Biodiversity of ectomycorrhizal fungi in surface mine spoil restoration stands in Poland – first time recorded, rare, and red-listed species

• Autorzy: Kalucka I.L. , Jagodzinski A.M. , Nowinski M.
• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Results of mycological research conducted in the years 2001–2013 in the restoration stands growing on reclaimed mine spoils are presented. Four opencast lignite mine spoil heaps in Poland were examined: Pątnów-Jóźwin, Adamów, Mt Kamieńsk, and Turów. The paper focuses on 71 species of ectomycorrhizal fungi: recorded for the first time in the country (16 taxa), currently red-listed (23 taxa), known from few localities only (32 taxa). Notes on their ecology and habitats are provided, as well as their distribution in Europe and in Poland. Restoration tree stands, established as part of the reclamation process of mine spoils, form a unique habitat for many rare and interesting fungal taxa. Among them are pioneer species, species known mainly from Northern Europe or mountainous locations, highly specialized and narrow-niche taxa, and many threatened species. Afforested mine spoils contribute significantly to the fungal biodiversity, both at a local and at a larger scale.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Mycologica
• Rocznik: 2016
• Tom: 51
• Numer: 2
• Opis fizyczny: Article 1080 [36p.], fig.,ref.

Twórcy

autor

Kalucka I.L.

• Department of Algology and Mycology, Faculty of Biology and Environmental Protection, University of Lodz, Banacha 12/16, 90-237 Lodz, Poland

autor

Jagodzinski A.M.

• Institute of Dendrology, Polish Academy of Sciences, Parkowa 5, 62-035 Kornik, Poland
• Department of Game Management and Forest Protection, Faculty of Forestry, Poznan University of Life Sciences, Wojska Polskiego 71c, 60-625 Poznan, Poland

autor

Nowinski M.

• Department of Forest Sites and Ecology, Faculty of Forestry, Poznan University of Life Sciences, Wojska Polskiego 71e, 60-625 Poznan, Poland

Bibliografia

• 1. Ławrynowicz M, Bujakiewicz A, Mułenko W. Mycocoenological studies in Poland – 1952–2002. Łódź: Polish Botanical Society; 2004. (Monographiae Botanicae; vol 93). http://dx.doi.org/10.5586/mb.2004.001
• 2. Kałucka I. Macrofungi in the secondary succession on the abandoned farmland near the Białowieża old-growth forest. Łódź: Polish Botanical Society; 2004. (Monographiae Botanicae; vol 99). http://dx.doi.org/10.5586/mb.2009.001
• 3. Kujawa A. Macrofungi in wooded patches in the agricultural landscape. I. Species diversity. Acta Mycol. 2009;44(1):49–75. http://dx.doi.org/10.5586/am.2009.007
• 4. Kałucka IL, Jagodziński AM. Successional traits of ectomycorrhizal fungi in forest reclamation after surface mining and agricultural disturbances: a review. Dendrobiology. 2016;76:91–104. http://dx.doi.org/10.12657/denbio.076.009
• 5. Gebhardt S, Neubert K, Wöllecke J, Müenzenberger B, Hüttl RF. Ectomycorrhiza communities of red oak (Quercus rubra L.) of different age in the Lusatian lignite mining district, East Germany. Mycorrhiza. 2007;17:279−290. http://dx.doi.org/10.1007/s00572-006-0103-4
• 6. Glen M, Bougher NL, Colquhoun IJ, Vlahos S, Loneragan WA, O’Brien P, et al. Ectomycorrhizal fungal communities of rehabilitated bauxite mines and adjacent, natural jarrah forest in Western Australia. For Ecol Manage. 2008;255:214−225. http://dx.doi.org/10.1016/j.foreco.2007.09.007
• 7. Krpata D, Peintner U, Langer I, Fitz WJ, Schweiger P. Ectomycorrhizal communities associated with Populus tremula growing on a heavy metal contaminated site. Mycol Res. 2008;112:1069−1079. http://dx.doi.org/10.1016/j.mycres.2008.02.004
• 8. Kasiński J, Mazurek S, Piwocki M. Waloryzacja i ranking złóż węgla brunatnego w Polsce. Warszawa: Państwowy Instytut Geologiczny; 2006. (Prace Państwowego Instytutu Geologicznego; vol 187).
• 9. Kondracki J. Geografia regionalna Polski. 3rd ed. Warszawa: Wydawnictwo Naukowe PWN; 2013.
• 10. Stachowski P, Oliskiewicz-Krzywicka A, Kozaczyk P. Ocena warunków meteorologicznych na terenach pogórniczych Konińskiego Zagłębia Węgla Brunatnego. Rocznik Ochrona Środowiska. 2013;15:1834–1861.
• 11. Zajączkowski M. Metoda wyboru lokalizacji zwałowiska na przykładzie wieloodkrywkowej kopalni węgla brunatnego [PhD thesis]. Kraków: Akademia Górniczo-Hutnicza im. Stanisława Staszica w Krakowie, Wydział Górnictwa i Geoinzynierii, Katedra Górnictwa Odkrywkowego; 2012.
• 12. Balcerkiewicz S, Pawlak G. Zbiorowiska roślinne zwałowiska zewnętrznego Pątnów-Jóźwin w Konińskim Zagłębiu Węgla Brunatnego. Badania Fizjograficzne nad Polską Zachodnią – Seria B. Botanika. 1990;40:57–106.
• 13. Wysocki W. Odtwarzanie gleb dla rolniczego zagospodarowania zwałowisk Kopalni Węgla Brunatnego Konin. Roczniki Gleboznawcze. 1975;26(1):61–98.
• 14. Gilewska M, Otręba K. Kształtowanie krajobrazu rolniczego na terenach pogórniczych Kopalni Węgla Brunatnego w rejonie Konina. Roczniki Gleboznawcze. 2011;62(2):109–114.
• 15. Bank Danych o Lasach [Internet]. 2016 [cited 2016 Apr 17]. Available from: http://www.bdl.lasy.gov.pl/portal/mapy#
• 16. Orlikowski D, Szwed L. Zagospodarowanie terenów pogórniczych KWB “Adamów” SA w Turku – krajobraz przed rozpoczęciem działalności górniczej i po jej zakończeniu. Górnictwo i Inżynieria. 2011;35(3):225–240.
• 17. Cuske M, Pora E, Musztyfaga E, Gałka B. Ewaluacja prac rekultywacyjnych zwałowiska wewnętrznego odkrywki węgla brunatnego “Adamów” w KWB Adamów. Inżynieria Środowiska. 2014;33:32–40.
• 18. Okupny D. Morfologiczne skutki procesów stokowych zachodzących na zboczach zwałowiska zewnętrznego Adamów. In: Machowski R, Rzętała MA, editors. Z badań nad wpływem antropopresji na środowisko. Tom 9. Sosnowiec: Studenckie Koło Naukowe Geografów Uniwersytetu Śląskiego, Wydział Nauk o Ziemi Uniwersytetu Śląskiego; 2009.p. 32–43.
• 19. Krzaklewski W, Kowalik S, Wójcik J. Rekultywacja utworów toksycznie kwaśnych w górnictwie węgla brunatnego. Monografia. Kraków: Wydawnictwo MONOS; 1997.
• 20. Pietrzykowski M. 2. Założenia, obiekty, zakres i metody badań. In: Pietrzykowski M, editor. Analiza i optymalizacja metod klasyfikacji siedlisk i kryteriów oceny rekultywacji leśnej na wybranych terenach pogórniczych w Polsce. Kraków: Wydawnictwo Uniwersytetu Rolniczego w Krakowie; 2010. p. 45–63.
• 21. Hołubowicz K. Rekultywacja i zagospodarowanie zwałowisk Kopalni Węgla Brunatnego “Bełchatów”. In: Liszewski S, editor. Zmiany w środowisku przyszłego Bełchatowskiego Okręgu Przemysłowego. Stan z okresu przedinwestycyjnego i wstępnej fazy pracy elektrowni. Warszawa: Uniwersytet Łódzki, Państwowe Wydawnictwo Naukowe; 1985. p. 273–285.
• 22. Krzaklewski W. Rekultywacja w KWB “Bełchatów” – zamierzenia, stan i perspektywy. Prace Naukowe Instytutu Górnictwa Politechniki Wrocławskiej. Konferencje. 2005;112(44):411–421.
• 23. Pająk M, Krzaklewski W. Selected physical properties of initial soils on the outside spoil bank of the Bełchatów brown coal mine. Journal of Forest Science. 2007;53:308–313.
• 24. Pietrzykowski M. Scots pine (Pinus sylvestris L.) ecosystem macronutrients budget on reclaimed mine sites – stand trees supply and stability. Nat Sci. 2010;2(6):590–599. http://dx.doi.org/10.4236/ns.2010.26074
• 25. PGE GiEK S.A., Oddział Kopalnia Węgla Brunatnego Bełchatów [Internet]. Rekultywacja zwałowisk. 2016 [cited 2016 Apr 28]. Available from: https://www.kwbbelchatow.pgegiek.pl/index.php/ochrona-srodowiska/rekultywacja/rekultywacja-zwalowisk/
• 26. PGE GiEK S.A., Oddział Kopalnia Węgla Brunatnego Bełchatów [Internet]. Zwałowisko zewnętrzne P/Bełchatów. 2016 [cited 2016 Apr 28]. Available from: https://www.kwbbelchatow.pgegiek.pl/index.php/ochrona-srodowiska/rekultywacja/zwalowisko-zewnetrzne-pbelchatow/
• 27. Pająk M, Forgiel M, Krzaklewski W. Growth of trees used in reforestation of a northern slope of the external spoil bank of the “Bełchatów” brown coal mine. Electronic Journal of Polish Agricultural Universities. 2004;7(2):2.
• 28. Świtoniak M, Hulisz P, Kałucka I, Różański S. Rola monokultur sosnowych w kształtowaniu zasobów węgla organicznego w glebach zwałowiska zewnętrznego KWB Bełchatów. Roczniki Gleboznawcze. 2011;62:395–405.
• 29. Świtoniak M, Hulisz P, Różański S, Kałucka I. Soils of the external dumping ground of the Bełchatów open-cast lignite mine. In: Charzyński P, Hulisz P, Bednarek R, editors. Technogenic soils of Poland. Toruń: Polish Society of Soil Science; 2013. p. 255–274.
• 30. Nietrzeba-Marcinonis J. Wpływ rekultywacji leśnej terenów pokopalnianych na wybrane właściwości gleb inicjalnych na przykładzie zwałowiska nadkładu Kopalni Węgla Brunatnego Turów S.A. [PhD thesis]. Zielona Góra: Uniwersytet Zielonogórski, Wydział Inżynierii Lądowej i Środowiska; 2007.
• 31. Kaczarewski T, Milkowski D, Dymarski J, Wójcicka-Milewska M. Warunki końcowe formowania najwyższych pięter i wierzchowiny zwałowiska zewnętrznego w BOT KWB Turów S.A. In: Proceedings: “Zagrożenia naturalne w górnictwie”; 2006 Jun 12–14; Kraków-Tomaszowice, Poland. Kraków: Wydawnictwo IGSMiE PAN; 2006. p. 131–141. (Sympozja i Konferencje; vol 67).
• 32. Wąchalewski T, Krzaklewski W, Wójcik J. Rekultywacja zwałowisk kopalnictwa węgla brunatnego jako element ich bezpieczeństwa w toku i po zakończeniu formowania na przykładzie kopalni “Turów”. Zeszyty Problemowe Postępu Nauk Rolniczych. 1995;418(2):133–137.
• 33. PGE GiEK S.A., Oddział Kopalnia Węgla Brunatnego Turów [Internet]. Rekultywacja. 2016 [cited 2016 Apr 28]. Available from: https://www.kwbturow.pgegiek.pl/index.php/ochrona-srodowiska/rekultywacja/
• 34. PGE GiEK S.A., Oddział Kopalnia Węgla Brunatnego Turów [Internet]. Ochrona środowiska. 2016 [cited 2016 Apr 28]. Available from: https://www.kwbturow.pgegiek.pl/index.php/ochrona-srodowiska/
• 35. Kasztelewicz Z, Kozioł K, Klich J. Rekultywacja terenów poeksploatacyjnych w kopalniach węgla brunatnego w Polsce. Górnictwo i Geoinżynieria. 2007;31(2):295–307.
• 36. Tedersoo L, Smith M. Lineages of ectomycorrhizal fungi revisited: foraging strategies and novel lineages revealed by sequences from belowground. Fungal Biol Rev. 2013;27:83–99. http://dx.doi.org/10.1016/j.fbr.2013.09.001
• 37. Index Fungorum [Internet]. Search Index Fungorum. 2016 [cited 2016 Jun 20]. Available from: http://www.indexfungorum.org/Names/Names.asp
• 38. White TJ, Bruns T, Lee S, Taylor J. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis MA, Gelfand DH, Sninsky JJ, White TJ, editors. PCR protocols: a guide to methods and applications. San Diego, CA: Academic Press; 1990. p. 315–322. http://dx.doi.org/10.1016/b978-0-12-372180-8.50042-1
• 39. Gardes M, Bruns TD. ITS primers with enhanced specificity for Basidiomycetes – application to the identification of mycorrhizae and rusts. Mol Ecol. 1993;2:113–118. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-294X.1993.tb00005.x
• 40. Leski T, Rudawska M. Ectomycorrhizal fungal community of naturally regenerated European larch (Larix decidua) seedings. Symbiosis. 2012;56:45–53. http://dx.doi.org/10.1007/s13199-012-0164-4
• 41. Hall TA. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symp Ser. 1999;41:95–98.
• 42. Wojewoda W, Ławrynowicz M. Red list of the macrofungi in Poland. In: Mirek Z, Zarzycki K, Wojewoda W, Szeląg Z, editors. Red list of plants and fungi in Poland. Cracow: W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences; 2006. p. 53–70.
• 43. Rozporządzenie Ministra Środowiska z dnia 9 października 2014 r. w sprawie ochrony gatunkowej grzybów. Journal of Laws of the Republic of Poland (Dziennik Ustaw), 16 October 2014, item 1408.
• 44. Wojewoda W. Checklist of Polish larger Basidiomycetes. Cracow: W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences; 2003. (Biodiversity of Poland; vol.7).
• 45. Kujawa A. Grzyby makroskopijne Polski w literaturze mikologicznej [Internet]. 2016 [cited 2016 Jun 20]. Available from: http://www.grzyby.pl/grzyby-makroskopijne-Polskiw-literaturze-mikologicznej.htm
• 46. Kujawa A, Gierczyk B. Rejestr gatunków grzybów chronionych i zagrożonych [Internet]. 2016 [cited 2016 Jun 20]. Available from: http://www.grzyby.pl/rejestr-grzybow-chronionych-i-zagrozonych.htm
• 47. Knudsen H, Vesterholt J, editors. Funga Nordica: agaricoid, boletoid and cyphelloid genera. Copenhagen: Nordsvamp; 2008.
• 48. Krieglsteiner GJ. Verbreitungsatlas der Großpilze Deutschlands (West). Band 1: Ständerpilze. Teil A: Nichtblätterpilze. Stuttgart: Ulmer; 1991.
• 49. Krieglsteiner GJ. Verbreitungsatlas der Großpilze Deutschlands (West). Band 1: Ständerpilze. Teil B: Blätterpilze. Stuttgart: Ulmer; 1991.
• 50. Legon M, Henrici A, Roberts TJ, Spooner VN, Watling R. Checklist of the British & Irish Basidiomycota. Kew: Royal Botanic Gardens, Kew; 2005.
• 51. The Global Biodiversity Information Facility [Internet]. 2016 [cited 2016 May 20]. Available from: http://www.gbif.org/dataset/d7dddbf4-2cf0-4f39-9b2a-bb099caae36c
• 52. Kõljalg U, Larsson KH, Abarenkov K, Nilsson RH, Alexander IJ, Eberhardt U, et al. UNITE: a database providing web-based methods for the molecular identification of ectomycorrhizal fungi. New Phytol. 2005;166:1063–1068. http://dx.doi.org/10.1111/j.1469-8137.2005.01376.x
• 53. Kõljalg U, Nilsson RH, Abarenkov K, Tedersoo L, Taylor AFS, Bahram M, et al. Towards a unified paradigm for sequence-based identification of fungi. Mol Ecol. 2013;22(21):5271–5277. http://dx.doi.org/10.1111/mec.12481
• 54. Soil Survey Division Staff. Soil survey manual. Chapter 3. Examination and description of soils. Washington, D.C.: Soil Conservation Service, U.S. Department of Agriculture; 1993. (Agriculture Handbook; vol 18).
• 55. Chmiel MA. Discomycetes of the Kazimierz Landscape Park. Annales Universitatis Mariae Curie-Sklodowska. Sectio C, Biologia. 1991;46:21–27.
• 56. Karasiński D, Kujawa A, Gierczyk B, Ślusarczyk T, Szczepkowski A. Grzyby wielkoowocnikowe Kampinoskiego Parku Narodowego. Izabelin: Kampinoski Park Narodowy; 2015.
• 57. Snowarski M. Geopora arenosa (Fuckel) S. Ahmad [Internet]. 2016 [cited 2016 June 20]. Available from: http://www.grzyby.pl/gatunki/Geopora_arenosa.htm
• 58. Ślusarczyk T. Nowe stanowiska grzybów z rodzaju zasłonak (Cortinarius) w Polsce. Przegląd Przyrodniczy. 2013;24(4):42–68.
• 59. Ślusarczyk T, Gryc M, Wantoch-Rekowski M. Nowe stanowiska grzybów z rodzaju zasłonak Cortinarius w Polsce. Przegląd Przyrodniczy. 2015;26(2):3–21.
• 60. Karliński L, Rudawska M, Leski T. The influence of host genotype and soil conditions on ectomycorrhizal community of poplar clones. Eur J Soil Biol. 2013;58:51–58. http://dx.doi.org/10.1016/j.ejsobi.2013.05.007
• 61. Niskanen T. Nomenclatural novelties. Index Fungorum. 2014;201.
• 62. Bidaud A, Carteret X, Eyssartier G, Moënne-Loccoz P, Reumaux P. Sous-genre Hydrocybe, section Obtusi, sous-section Obtusoides. Atlas des Cortinaires. 2004;14:863–982.
• 63. Esteve-Raventós F, Niskanen T, Platas G, Liimatainen K, Ortega A. Cortinarius pseudofallax (Cortinariaceae, Agaricales), the first records from the Iberian Peninsula and Fennoscandia, and taxonomic notes on the C. parvannulatus/cedriolens group. Mycol Prog.2014;13:393–398. http://dx.doi.org/10.1007/s11557-013-0925-3
• 64. Kõljalg U, Abarenkov K, Nilsson RH, Larsson KH, Aas AB, Adams R, et al. SH188517.07FU [Internet]. UNITE Community; 2015 [cited 2016 Jun 15]. Available from: http://dx.doi.org/10.15156/BIO/SH188517.07FU
• 65. Beker HJ, Eberhardt U, Vesterholt J. Hebeloma (Fr.) P. Kumm. Lomazzo: Edizioni Tecnografica; 2016. (Fungi Europaei; vol 14).
• 66. Eberhardt U, Beker HJ, Vesterholt J. Decrypting the Hebeloma crustuliniforme complex: European species of Hebeloma section Denudata subsection Denudata (Agaricales). Persoonia. 2015;35:101–147. http://dx.doi.org/10.3767/003158515X687704
• 67. Lisiewska M, Siedlaczek S. Wstępne badania nad występowaniem grzybów kapeluszowych na zwałowisku górniczym “Smolnica”. Archiwum Ochrony Środowiska. 1982;1–4:93–110.
• 68. Lisiewska M, Linkowska R, Kaźmierczak B. Obserwacje mikologiczne na rekultywowanych zwałowiskach Konińskiego Zagłębia Węgla Brunatnego. Badania Fizjograficzne nad Polską Zachodnią – Seria B. Botanika. 1986;37:131–165.
• 69. Kałucka I, Beker HJ. Hebeloma cavipes Huijsman – a common species not distinguished so far in Poland. Acta Soc Bot Pol. 2010;79(1 suppl):74.
• 70. Pietras M, Rudawska M, Leski T, Karliński L. Diversity of mycorrhizal fungus assemblages on nursery grown European beech seedlings. Ann For Sci. 2013;70:115–121. http://dx.doi.org/10.1007/s13595-012-0243-y
• 71. Grilli E, Beker H, Eberhardt U, Schütz N, Leonardi M, Vizzini A. Unexpected species diversity and contrasting evolutionary hypotheses in Hebeloma (Agaricales) sections Sinapizantia and Velutipes in Europe. Mycol Prog. 2016;15:5. http://dx.doi.org/10.1007/s11557-015-1148-6
• 72. Vesterholt J, Eberhardt U, Beker HJ. Epitypification of Hebeloma crustuliniforme. Mycol Prog. 2014;13:553–562. http://dx.doi.org/10.1007/s11557-013-0938-y
• 73. Bujakiewicz A, Lisiewska M. Mikoflora zbiorowisk roślinnych Słowińskiego Parku Narodowego. Badania Fizjograficzne nad Polską Zachodnią – Seria B. Botanika. 1983;34:49–77.
• 74. Wantoch-Rekowski M. Bio-forum.pl [Internet]. Hebeloma cylindrosporum. ID 253678. 2015 [cited 2016 Jul 29]. Available from: http://www.bio-forum.pl/messages/7259/819733.html#POST253678
• 75. Kaufmann F. Die in Westpreußengefundenen Pilze der Gattungen Psalliota, Stropharia, Hebeloma, Inocybe, Gomphidius und Paxillus. Bericht des Westpreussischen Botanisch-Zoologischen Vereins. 1913;35:86–130.
• 76. Wojewoda W, Ławrynowicz M. Red list of threatened Macrofungi in Poland. In: Zarzycki K, Wojewoda W, Heinrich Z, editors. List of threatened plants in Poland. Cracow: W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences; 1992. p. 27–56.
• 77. Łuszczyński J. Diversity of Basidiomycetes in various ecosystems of the Góry Świętokrzyskie Mts. Łódź: Polish Botanical Society; 2007. (Monographiae Botanicae; vol 97). http://dx.doi.org/10.5586/mb.2007.001
• 78. Eberhardt U, Ronikier A, Nicole Schütz N, Beker HJ. The genus Hebeloma in the alpine belt of the Carpathians including two new species. Mycologia. 2015;107(6):1285–1303. http://dx.doi.org/10.3852/15-097
• 79. Gryc M. Bio-forum.pl [Internet]. Hebeloma collariatum. ID 276558. 2016 [cited 2016 Jul 29]. Available from: http://www.bio-forum.pl/messages/7259/7269.html#POST276558
• 80. Rudnicka-Jezierska W. Nowe gatunki grzybów psammofilnych. Acta Mycol. 1967;3:183–187. http://dx.doi.org/10.5586/am.1967.008
• 81. Eberhardt U, Beker HJ, Vesterholt I, Schütz N. The taxonomy of the European species of Hebeloma section Denudata subsections Hiemalia, Echinospora subsect. nov. and Clepsydroida subsect. nov. and five new species. Fungal Biol. 2016;120:72–103. http://dx.doi.org/10.1016/j.funbio.2015.09.014
• 82. Kałucka I. Macromycetes in the forest communities of the Jodły Łaskie nature reserve (central Poland). Acta Mycol. 1995;30(1):3–26. http://dx.doi.org/10.5586/am.1995.001
• 83. Chachuła P, Dorda A, Fiedor M, Rutkowski R. Grzyby Cieszyna. Cieszyn: Urząd Miejski w Cieszynie; 2015.
• 84. Vesterholt J. Taxonomic notes on Hebeloma (Agaricales, Cortinariaceae). Windahlia. 1993;20:55–61.
• 85. Lisiewska M, Bujakiewicz A. Grzyby (Fungi). Badania Fizjograficzne nad Polską Zachodnią – Seria B. Botanika. 1976;29:57–67.
• 86. Lisiewska M, Malinger M. Macromycetes w różnych postaciach grądu środkowoeuropejskiego na terenie uroczyska Marcelin w Poznaniu. Badania Fizjograficzne nad Polską Zachodnią – Seria B. Botanika. 2001;50:7–40.
• 87. Kujawa A, Gierczyk B, Domian G, Wrzosek M, Stasińska M, Szkodzik J. Preliminary studies of fungi in the Biebrza National Park. Part IV. Macromycetes – new data and the synthesis. Acta Mycol. 2015;50(2):1070. http://dx.doi.org/10.5586/am.1070
• 88. Ronikier A. Fungi of the Sarnia Skała massif in the Tatra Mountains (Poland). Cracow: Polish Academy of Sciences, W. Szafer Institute of Botany; 2012. (Polish Botanical Studies; vol 28).
• 89. Wantoch-Rekowski M. Bio-forum.pl [Internet]. Inocybe microspora. ID 253862. 2015 [cited 2016 Jul 29]. Available from: http://www.bio-forum.pl/messages/7259/819733. html#POST253862
• 90. Poirier J. Notes on the genus Inocybe – 1. Doc Mycol. 2002;31(124):3–13.
• 91. The Global Biodiversity Information Facility [Internet]. Inocybe griseotarda Poirier, 2002. 2016 [cited 2016 May 20]. Available from: http://www.gbif.org/species/3331185
• 92. Osmundson TW, Robert VA, Schoch CL, Baker LJ, Smith A, Giovanni Robich G, et al. Filling gaps in biodiversity knowledge for macrofungi: contributions and assessment of an herbarium collection DNA barcode sequencing project. PLoS One. 2013;8(4):e62419. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0062419
• 93. Crous PW, Shivas RG, Quaedvlieg W, van der Bank M, Zhang Y, Summerell BA, et al. Fungal Planet Description Sheets: 214–280. Persoonia. 2014;32:184–306. http://dx.doi.org/10.3767/003158514X682395
• 94. Kõljalg U, Abarenkov K, Nilsson RH, Larsson KH, Aas AB, Adams R, et al. SH174199.07FU [Internet]. UNITE Community; 2015 [cited 2016 Jun 15]. Available from: http://dx.doi.org/10.15156/BIO/SH174199.07FU
• 95. Flisińska Z. Studia nad grzybami wielkoowocnikowymi (macromycetes) Lublina. Annales Universitatis Mariae Curie-Sklodowska. Sectio C, Biologia. 1996;51:13–39.
• 96. Vauras J, Larsson E. Inocybe myriadophylla, a new species from Finland and Sweden. Karstenia. 2011;51:31–36.
• 97. Kõljalg U, Abarenkov K, Nilsson RH, Larsson KH, Aas AB, Adams R, et al. SH209543.07FU [Internet]. UNITE Community; 2015 [cited 2016 Jun 15]. Available from: http://dx.doi.org/10.15156/BIO/SH209543.07FU
• 98. Stangl J. Die Gattung Inocybe in Bayern. Hoppea. Denkschriften der Regensburgischen Botanischen Gesellschaft. 1989;46:5–388.
• 99. Vauras J, Kokkonen K. Finnish records of the genus Inocybe. The new species Inocybe saliceticola. Karstenia. 2009;48:57–67.
• 100. Bujakiewicz A. Grzyby wielkoowocnikowe Babiogórskiego Parku Narodowego. In: Wołoszyn BW, Jaworski A, Szwagrzyk J, editors. Babiogórski Park Narodowy. Monografia przyrodnicza. Kraków: Publikacje Komitetu Ochrony Przyrody PAN przy współpracy Babiogórskiego Parku Narodowego; 2004. p. 215–257.
• 101. Bujakiewicz A. Macrofungi in the Caltho-Alnetum association on the northern slopes of the Babia Góra massif (West Carpathians). In: Holeksa J, Mirek Z, Wójcicki JJ, editors. Krystyna Falińska & Janusz B. Faliński Festschrift. Cracow: W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy Of Sciences; 2006. p. 81–93. (Polish Botanical Studies; vol 22).
• 102. Bujakiewicz A. Macrofungi in the Alnetum incanae association along Jaworzyna and Skawica river valleys (Western Carpathians). Pol Bot J. 2011;56(2):267–285.
• 103. Gierczyk B, Kujawa A, Szczepkowski A, Karasiński D. Materiały do poznania mykobioty Puszczy Białowieskiej. Przegląd Przyrodniczy. 2014;25(1):3–36.
• 104. Gierczyk B, Kujawa A, Szczepkowski A, Ślusarczyk T, Kozak M, Mleczko P. XXI Wystawa Grzybów Puszczy Białowieskiej. Materiały do poznania mykobioty Puszczy Białowieskiej. Przegląd Przyrodniczy. 2015;26(3):10–50.
• 105. Sadowska B. Peliminary analysis of productivity of fruiting fungi on Strzeleckie meadows. Acta Mycol. 1974;10(1):141–158. http://dx.doi.org/10.5586/am.1974.003
• 106. Lisiewska M. Floristic-ecological investigations of Macromycetes on a coal mine dump in the Silesia region (S. Poland). Feddes Repert. 1987;98(3–4):265–272. http://dx.doi.org/10.1002/fedr.4910980309
• 107. Karasiński D. Grzyby większe rezerwatu przyrody “Ochojec”. In: Parusel JB, editor. Rezerwat przyrody “Ochojec” w Katowicach (Górny Śląsk). Monografia naukowo-dydaktyczna. Katowice: Centrum Dziedzictwa Przyrody Górnego Śląska; 2009. p. 86–103.
• 108. Snowarski M. Inocybe jacobi Kühner [Internet]. 2016 [cited 2016 Jun 22]. Available from: http://grzyby.pl/gatunki/Inocybe_jacobi.htm
• 109. The Global Biodiversity Information Facility [Internet]. Inocybe semifulva. 2016 [cited 2016 May 20]. Available from: http://www.gbif.org/species/3330742
• 110. Kõljalg U, Abarenkov K, Nilsson RH, Larsson KH, Aas AB, Adams R, et al. SH178661.07FU [Internet]. UNITE Community; 2015 [cited 2016 Jun 15]. Available from: http://dx.doi.org/10.15156/BIO/SH178661.07FU
• 111. The Global Biodiversity Information Facility [Internet]. Inocybe subporospora. 2016 [cited 2016 May 20]. Available from: http://www.gbif.org/species/3331115
• 112. Kõljalg U, Abarenkov K, Nilsson RH, Larsson KH, Aas AB, Adams R, et al. SH222185.07FU [Internet]. UNITE Community; 2015 [cited 2016 Jun 15]. Available from: http://dx.doi.org/10.15156/BIO/SH222185.07FU
• 113. Pázmány D. Zur Systematik der Gattung Laccaria Bk et Br. Z Mykol. 1994;60(1):5–11.
• 114. Vincenot L, Nara K, Sthultz, C, Labbé J, Dubois MP, Tedersoo L, et al. Extensive gene flow over Europe and possible speciation over Eurasia in the ectomycorrhizal basidiomycete Laccaria amethystina complex. Mol Ecol. 2012;21(2):281–299. http://dx.doi. org/10.1111/j.1365-294X.2011.05392.x
• 115. The Global Biodiversity Information Facility [Internet]. Laccaria macrocystidiata. 2016 [cited 2016 May 20]. Available from: http://www.gbif.org/species/7244206
• 116. Ławrynowicz M, Stasińska M. Macromycetes of the Stellario-Carpinetum in the Ińsko Landscape Park (NW Poland) – monitoring studies. Acta Mycol. 2000;33(2):157–182. http://dx.doi.org/10.5586/am.2000.019
• 117. Ławrynowicz M. Macromycetes of oak forests in the Jurassic Landscape Park (Częstochowa Upland) – monitoring studies. Acta Mycol. 2001;36(1):81–110. http://dx.doi.org/10.5586/am.2001.007
• 118. Skirgiełło A. Grzyby (Mycota). T. 25. Kraków: Instytut Botaniki im. W. Szafera, Polska Akademia Nauk; 1998. (Flora Polska).
• 119. Gumińska B. Mikoflora Pienińskiego Parku Narodowego (część III). Zeszyty Naukowe Uniwersytetu Jagiellońskiego. Prace Botaniczne. 1976;4:127–141.
• 120. Heilmann-Clausen J, Verbeken A, Vesterholt J. The genus Lactarius. Denmark: Danish Mycological Society; 1998. (Fungi of Northern Europe; vol 2).
• 121. Kozłowska M, Heluta VP, Mułenko W, Bazyuk-Dubey IV. Fungi of the Roztocze region (Poland and Ukraine). Part I. A checklist of larger Basidiomycota. Lublin: Towarzystwo Wydawnictw Naukowych Libropolis; 2015.
• 122. Kõljalg U, Abarenkov K, Nilsson RH, Larsson KH, Aas AB, Adams R, et al. SH210481.07FU [Internet]. UNITE Community; 2015 [cited 2016 Jun 16]. Available from: http://dx.doi.org/10.15156/BIO/SH210481.07FU
• 123. Leski T, Pietras M, Rudawska M. Ectomycorrhizal fungal communities of pedunculate and sessile oak seedlings from bare-root nurseries. Mycorrhiza. 2010;20:179–190. http://dx.doi.org/10.1007/s00572-009-0278-6
• 124. Fraiture A, Otto P, editors. Distribution, ecology and status of 51 macromycetes in Europe. Results of the ECCF Mapping Programme. Meise: Botanic Garden Meise; 2015. (Scripta Botanica Belgica; vol 53).
• 125. Snowarski M. Pisolithus arrhizus (Scop.) Rauschert [Internet]. 2016 [cited 2016 May 12]. Available from: http://www.grzyby.pl/gatunki/Pisolithus_arrhizus.htm
• 126. Kõljalg U, Abarenkov K, Nilsson RH, Larsson KH, Aas AB, Adams R, et al. SH221092.07FU [Internet]. UNITE Community; 2015 [cited 2016 Jun 16]. Available from: http://dx.doi.org/10.15156/BIO/SH221092.07FU
• 127. Martín MP, García MA. How many species in the Rhizopogon roseolus group? Mycotaxon. 2009;109:111–128. http://dx.doi.org/10.5248/109.111
• 128. Domański Z. Grzyby Lasów Łochowskich. Warszawa: author-publisher; 2001.
• 129. Mleczko P. Mycorrhizal and saprobic macrofungi of two zinc wastes in southern Poland. Acta Biol Crac Ser Bot. 2004;46:25–38.
• 130. Mleczko P, Kozak M, Zubek S. Russula medullata (Russulales, Basidiomycota): a new species in the mycobiota of Poland. Pol Bot J. 2010;55(2):483–488.
• 131. Domański Z. Nowe stanowiska rzadkich i interesujących grzybów w Polsce. Warszawa: author-publisher; 1997.
• 132. Krotoski T. Chronione i rzadkie gatunki grzybów wielkoowocnikowych Góry Jasieniowej na Podgórzu Cieszyńskim. Centrum Dziedzictwa Przyrody Górnego Śląska, Katowice. Natura Silesiae Superioris. 2009;12:33–44.
• 133. Snowarski M. Tricholoma aurantium (Schaeff.) Ricken [Internet]. 2016 [cited 2016 May 12]. Available from: http://www.grzyby.pl/gatunki/Tricholoma_aurantium.htm
• 134. Snowarski M. Tricholoma populinum Lange [Internet]. 2016 [cited 2016 May 12]. Available from: http://www.grzyby.pl/gatunki/Tricholoma_populinum.htm
• 135. Kõljalg U, Abarenkov K, Nilsson RH, Larsson KH, Aas AB, Adams R, et al. SH440634.07FU [Internet]. UNITE Community; 2015 [cited 2016 Jun 16]. Available from: http://dx.doi.org/10.15156/BIO/SH440634.07FU
• 136. Jumpponen A, Egerton-Warburton LM. Mycorrhizal fungi in successional environments – a community assembly model incorporating host plant, environmental and biotic filters. In: Dighton J, White JF, Oudemans P, editors. The fungal community. Its organization and role in the ecosystem. 3rd ed. Boca Raton, FL: CRC Press, Taylor & Francis; 2005. p. 139–180. (Mycology; vol 23).
• 137. Bidartondo MI, Bruns TD, Blackwell M, Edwards I, Taylor AFS, Horton T, et al. Preserving accuracy in GenBank. Science. 2008;319(5870):1616–1616.
• 138. Schoch CL, Robbertse B, Robert V, Vu D, Cardinali G, Irinyi L, et al. Finding needles in haystacks: linking scientific names, reference specimens and molecular data for Fungi. Database. 2014;1–21. http://dx.doi.org/10.1093/database/bau061

Identyfikatory

DOI

10.5586/am.1080