PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2010 | 25 | 3 |

Tytuł artykułu

The effect of explant type on somatic embryogenesis induction in Pisum sativum L.

Warianty tytułu

PL
Wpływ rodzaju eksplantatu na indukcję somatycznej embriogenezy u Pisum sativum L.

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
The effect of explant type on somatic embryogenesis induction in Pisum sativum (cv. Oskar and an unregistered line HM-6) was studied. Shoot apices, leaf primordia, and epicotyl fragments of axenically grown, etiolated seedlings, as well as embryonic axes and cotyledon fragments isolated from zygotic embryos at different stages of development, were used as explants. Somatic embryogenesis was induced essentially as described by Griga in 1998 – MS salts and sucrose, B5 Gamborg vitamins, picloram (2.5 μM). After induction period (14 days) all cultures were transferred to the differentiation medium (basal medium as above, auxin omitted). Both in Oskar and HM-6, only shoot apices developed somatic embryos and (with significantly lower frequency) adventitious shoots.
PL
W pracy zbadano zdolność wybranych rodzajów eksplantatów grochu odmiany Oskar oraz linii HM-6 do indukowania somatycznej embriogenezy. Jako eksplantaty zastosowano wierzchołki pędu, zawiązki liści i fragmenty epikotyli izolowane z aksenicznie hodowanych, etiolowanych siewek, jak również osie zarodkowe i fragmenty liścieni pobierane z zarodków zygotycznych na różnych etapach ich rozwoju. Somatyczną embriogenezę pobudzano w zasadzie wg procedury opisanej w 1998 r. przez Grigę, tj. na pożywce zawierającej sole i sacharozę jak w zestawie MS, witaminy zestawu B5 Gamborga oraz pikloram (2.5 μM). Po okresie indukcji (14 dni) wszystkie hodowle przenoszono na pożywkę różnicującą (podłoże podstawowe jak wyżej, ale bez auksyny). Zarówno u odmiany Oskar, jak i linii HM-6 zarodki somatyczne oraz (z istotnie niższą wydajnością) pędy przybyszowe uzyskiwano jedynie z wierzchołków pędów młodych siewek.

Wydawca

-

Rocznik

Tom

25

Numer

3

Opis fizyczny

p.229-235,ref.

Twórcy

  • Department of Plant Physiology and Biotechnology, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Olsztyn, Poland

Bibliografia

  • BELMONTE M.F., TAHIR M., SCHROEDER D., STASOLLA C. 2007. Overexpression of HBK3, a class I KNOX homeobox gene, improves the development of Norway spruce (Picea abies) somatic embryos. J. Exp. Bot., 58(11): 2851–2861.
  • BRODA Z., TORZ L. 1997. Zdolności regeneracyjne lucerny mieszańcowej (Medicago media Pers.) poprzez embriogenezę somatyczną. Zeszyty Naukowe AR w Krakowie, 318: 235–238.
  • DINESHKUMAR V., KIRTI P.B., SACHAN J.K.S., CHOPRA V.L. 1995. Picloram induced somatic embryogenesis in chickpea (Cicer arietinum L.). Plant Science, 109: 207–213.
  • DUQUENNE B., EECKHAUT T., WERBROUCK S., HUYLENBROECK VAN J. 2006. In vitro somatic embryogenesis and plant regeneration in Zandeschia hybrids. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 87: 329–331.
  • GAMBORG O.L., MILLER R.A., OJIMA K. 1968. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell Res., 50: 11–158.
  • GARIN E., ISABEL N., PLOURDE A. 1998. Screening of large numbers of seed families of Pinus strobus L., for somatic embryogenesis from immature and mature zygotic embryos. Plant Cell Rep., 18: 37–43.
  • GOGATE S.S., NADGAUDA R.S. 2003. Direct induction of somatic embryogenesis from immature zygotic embryo of cashewnut (Anacardium occidentale L.). Sci. Hort., 97: 75–82.
  • GRIGA M. 1998. Direct somatic embryogenesis from shoot apical meristems of pea, and thidiazuroninduced high conversion rate of somatic embryos. Biologia Plantarum, 41: 481–495.
  • HITA O., GALLEGO P., VILLALOBOS N., LANAS I., BLAZQUEZ A., MARTIN J.P., FERNANDEZ J., MARTIN L., GUERRA H. 2003. Improvement of somatic embryogenesis in Medicago arborea. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 72: 13–18.
  • LAKSHMANAN P., TAJI A. 2000. Somatic embryogenesis in leguminous plants. Plant Biology, 2: 136–148.
  • LOISEAU J., MARCHE C., DEUNFF LE Y. 1995. Effects of auxins, cytokinins, carbohydrates and amino acids on somatic embryogenesis induction from shoot apices of pea. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 41: 267–275.
  • LOISEAU J., MARCHE C., DEUNFF LE Y. 1996. Variability of somatic embryogenic ability in the genus Pisum L: effects of genotype, explant source and culture condition. Agronomie, 16: 299–308.
  • MCKERSIE B.D., BROWN D.C.W. 1996. Somatic embryogenesis and artificial seeds in forage legumes. Seed Sci. Res., 6: 109–126.
  • MURASHIGE T., SKOOG F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant., 15: 437–497.
  • NADOLSKA-ORCZYK A. 1992. Somatic embryogenesis of agriculturally important lupinus species (Lupinus angustifolius, L. albus, L. mutabilis). Plant Cell Tiss. Organ Cult., 28: 19–25.
  • NADOLSKA-ORCZYK A. 2000. Regeneracja in vitro i transformacja genetyczna roślin motylkowych grubonasiennych. Monografie i Rozprawy Naukowe Ihar, 6.
  • NADOLSKA-ORCZYK A., MIŁKOWSKA L., ORCZYK W. 1994. Two ways of plant regeneration from immature cotyledons in pea. Acta Soc. Bot. Pol., 63: 153–157.
  • PINTO-SINTRA A.L. 2007. Establishment of embryogenic cultures and plant regeneration in the Portuguese cultivar “Touriga Nacional” of Vitis vinifera L. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 88: 253–265.
  • PODWYSZYŃSKA M., MARASEK A., GABRYSZEWSKA E. 1997. Indukcja tworzenia pędów przybyszowych i zarodków somatycznych w kulturach in vitro tulipana. Zesz. Nauk. AR w Krakowie, 318: 195–199.
  • RASHID V.A. 2001. Comparative study of somatic embryogenesis from immature and mature embryos and organogenesis from leaf-base of Triticale. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 64: 33–38.
  • RUDUŚ I., KĘPCZYŃSKI J., KĘPCZYŃSKA E. 2001. The influence of the jasmonates and abscisic acid on callus growth and somatic embryogenesis in Medicago sativa L. tissue culture. Acta Physiol. Plant., 23: 103–107.
  • SALAJOVA T., SALAJ J., KORMUTAK A. 1999. Initiation of embryogenic tissues and plantlet regeneration from somatic embryos of Pinus nigra Arn. Plant Science, 145: 33–40.
  • SINGH B., SHARMA S., RANI G., VIRK G.S., ZAIDI A.A., NAGPAL A. 2007. In vitro response of encapsulated and non-encapsulated somatic embryos of Kinnow mandarin (Citrus nobilis Lour x C. deliciosa Tenora). Plant Biotechnol. Rep., 1: 101–107.
  • STEINMACHER D.A., CLEMENT C.R., GUERRA M.P. 2007. Somatic embryogenesis from immature peach palm inflorescence explants: towards development of an efficient protocol. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 89: 15–22.
  • TOMLIN E.S., BRANCH S.R., CHAMBERLAIN D., GABE H., WRIGHT M.S., STEWARD C.N. 2002. Screening of soybean, Glycine max (L.) Merrill, lines for somatic embryo induction and maturation capability from immature cotyledons. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant, 38: 543–548.
  • WALKER D.R., PARROT A. 2001. Effect of polyethylene glycol and sugar alkohols on soybean somatic embryo germination and conversion. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 77: 149–156.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.dl-catalog-b59d3720-6362-4334-8202-eb2978a9fd98
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.