PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2011 | 19 | 2 |

Tytuł artykułu

Flower development and senescence in Ranunculus asiaticus L.

Autorzy

Warianty tytułu

PL
Rozwoj i starzenie sie kwiatow jaskra azjatyckiego (Ranunculus asiaticus L.)

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
Flower development of Ranunculus asiaticus L. growing in the University Bo­tanic Garden was divided into six stages (I - VI): tight bud stage (I), loose bud stage (II), half open stage (III), open flower stage (IV), partially senescent stage (V) and senescent stage (VI). The average life span of an individual flower after it is fully open is about 5 days. Membrane permeability of sepal tissues estimated as electrical conductivity of ion leachates (^S), increased as the development proceeded through various stages. The content of sugars in the petal tissues increased during the flower opening period and then declined during senescence. The soluble proteins registered a consistent decrease with the simultaneous increase in specific protease activity and a-amino acid content during different stages of flower development and senescence. The content of total phenols registered an initial increase as the flowers opened, and then declined during senescence.
PL
Rozwój kwiatów jaskra azjatyckiego uprawianego w Uniwersyteckim Ogrodzie Botanicznym podzielono na sześć stadiów (I - VI): mocno zwinięty pąk kwiatowy (I), luźny pąk kwiatowy (II), kwiat w połowie otwarty (III), kwiat otwarty (IV), kwiat starzejący się (V) i kwiat stary (VI). Średnia długość życia poszczególnych kwiatów po pełnym ich otworzeniu się wynosiła około 5 dni. Przepuszczalność błony tkanek działki kielicha określona jako elektryczna przewodność jonowa (^S) zwiększyła się wraz z postępującym rozwojem na kolejnych stadiach. Zawartość cukrów w tkankach płatków zwiększyła się w okresie otwierania kwiatów, natomiast obniżyła się podczas ich starzenia. W poszczególnych stadiach rozwoju i starzenia się kwiatów liczba bia­łek rozpuszczalnych stale wzrastała, czemu towarzyszył spadek aktywności proteaz oraz zawartości a-aminokwasów. Zawartość fenoli wzrastała wraz z otwieraniem się kwiatów, a następnie zmniejszała się podczas ich starzenia.

Wydawca

-

Rocznik

Tom

19

Numer

2

Opis fizyczny

p.123-131,fig.,ref.

Twórcy

autor
  • Department of Botany, University of Kashmir, Srinagar- 190006, India
autor

Bibliografia

  • Celikel F.G., van Doorn W.G. 1995. Solute leakage, lipid peroxidation and protein degradation during senescence of Iris tepals. PHYSIOL. PLANT. 94: 515-521.
  • Chapin L., Jones M. 2007. Nutrient re- mobilization during pollination- induced corolla senescence in Petunia. ACTA HORT. 755: 181-190.
  • Eason J.R., Ryan D.J., Pinkney T.T., O'Donoghue E.M. 2002. Programmed cell death during flower senescence: Isolation and characterization of cysteine proteinases from Sandersonia au- rantiaca. FUNCTIONAL PLANT BIOL. 29: 1055-1064.
  • Gulzar S., Tahir I., Amin I., Farooq S., Sultan S.M. 2005. Effect of cyto- kinins on the senescence and longevity of isolated flowers of daylily (Hemerocallis fulva) cv. Royal crown sprayed with cycloheximide. ACTA HORT. 669: 395-403.
  • Halevy A.H., Mayak S. 1979. Senes­cence and postharvest physiology of cut flowers - Part I. HORT. REV. 1: 204-236.
  • Hasperuéa J.H., Chavesa A.R., Martinez G.A. 2011. End of day harvest delays postharvest senescence of broccoli florets. POSTHARVEST BIOL. TECHNOL. 59: 64-70.
  • Hoeberichts F.A., de Jong A.J., Wolter- ing E.J. 2005. Apoptotic like cell death marks the early stages of gypsophila (Gypsophila paniculata) petal senescence. POSTHARVEST BIOL. TECHNOL. 35: 229-236.
  • Jones M.L. 2008. Ethylene signalling is required for pollination-accelerated senescence in Petunia. PLANT SCI. 175: 190-196.
  • Jones M.L., Chaffin G.S., Eason J.R., Clark D.G. 2005. Ethylene sensitivity regulates proteolytic activity and cys- teine protease gene expression in pe­tunia corollas. J. EXP. BOT. 56: 2733-2744.
  • Kenza M., Umeil N., Borochov A. 2000. The involvement of ethylene in the senescence of Ranunculus cut flow­ers. POSTHARVEST BIOL. TECHNOL. 19: 287-290.
  • Lay-Yee M., Stead A.D., Reid M.S. 1992. Flower senescence in daylily (Hemerocallis). PHYSIOL. PLANT. 86: 308-314.
  • Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. 1951. Protein measurement with folin phenol re­agent. BIOL. CHEM. 193: 265-275.
  • Lukaszewski T.A., Reid M.S. 1989. Bulb type flower senescence. ACTA HORT. 261: 59-62.
  • Nelson N. 1994. Photometric adaptation of Somogy's method for the determi­nation of glucose. J. BIOL. CHEM. 153: 375-380.
  • Pak C., van Doorn W.G. 2005. Delay of Iris flower senescence by protease inhibitors. NEW PHYTOL. 165: 473-480.
  • Paulin A., Jamain C. 1982. Development of flowers and changes in various sugars during opening of cut carna­tions. J. AM. SOC. HORT. SCI. 107: 258-261.
  • Rosen H. 1957. A modified ninhydrin colorimetric method for amino acids. ARCH. BIOCHEM. BIOPHYS. 67: 10-15.
  • Shahri W., Tahir I. 2011a. Flower senes­cence: strategies and some associated events. BOT. REV. 77: 152-184.
  • Shahri W., Tahir I. 2011b. Physiological and biochemical changes associated with flower development and senescence in Consolida ajacis Nieuwl cv. Violet blue. FRONT. AGRIC. CHINA 5: 201-208.
  • Shahri W., Tahir I., Islam S.T., Bhat M.A. 2011. Physiological and biochemical changes associated with flower development and senescence in so far unexplored Helleborus orientals Lam. cv. Olympicus. PHYSIOL. MOL. BIOL. PLANTS 17: 33-39.
  • Swain T., Hillis W.E. 1959. The pheno­lic constituents of Prunus domestica L. - The quantitative analysis of phenolic constituents. J. FOOD. SCI. AGRIC. 10: 63-68.
  • Tayyab J., Qamar S. 1992. A look into enzyme kinetics: Some introductory experiments. BIOCHEM. EDU. 20: 116-118.
  • Trivellini A., Vernieri P., Ferrante A., Serra G. 2007. Physiological characterization of flower senescence in long life and ephemeral hibiscus (Hi­biscus rosasinensis L.). ACTA HORT. 755: 457-464.
  • van Doorn W.G. 2001. Categories of petal senescence and abscission: a reevaluation. ANN. BOT. 87: 447-456.
  • van Doorn W.G., Woltering E.J. 2008. Physiology and molecular biology of petal senescence. J. EXP. BOT. 59: 453-480.
  • Woltering E.J., van Doorn W.G. 1988. Role of ethylene in senescence of petals - morphological and taxo- nomic relationships. J. EXP. BOT. 39: 1605-1616.
  • Xu Y., Hanson M.R. 2000. Programmed cell death during pollination-induced petal senescence in Petunia. PLANT PHYSIOL. 122: 1323-1333.
  • Yamada T., Takatsu Y., Manabe T., Kasumi M., Marubashi W. 2003. Suppressive effect of trehalose on apoptotic cell death leading to petal senescence in ethylene-insensitive flowers of gladiolus. PLANT SCI. 4: 213-221.
  • Zhou Y., Wang C.Y., Ge H., Hoeberichts F.A., Visser P.B. 2005. Programmed cell death in relation to petal senes­cence in ornamental plants. J. INT. PLANT BIOL. 47: 641-650.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-014ac993-49c1-4659-b319-178bfc0d6cb5
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.