PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2007 | 523 |

Tytuł artykułu

Rola węgla aktywowanego i benzyloaminopuryny w mikrorozmnażaniu obuwika pospolitego

Autorzy

Warianty tytułu

EN
The role of activated charcoal and benzylaminopurine in micropropagation of Cypripedium calceolus L.

Języki publikacji

PL

Abstrakty

PL
Badano zdolność morfogenetyczną eksplantatów pochodzących z niedojrzałych torebek nasiennych obuwika pospolitego (Cypripedium calceolus L.) na pożywkach o zróżnicowanej zawartości benzyloaminopuryny (BA) i węgla aktywowanego (AC). Powstawanie protokormo-podobnych struktur (PLB) obserwowano na pożywce MS z 1 mg·dm⁻³ BA i 0,1% AC. Ten początkowy etap morfogenezy trwał aż 12 miesięcy, obserwacje anatomiczne wykazały jednak, że został zainicjowany etap różnicowania komórek, co daje nadzieję na regenerację pędów. Wykazano jednocześnie, że brak w podłożu AC prowadzi do ciemnienia eksplantatów i pożywki co w konsekwencji skutkowało zamieraniem kultury.
EN
The morphogenetic ability of Cypripedium calceolus L. explants from green capsules on the medium with different additions of benzylaminopurine (BA) and activated charcoal (CA) were investigated. Protocorm-like bodies were observed on the MS medium with 1 mg·dm⁻³ BA and 0.1% AC after 12 months. The anatomical study showed that the cells are competent to caulogenesis. It was presented heat on the media without charcoal the explants turned brown and died.

Słowa kluczowe

Wydawca

-

Rocznik

Tom

523

Opis fizyczny

s.163-168,tab.,fot.,bibliogr.

Twórcy

autor

Bibliografia

  • Arditti J., Ernst R. 1993. Micropropagation of orchids. New York: John Wiley & Son, Inc.: 434 - 466.
  • Ebert A., Taylor H. F. 1990. Assessment of the changes of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid concentrations in plant tissue culture media in the presence of activated charcoal. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 20: 165 - 172.
  • Fridborg G., Eriksson T. 1975. Effects of activated charcoal on growth and morphogenesis in cell cultures. Physiol. Plant. 34: 306 - 308.
  • Fridborg G., Pedersen M., Landstrom L-E., Eriksson T. 1978. The effect of activated charcoal on tissue cultures: adsorption of metabolites inhibiting morphogenesis. Physiol. Plant. 43: 104 - 106.
  • Hahn E-J., Peak K-Y. 2001. High photosynthetic photon flux and high CO₂ concentration under increased number of air exchanges promote growth and photosynthesis of four kinds of orchid plantlets in vitro. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 37: 678 - 682.
  • Johansson L. B., Calleberg E., Gedin A. 1990. Correlations between activated charcoal, Fe-EDTA and other organic media ingredients in cultured anthers of Anemone canadensis. Physiol. Plant. 80: 243 - 249.
  • Kunitake H., Nakashima T., Mori K., Tanaka M., Mii M. 1995. Plant regeneration from mesophyll protoplasts of Lisanthus (Eustoma grandiflorum) by adding activated charcoal into protoplast culture medium. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 43: 59 - 65.
  • Lee Y-I., Lee N. 2003. Plant regeneration from protocorm-derived callus of Cypripedium formosanum. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 39: 475 - 479.
  • Mohamed-Yasseen Y. 2001. Influence of agar and activated charcoal on uptake of gibberellin and plant morphogenesis in vitro. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 37: 204 - 205.
  • Mohamed-Yasseen Y., Barringer S. A., Schnell R. J., Splittstoesser W. E. 1995. In vitro shoot proliferation and propagation of guava (Psidium guajava L.) from germinated seedlings. Plant Cell Rep. 14: 525 - 528.
  • Mohamed-Yasseen Y., Splittstoesser W. E., Litz R. 1993. In vitro bulb formation and plant recovery from onion inflorescences. Hort. Science 28: 1052.
  • Mohamed-Yasseen Y., Splittstoesser W. E., Litz R. 1994. In vitro shoot proliferationand production of sets from garlic and shallot. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 36: 243 - 247.
  • Park S-Y., Murthy H. N., Paek K-Y. 2002. Rapid propagation of Phalaenopsis from floral stalk-derived leaves. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 38: 168 - 172.
  • Pindel A., Pindel Z. 2004. Initiation of in vitro cultures of chosen endangered European species of orchids. Folia Hort. 16: 111 - 117.
  • Šamaj J., Bobak M., Ovečka M., Blehova A., Pretova A. 1997. Structural features of plant morphogenesis in vitro. Veda Bratislava: 122 ss.
  • Shimura H., Koda Y. 2004. Micropropagation of Cypripedium macranthos var rebunense through protocorm-like bodies derived from mature seeds. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 78: 273 - 276.
  • Teixeira J. B., Sondahl M. R., Kirby E. G. 1994. Somatic embryogenesis from immature inflorescences of oil palm. Plant Cell Rep. 13: 247 - 250.
  • Yan N., Hu H., Huang J-L., Xu K., Wang H., Zhou Z-K. 2006. Micropropagation of Cypripedium flavum through multiple shoot of seedlings derived from mature seeds. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 84: 113 - 117.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-d6b462de-c584-47e3-b3d7-f6dc46aafe7b
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.