22. Kubiś J. Poliaminy i ich udział w reakcjach roślin na warunki stresowe środowiska. Kosmos. Problemy Nauk Biologicznych 2006; 55:209-15.
• 23. Alcázar R, Marco F, Cuevas JC, Patron M, Ferrando A, Carrasco P, Tiburcio AF, Altabella T. Involvment of polyamines In plant response to abiotic sterss. Biotechnol Lett 2006; 28:1867-76.
• 24. Ji Ram V, Kumari S. Natural products of plant origin as anticancer agents. Drug News Perspect 2001; 14:0214-0934.

Uwagi

rekord w opracowaniu