Zawartość steroli w korze po procesie wysokotemperaturowego suszenia tarcicy w komorowych suszarkach konwekcyjnych

• Autorzy: Szwajkowska-Michalek L. , Rogozinski T. , Stuper-Szablewska K.

Warianty tytułu

EN

Sterol content in bark after high-temperature drying of wood in convection driers

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

EN

Bark is a waste material in the furniture industry. It is mainly used for mulching in gardens. To fulfil its task in that field, bark must be microbiologically clean. Ergosterol (ERG) is the main sterol of the fungal cell wall. The research aimed to assess the usefulness of ergosterol concentration analysis for its use in the wood industry in order to quickly assess the level of microscopic contamination of the bark after the drying process. We tested the bark of oak, beech, hornbeam, spruce and pine in terms of ERG concentration and endogenous sterols content. The highest concentration of ERG was obtained for bark of coniferous species (1483.0 and 227.6 mg/kg for spruce and pine respectively), while much lower was found for deciduous (27.4−127.7 mg/kg). No sterols were found in the bark of deciduous trees after the drying process, with the exception of campesterol which was detected only in bark of beech and hornbeam. However, they were found in samples of conifer bark at the level of 1.6−1.78 mg/kg. The bark of deciduous trees is safer in terms of microbiology, and thus can be used in various industries as a secondary raw material.

Słowa kluczowe

PL

surowce drzewne; tarcica; suszenie wysokotemperaturowe; suszaki komorowe konwekcyjne; kora; zawartosc steroli

• Wydawca: -
• Czasopismo: Sylwan
• Rocznik: 2019
• Tom: 163
• Numer: 07
• Opis fizyczny: s.610-616,rys.,bibliogr.

Twórcy

autor

Szwajkowska-Michalek L.

• Katedra Chemii, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul.Wojska Polskiego 75, 60-637 Poznań

autor

Rogozinski T.

• Katedra Meblarstwa, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul.Wojska Polskiego 38/42, 60-637 Poznań

autor

Stuper-Szablewska K.

• Katedra Chemii, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul.Wojska Polskiego 75, 60-637 Poznań

Bibliografia

• Antkowiak L. 1997. Wykorzystanie kory niektórych drzew i krzewów. Wyd. AR, Poznań
• Dong Y., Steffenson B. J., Mirocha C. J. 2006. Analysis of ergosterol in single kernel and ground grain by gas chromatography-mass spectrometry. J Agric Food Chem 54 (12): 4121-4125.
• Edman K., Löfstedt H., Berg P., Eriksson K., Axelsson S., Bryngelsson I., Fedeli C. 2003. Exposure assessment to . and .Pinene, 3.Carene and wood dust in industrial production of wood pellets. Ann Occup Hyg. 47: 219-226.
• Eriksson K.-E. L., Blanchette R. A., Ander P. 1990. Microbial and enzymatic degradation of wood and wood components. Springer-Verlag. Berlin, Heidelberg, New York, London, Paris, Tokyo, Hong Kong.
• Glijer L., Matejak M., Osipiuk J. 1984. Theory and Technology of Wood Drying. PWN, Warszawa.
• Gutarowska B., Cichocka A. 2010. Zastosowanie metody oznaczania ergosterolu do szybkiej oceny zanieczyszczenia grzybami na różnych etapach produkcji papieru, Przegląd Papierniczy 66 (1): 45-47.
• Gutarowska B., Żakowska Z. 2002. Elaboration and application of mathematical model for estimation of mould contamination of some building materials based on ergosterol content determination, Int. Biodeter. Biodegr. 49 (4): 299-305.
• Hippelein M., Rügamer M. 2004. Ergosterol as an indicator of mould growth on building materials. Int. J. Hyg. Environ. Health 207: 379-385.
• Hussein H. S., Brasel J. M. 2001. Toxicity, metabolism, and impact of mycotoxins on humans and animals. Toxicology 167: 101-134.
• Jang A., Seo Y., Bishop P. L. 2005. The removal of heavy metals in urban runoff by sorption on mulch. Environmental Pollution 133: 117-127.
• Janowicz L. 2006. Biomasa w Polsce. Energetyka 8 (626): 601-604.
• Kohlmünzer S. 1985. Substancje naturalne i surowce farmakognostyczne. W: Kamińska M., Wiśniewska E. [red.]. Farmakognozja. PZWL, Warszawa.
• Lutomski J. 2002. Uznane roślinne środki dermatologiczne. The appreciated herbal medicinals for dermatologic uses. Borgis – Postępy Fitoterapii 3-4: 39-44.
• Łakomy P. 2004. Środowiskowe uwarunkowania zasiedlenia pniaków drzew liściastych przez wybrane gatunki grzybów saprotroficznych oraz grzyby rodzaju Armillaria. Rocz. AR Pozn. Rozpr. Nauk. 355.
• Maupetit P., Gatel F., Cahagnier B., Botorel G., Charlier M., Collet B., Dauvillier P., Laffiteau J., Roux G. 1993. Quantitative estimation of fungal infestation of feedstuffs by determining ergosterol content. 44th Annual Meeting of EAAP Aarhus, Denmark. 16-19.
• Mille-Lindblom C., Wachenfeldt E., Tranvik L. J. 2004. Ergosterol as a Measure of Living Fungal Biomass: Persistence in Environmental Samples after Fungla Death. J. Microbiol. Meth. 59 (2): 253-262.
• Pasanen A. L., Yli-Pietilä K., Pasanen P., Kalliokoski P., Tarhanen J. 1999. Ergosterol content in various fungal species and biocontaminated building materials. Appl Environ Microbiol. 65: 138-142.
• Perkowski J., Buśko M., Stuper K., Kostecki M., Matysiak A., Szwajkowska-Michałek L. 2008. Concentration of ergosterol in small-grained naturally contaminated and inoculated cereals. Biologia 63 (4): 542-547.
• Piispanen R., Saranpää P. 2004. Seasonal and within-stem variations of neutral lipids in silver birch (Betula pendula) wood. Tree Physiol. 24: 991-999.
• Rogoziński T., Szwajkowska-Michałek L., Dolny S., Andrzejak A., Perkowski J. 2014. The evaluation of microfungal contamination of dust created during woodworking in furniture factories. Med Pr 65: 705-713.
• Schnürer J., Jansson A. 1992. Ergosterol levels and mould colony forming units in Swedish grain of food and feed grade. Acta Agric. Scand., Sect. B. Soil and Plant Sci. 42: 240-245.
• Schwadorf K., Muller H. M. 1989. Determination of ergosterol in cereals, mixed feed components, and mixed feeds by liquid chromatography. J Assoc Off Anal Chem 72 (3): 457-462.
• Seki K., Saito N., Aoyama M. 1997. Removal of heavy metal ions from solutions by coniferous barks. Wood Science and Technology 31: 441-447.
• Sroka Z., Franiczek R. 2008. Antiradical and antimicrobial activity of plant extracts obtained from plant raw materials. Adv Clin Exp Med. 17 (3): 275-283.
• Stuper-Szablewska K., Perkowski J. 2017. Level of contamination with mycobiota and contents of mycotoxins from the group of trichothecenes in grain of wheat, oats, barley, rye and triticale harvested in Poland in 2006-2008. Ann Agric Environ Med. 24 (1): 49-55.
• Stuper-Szablewska K., Szablewski T., Cegielska-Radziejewska R., Ostrowska A., Matysiak A., Perkowski J. 2014. Zanieczyszczenie grzybami mikroskopowymi różnych rodzajów ściółki stosowanej w kurnikach. ABiD 2: 199-204.
• Surmiński J. 1996. Kora – budowa anatomiczna, skład chemiczny, możliwości wykorzystania. Wydaw. AR, Poznań.
• Szczukowski S., Tworkowski J., Sulima P. 2002. Kora wierzb krzewiastych źródłem glikozydów salicylowych. Wiad. Ziel. 1: 6-7.
• Szołtyk G., Hilszczańska D. 2003. Rewitalizacja gleb w szkółkach leśnych. CILP, DGLP, Warszawa.
• Szwajkowska-Michałek L., Stuper K., Łakomy P., Matysiak A., Perkowski J. 2010. Contents of microscopic fungi in dusts coming from cereal analysis laboratories. Ann Agric Environ Med. 17: 101-106.
• Worrall J. J., Anagnost S. E., Zabel R. A. 1997. Comparison of wood decay among diverse lignicolous fungi. Mycologia 89: 199-219.
• Ziółkowska D., Shyichuk A., Syrotynska I. 2008. Sorption of cationic dyes onto barks and leaves of European trees. Ars Separatoria Acta 6: 69-79.

Identyfikatory

DOI

10.26202/sylwan.2019016