Embryonic development of Aspius aspius L. (Actinopterygii: Cypriniformes: Cyprinidae)

• Autorzy: Korzelecka-Orkisz A. , Bonislawska M. , Tanski A. , Smaruj I. , Szulc J. , Formicki K.
• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Słowa kluczowe

EN

Aspius aspius; Actinopterygii; Cypriniformes; Cyprinidae; embryonic development; asp; egg membrane; embryogenesis

• Wydawca: -
• Czasopismo: Electronic Journal of Polish Agricultural Universities. Series Fisheries
• Rocznik: 2013
• Tom: 16
• Numer: 3
• Opis fizyczny: http://www.ejpau.media.pl/volume16/issue3/art-09.html

Twórcy

autor

Korzelecka-Orkisz A.

• Division of Hydrobiology, Ichthyology and Biotechnology of Biotechnology of Reproduction, West Pomeranian University of Technology in Szczecin, Szczecin, Poland

autor

Bonislawska M.

• Department of Aquatic Sozology, West Pomeranian University of Technology in Szczecin, Szczecin, Poland

autor

Tanski A.

• Division of Hydrobiology, Ichthyology and Biotechnology of Biotechnology of Reproduction, West Pomeranian University of Technology in Szczecin, Szczecin, Poland

autor

Smaruj I.

• Division of Hydrobiology, Ichthyology and Biotechnology of Biotechnology of Reproduction, West Pomeranian University of Technology in Szczecin, Szczecin, Poland

autor

Szulc J.

• Division of Hydrobiology, Ichthyology and Biotechnology of Biotechnology of Reproduction, West Pomeranian University of Technology in Szczecin, Szczecin, Poland

autor

Formicki K.

• Division of Hydrobiology, Ichthyology and Biotechnology of Biotechnology of Reproduction, West Pomeranian University of Technology in Szczecin, Szczecin, Poland

Bibliografia

• 1. Ali A.M., 1974. Plodovitost’ i gistologicheskaya kharakteristika polovykh zhelez samok zherekha Aspius aspius (L.). [The fecundity and the histological characteristics of the sexual cycle of female asp Aspius aspius (L.).]. Vopr. Ikhthyol., 14, 6, 1036–1045 [in Russian].
• 2. Babiak I., Głogowski J., Kujawa R., Kucharczyk D., Mamcarz A., 1998. Cryopreservation of sperm from asp Aspius aspius. The Progressive Fish-Culturist 60, 146–148.
• 3. Bartel R., 1971. Pomiary średnicy jaj pstrąga tęczowego (Salmo gairdneri Rich.) [Measurements of diameter of the eggs of rainbow trout (Salmo gairdneri Rich.)]. Rocz. Nauk Rol., 93-H-3, 7–17 [in Polish].
• 4. Baruš V., Oliva O. (ed.), 1995. Fauna ČR a SR. Mihulovci (Petromyzontes) a ryby (Osteichthyes) [Cyclostomes (Petromyzontes) and fishes (Osteichthyes)]. Vol. 2. Academia, Praha [in Czech].
• 5. Blaxter J.H.S., Hempel G., 1963. The influence of egg size on herring larvae (Clupea harengus). Journal du Conseil International pour l’Exploration de la Mer, 28, 211–240.
• 6. Bonisławska M., Korzelecka A., Winnicki A., 1999. Morpho-mechanical aspects of the embryonic development of sun bleak (Leucaspius delineatus Heck.). Folia Univ. Agricul. Stetin., 192, ser. Piscaria, 25, 13–23.
• 7. Bonisławska M. , Formicki K. , Korzelecka-Orkisz A., Winnicki A., 2001. Fish egg size variability: biological significance, EJPAU 4(2), #02.
• 8. Bonisławska M., Winnicki A., 2002. Effets of egg incubation temperature the condition of newly hated on fish larvae. Acta Sci. Pol., seria Piscaria, 1 (2), 5–19.
• 9. Formicki K., Smaruj I., Szulc J., Winnicki A., 2009. Microtubular network of the gelatinous egg envelope within the egg ribbon of european perch, Perca fluviatilis L. Acta Ichthyol. Piscat., 39 (2), 147–151.
• 10. Kompowski A., Neja Z., 2004. Fecundity of asp Aspius aspius (L., 1758) from Miedzyodrze waters. Bull. Sea Fish. Instit. (163), 23–30.
• 11. Korzelecka A., Winnicki A., 1998. Peculiarities of embryogenesis in Scardinius erythrophthalmus L., EJPAU 1(1), #01.
• 12. Korzelecka-Orkisz A., Bonisławska M., Tański A., Szulc J., Formicki K., Winnicki A., 2006. Wybrane aspekty embriogenezy certy (Vimba vimba) w zróżnicowanych warunkach termicznych wody [Selected aspects of embryogenesis of vimba bream Vimba vimba in different thermal conditions]. In: Zakęś Z., Demska-Zakęś K., Wolnicki J. (eds.) Rozród, podchów, profilaktyka ryb karpiowatych i innych gatunków. Wydawnictwo Instytutu Rybactwa Śródlądowego Olsztyn, 69–78 [in Polish].
• 13. Korzelecka-Orkisz A., Bonisławska M., Pawlos D., Szulc J., Winnicki A., Formicki K., 2009. Morphophysiological aspects of embryonic development of tench (Tinca tinca L.). EJPAU 12(4), #21.
• 14. Kujawa R., Kucharczyk D., 1994. Boleń obserwacje i spostrzeżenia. Część I. Sezonowe rozmieszczenia bolenia w rzekach [Observation of the asp (Aspius aspius). Part I. Seasonal distribution of asp in rivers ]. Kom. Ryb., 5, 16–17 [in Polish].
• 15. Kujawa R., Mamcarz A., Kucharczyk D., 1997. Effect of temperature on embryonic development of asp (Aspius aspius L.). Polskie Archiwum Hydrobiologii, 44 (1–2), 139–143.
• 16. Kujawa R., Kucharczyk D., Mamcarz A., 1998. Wybrane elementy rozwoju embrionalnego bolenia (Aspuis aspius L.) [Chosen elements of embryonic development of asp (Aspius aspius L.)]. Komunikaty Rybackie, 5, 4–5 [in Polish].
• 17. Kupren K., Mamcarz A., Kucharczyk D., 2010. Effects of temperature on survival, deformations rate and selected parameters of newly hatched larvae of three rheophilic cyprinids (Genus Leuciscus). Pol. J. Nat. Sci., 25 (3), 299–312.
• 18. Mamcarz A., 2000. Boleń. [Asp] In: Brylińska M. (ed.) Ryby słodkowodne Polski. Red. PWN, Warszawa, 294–300 [in Polish].
• 19. Mamcarz A., Kujawa R., Kucharczyk D., 2008. Boleń (Aspius aspius Linnaeus, 1758) monografia [Asp (Aspius aspius Linnaeus, 1758) monograph]. Mercurius Kaczmarek Andrzej, Olsztyn [in Polish].
• 20. Mansour N., Lahnsteiner F., Patzner R.A., 2008. Physiological and biochemical investigation on egg stickiness in common carp. Animal Reproduction Science, 114, 256–268.
• 21. Mickiewicz M., Wołos A., 2011. Gatunki, formy i wartość materiału zarybieniowego wprowadzonego do jezior w Polsce w latach 2001–2009 [Species, forms and values of restocked material introduced to Polish lakes in 2001–2009]. In: Jankun JM., Furgała-Selezniow G., Woźniak M., Wiśniewska A.M. (eds.) Gospodarowanie ichtiofauną w warunkach zróżnicowanego środowiska wodnego. Agencja Wydawnicza „Argi” s.c R. Błaszak, P. Pacholec, J. Prorok, Olsztyn, 85–94 [in Polish].
• 22. Mikodina Е.V., 1987. O structure poverhnosti oboloček ikrinok kostistyh ryb [About the structure of egg envelopes of teleost fishes.], Vopr. Ihtiol., 27, 300–306 [in Russian].
• 23. Mitrofanov V.P., Dukraviec G.M., Melnikov V.A., Bambelov A.A., 1987. Ryby Kazakhstana. 2. Karpovye [Kazakhstan’s fishes. 2. Cyprinidae]. Izd. Nauka, Alma-Ata [in Russian].
• 24. Patzner R.A., Glechner R., 1996. Attaching structures in eggs of native fishes. Limnologica, 26, 179–182.
• 25. Riehl R., Patzner R.A., 1998. Minireview: The modes of egg attachment in teleost fishes. Ital. J. Zool., 65 (Suppl.), 415–420.
• 26. Szulc J., Winnicki A., Formicki K., 2008. Środowiskowe uwarunkowania ultrastrukturalnej budowy osłonek jajowych ryb [Environmental conditionings of the fish egg membrane ultrastructure]. In: Zakęś Z., Wolnicki J., Demska-Zakęś K., Kamiński R., Ulikowski D. (eds.) Biotechnologia w akwakulturze. Wyd. IRŚ Olsztyn, 245–249 [in Polish].
• 27. Śliwiński, J., Wojda R., Cieśla M., 1995. The first generation of asp (Aspius aspius L.) reared in carp ponds. In: Trzebiatowski R. (ed.) New fish species in aquaculture. International Conference, 23–24 October 1995, Szczecin, Poland, 55–59.
• 28. Śliwiński J., 1998. Sztuczne tarło bolenia. Karpiowate ryby reofilne. In: Jakucewicz H., Wojda R. (eds.). Karpiowate ryby reofilne. I krajowa konferencja hodowców i producentów karpiowatych ryb reofilnych. 10-11 February 1998, Brwinów, Poland, 51–55 [in Polish].
• 29. Tadajewska M., 2000. Rozpiór Abramis ballerus [Blue bream Abramis ballerus]. In: Brylińska M. (ed.) Ryby słodkowodne Polski. PWN Warszawa, 257–261 [in Polish].
• 30. Targońska K., Żarski D., Kucharczyk D., 2008. A review of the artificial reproduction of asp, Aspius aspius (L.) and nase, Chondrostoma nasus (L.). Arch. Pol. Fish., 16, 341–354.
• 31. Targońska K., Kucharczyk D., Kujawa R., Mamcarz A., Żarski D., 2010. Controlled reproduction of asp, Aspius aspius (L.) using luteinizing hormone releasing hormone (LHRH) analogues with dopamine inhibitors. Aquaculture, 306, 407–410.
• 32. Winnicki A, Korzelecka A., Bonisławska M., Formicki K., 2001. Bipartity of yolk sac in cyprinid embryos. Arch Pol. Fish., 9, 279–286.
• 33. Witkowski A., Kotusz J., Heese T., 2009. Stopień zagrożenia słodkowodnej ichtiofauny Polski: Czerwona lista minogów i ryb – stan 2009 [Degree of threated Polish freshwater ichthyofauna: The red list of lampreys and fish – 2009 status]. Chrońmy Przyrodę Ojczystą, 65, 33–52 [in Polish].
• 34. Żarski D., Kucharczyk D., Taragońska K., Chwalczyk R., Krejszeff S., Kwiatkowski M., Jamróz M., 2008. Wpływ środka hormonalnego Ovaprim na efektywność rozrodu bolenia (Aspius aspius) w warunkach kontrolowanych [Influence of the hormonal Ovaprim on reproduction efficiency of the asp (Aspius aspius) in controlled conditions]. In: Z. Zakęś, J.Wolnicki, K. Dęmska-Zakęś, R. Kamiński, D. Ulikowski. (eds.) Biotechnologia w akwakulturze. Wydawnictwo Instytutu Rybactwa Śródlądowego, Olsztyn, 153–158 [in Polish].