Effect of low temperature and GA3 treatments on in vitro shoot multiplication of tulip (Tulipa gesneriana L.)

• Autorzy: Podwyszynska M. , Rojek A.

Warianty tytułu

PL

Wpływ niskiej temperatury i GA3 na namnażanie pędów tulipana (Tulipa gesneriana L.) in vitro

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

In several tulip cultivars propagated in vitro, a high decrease in propagation rate was observed after the 4th - 6th multiplication cycles. In vitro shoot cultures of the model tulip cultivars Blue Parrot and Prominence with relatively stable and high multiplication rate and shoots of new Polish cultivar Fringed Black which revealed a decreased regeneration capacity were used in the experiment. Shoots, multiplied at 8-week subculture period on MS modified medium supplemented with thidiazuron (TDZ) and a-naphthaleneacetic acid (NAA), were treated with low temperature (5°C) for 8, 10 or 12 weeks and with 1 mg·dm⁻³ GA₃ which was added to the medium prior to cooling at the 3rd week of multiplication subculture. The significant enhancement of shoot multiplication by cooling was found for the cultivar Fringed Black only. Low temperature treatment for 10 - 12 weeks markedly increased multiplication rate from 2.5 (non-cooled control) to 5.8 - 6.4 (in the 1st subculture). The effect of increased regeneration capacity was maintained during 8 months of cyclic multiplication. Application of GA₃ decreased affect shoot multiplication rate. It is suggested that the decrease in multiplication rate of cv. Fringed Black could result from dormancy development in shoots because the restoration of regeneration capacity occurred after low temperature treatment.

PL

Podczas rozmnażania in vitro tulipana, u części odmian obserwuje się znaczne obniżenie współczynnika rozmnażania po 4 - 6 cyklach namnożeniowych. Do badań użyto kultur in vitro modelowych odmian tulipana Blue Parrot i Prominence o relatywnie stabilnym i wysokim współczynniku rozmnażania oraz nowej polskiej odmiany Fringed Black wykazującej silną tendencję do obniżania współczynnika namażania. Pędy namnażane w 8-tygodnowych cyklach na zmodyfikowanej pożywce MS zawieraj ącej tidiazuron (TDZ) i kwas alfa-naftalenooctowy (NAA) traktowano niską temperaturą (5°C) przez 8, 10 i 12 tygodni i GA₃, który dodano do pożywki tuż przed chłodzeniem - w 3. tygodniu cyklu namnożeniowego. GA₃ obniżał namnażanie pędów. Istotny wzrost współczynnika namnażania dzięki chłodzeniu pędów przez 10 - 12 tygodni obserwowano tylko w przypadku odmiany Fringed Black. Efekt wzrostu zdolności regeneracyjnych utrzymywał się przez 8 miesięcy cyklicznego namnażania. Można przypuszczać, że zmniejszanie się współczynnika namnażania u odm. Fringed Black było spowodowane wchodzeniem pędów w spoczynek, bowiem odzyskanie zdolności regeneracyjnych następowało pod wpływem traktowania niską temperaturą.

Słowa kluczowe

EN

Tulipa gesneriana; micropropagation; low temperature treatment; dormancy; plant cultivar; tulip; gibberellin treatment; shoot; propagation rate; in vitro culture

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2008
• Tom: 524
• Opis fizyczny: p.107-113,fig.,ref.

Twórcy

autor

Podwyszynska M.

• Research Institute of Pomology and Floriculture, Pomologiczna 18, 96-100 Skierniewice, Poland

autor

Rojek A.

Bibliografia

• De Klerk G. J., Gerrits M. M. 1996. Development of dormancy in tissue-cultured lily bulblets and apple shoots, in: Plant Dormancy. G. A. Lang (Ed.), CAB International: 115 - 131.
• Gabryszewska E. 2006. Effect of temperature on growth and dormancy of tissue-cultured herbaceous peony shoots. Acta Hort. 725: 471 - 475.
• Hulscher M., Krijksheld H. T., Van der Linde P. C. G. 1992. Propagation of shoots and bulb growth of tulip in vitro. Acta Hort. 325: 441 - 446.
• Langens M. M. 2001. Progress in tissue culture techniques for propagation of tulips. Flower-Tech 4: 22 - 24.
• Langens-Gerrits M. M., Nashimoto S., Croes A. F., De Klerk G. J. 2001. Development of dormancy in different lily genotypes regenerated in vitro. Plant Growth Regul. 34: 215 - 222.
• Le Nard M., De Hertogh A. A. 1993. Tulipa, in: The physiology of flower bulbs. A. A. De Hertogh, M. Le Nard (Eds), Elsevier Science Publisher B. V., The Netherlands: 617 - 682.
• Le Nard M., Ducommun C., Weber G., Dorion N., Bigot C. 1987. Obsevations sur la multiplication in vitro de la tulipe (Tulipa gesneriana L.) r partir de hampes florales prelevees chez des bulbes en cours de conservation. Agronomie 7: 321 - 329.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid assays with tobacco tissuecultures. Physiol. Plant. 15: 473 - 497.
• Niimi Y., Endo Y., Arisaka E. 1988. Effect of chilling- and GA 3-treatments on breaking of dormancy in Lilium rubellum Baker bulblets cultured in vitro. J. Japan. Soc. Hort. Sci. 57: 250 - 257.
• Nishiuchi Y. 1980. Studies on vegetative propagation of tulip. 4. Regeneration of bulblets in bulb scale segments cultured in vitro. J. Japan. Soc. Hort. Sci. 49: 235 - 239.
• Orlikowska T. 1992. Effect of in vitro storage at 4oC on survival and proliferation of two apple root stocks. Plant Cell Tis. Org. Cult. 31: 1 - 7.
• Podwyszyńska M. 2006a. Improvement of bulb formation in micropropagated tulips by treatment with NAA andpaclobutrazol or ancymidol. Acta Hort. 725: 679 - 684.
• Podwyszyńska M. 2006b. Wpływ auksyn, etylenu i estru metylowego kwasu jasmonowego na formowanie cebul w kulturach pędów tulipana in vitro. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 510: 461 - 469.
• Podwyszyńska M., Marasek A. 2003. Effect of thidiazuron and paclobutrazol on regeneration potential of flower stalk explants in vitro and subsequent shoot multiplication. Acta Soc. Bot. Pol. 72: 181 - 190.
• Podwyszyńska M., Ross H. 2003. Formation of tulip bulbs in vitro. Acta Hort. 616: 413 - 419.
• Rice R. D., Alderson P. G., Wright N. A. 1983. Induction of bulbing of tulip shoots in vitro. Scientia Hort. 20: 377 - 390.
• Saniewski M., Kawa-Miszczak L., Węgrzynowicz-Lesiak E., Okubo H. 2000. Role of ABA, gibberellins and auxins in dormancy and dormancy release of tulip bulbs, in: Dormancy in Plants, from Whole Plant Behavior to Cellular Control. J. D. Viemont and J. Crabbe (Eds), CABI Publishing, Cambridge: 227 - 243.
• Taeb A. G., Alderson P. G. 1990. Effect of low temperature and sucrose on bulb development and on the carbohydrate status of bulbing shoots of tulip in vitro. J. Hort. Sci. 65: 193 - 197.