Porównanie trzech metod oceny wytwarzania śluzu przez Staphylococcus aureus i Staphylococcus epidermidis

• Autorzy: Wroblewska J. , Ciok–Pater E. , Sekowska A. , Gospodarek E.

Warianty tytułu

EN

Comparison of three methods detection of slime production by Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Oceniono zdolność wytwarzania śluzu przez 32 szczepy Staphylococcus aureus і 32 szczepy Staphylococcus epidermidis wykorzystując metody: ocenę morfologii kolonii na podłożu z czerwienią Kongo (CRA), z zastosowaniem roztworu safraniny (CT) i z użyciem metody spektrofotometrycznej z zastosowaniem czerwienieni Kongo (SC). Nie wykazano istotnych różnic w ocenie wytwarzania śluzu przez S. aureus i S. epidermidis przy wykorzystaniu metody CT i SC (p > 0,05), w przeciwieństwie do metody CRA (p < 0,0004 i p < 0,00001).

EN

In this article, slime production of Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis strains from infective skin lesions was evaluated by three different methods: Congo red agar method (CRA), Christensen tube method (CT) and spectrophotometric method (SC). All strains by CT method interpreted as negative (dark-claret or red colonies of the surface). 12 (37,5%) strains of S. aureus, 16 (50,0%) strains of S. epidermidis produced slime as shown by CT method, 6 (18,7%) strains of S. aureus, 8 ( 25,0%) strains of S. epidermidis by SC method. They also found a correlation of slime production by CT and SC method (p > 0,05).

Słowa kluczowe

PL

Staphylococcus aureus; Staphylococcus epidermidis; gronkowce; wirulencja; zdolnosc wytwarzania sluzu; szczepy bakteryjne; infekcja bakteryjna

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Doświadczalna i Mikrobiologia
• Rocznik: 2010
• Tom: 62
• Numer: 4
• Opis fizyczny: s.303-308,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Wroblewska J.

• Katedra i Zakład Mikrobiologii, Collegium Medicum im.L.Rydygiera w Bydgoszczy, Uniwersytet Mikołaja Kopernika w Toruniu, Bydgoszcz

autor

Ciok–Pater E.

autor

Sekowska A.

autor

Gospodarek E.

Bibliografia

• 1. Arciola CR, Campoccia D, Montanara L. Detection of biofilm-forming strains of Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus aureus. Expert Rev Mol Diagn 2002; 2: 478-84.
• 2. Arslan S, Özkarde F. Slime production and antibiotic susceptibility in staphylococci isolated from clinical samples. Memórias do Institute Oswaldo Gruz 2007; 102: 29-33.
• 3. Bartosiewicz M, Nowicka J, Kostrzycki W i inni. Charakterystyka gronkowców koagulazoujemnych kolonizujących cewniki naczyniowe u pacjentów leczonych kardiochirurgicznie. Adv Clin Exp Med 2005; 14:287-92.
• 4. Bozkurt H, Kurtogul MG, Bayram Y i inni. Correlation of slime production investigated via three different methods in coagulase-negative staphylococci with crystal violet reaction and antimicrobial resistance. J Int Med Res 2009; 37: 121-8.
• 5. Christensen GD, Simpson WA, Bisno AL i inni. Adherence of slime-producing strains of Staphylococcus epidermidis to smooth surfaces. Infect Immun 1982, 37: 318-26.
• 6. Davenport DS, Massanari RM, Pfaller MA i inni. Usefulness of a test for slime production as a marker for clinically significant infections with coagulase - negative staphylococci. J Infect Dis 1986,153: 332-9
• 7. Freeman DJ, Falkiner FR, Keane CT. New method for detecting slime production by coagulase negative staphylococci. J Clin Pathol 1989; 42: 872 -4.
• 8. Gelosia A, Baldassarri L, Deighton M i inni. Phenotypic and genotypie markers of Staphylococcus epidermidis virulence. Clin Microbiol Infect 2001; 7: 193-9.
• 9. Ishiguro EE, Ainsworth T, Trust TJ i inni. Congo red agar, a differential medium for Aeromonas salmonicida, detects the presence of the cell surface protein array involved in virulence. J Bacteriol 1985; 164: 1233-7.
• 10. Jass J, Surman S, Walker J. Medical biofilms: detection, prevention and control. WILEY, Chichester, West Sussex, England 2003, 64-6.
• 11. Korona-Głowniak I, Łoś R, Malm A i inni. Fenotypowa charakterystyka gronkowców koagulazo-ujemnych kolonizujących dreny po zabiegach torakochirurgicznych u pacjentów z rakiem płuc. Med Dośw Mikrobiol 2003; 55: 109-15.
• 12. Krukowski H, Szymankiewicz M, Lisowski A. Slime production by Staphylococcus aureus strains isolated from cases of bovine mastitis. PJM 2008; 57: 253-5.
• 13. Mateo M, Maestre JR, Aguilar L i inni. Strong slime production is a marker of clinical significance in Staphylococcus epidermidis isolated from intravascular catheters. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2008; 27: 311—4.
• 14. Montanaro L, Arciola CR, Baldassarri L i inni. Presence and expression of collagen adhesin gene (cna) and silme production in Staphylococcus aureus strains from orthopaedic prosthesis infection. Biomat 1999; 20: 1945-9.
• 15. Prasad SV, Ballal M, Shivananda PG. Slime production a virulence marker in Pseudomonas aeruginosa strains isolated from clinical and environmental specimens: A comparative study of two methods. Indian J Pathol Microbiol 2009; 52: 191-3.
• 16. Sachs L. Applied Statistics. Berlin Springer Verlg 1982.
• 17. Sánchez G, Pascual A, Martinez-Martinez L. Evaluation of 2 methods for studying slime production by coagulase-negative Staphylococcus strains. Enferm Infecc Microbiol Clin 1989; 7: 252-6.
• 18. von Eiff C, Peters G, Heilmann C. Pathogenesis of infections due to coagulase-negative staphylococci. Lancet Infect Dis 2002; 2: 677-85.
• 19. West TE, Walshe JJ, Krol CP i inni. Staphylococcal peritonitis in patients on continuous peritoneal dialysis. J Clin Microbiol 1986; 23: 809-12.