Ocena przydatnosci wybranych chromosomalnych markerow do identyfikacji Bacillus anthracis. I. Ocena markerow SG-749, SG-450 i SG-300

• Autorzy: Zasada A. A. , Jagielski M.

Warianty tytułu

EN

Valuation for usefulness of selected chromosomal markers for Bacillus anthracis identification. I. Valuation for markers SG-749, SG-450 and SG-300

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Przeprowadzono ocenę wybranych markerów chromosomalnych oraz metod biologii molekularnej pod kątem ich przydatności do identyfikacji Bacillus att- thracis. W pracy przedstawiono wyniki oceny uzyskane dla markerów SG-749, SG-300 oraz SG-450. Posłużono się techniką RFLP-PCR i MSSCP oraz różnymi metodami rozdziału elektroforetycznego. Wyniki badań dostarczyły informacji nie tylko na temat swoistości analizowanych markerów, ale także o możliwości skrócenia czasu potrzebnego na uzyskanie wyniku.

EN

The article presents results of valuation for B. anthracis-specificity and usefulness for its identification obtained for different chromosomal markers. In the first part of the study markers SG-749, SG-300 and SG-450 were analyzed. For the investigation RFLP-PCR and MSSCP techniques were used and different electrophoresis methods were tested. The results gave an information not only about specificity of tested markers but also about the possibility of shorten time necessary to obtain results of B. anthracis identification.

Słowa kluczowe

PL

markery chromosomowe; marker SG-749; marker SG-450; marker SG-300; Bacillus anthracis; identyfikacja; biologia molekularna

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Doświadczalna i Mikrobiologia
• Rocznik: 2006
• Tom: 58
• Numer: 4
• Opis fizyczny: s.347-354,rys.,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Zasada A. A.

• Panstwowy Zaklad Higieny w Warszawie, ul.Chocimska 24, 00-791 Warszawa

autor

Jagielski M.

Bibliografia

• 1. Battisti L, Green BD, Thome CB. Mating system for transfer of plasmids among Bacillus anthracis, Bacillus cereus and Bacillus thuringiensis. J Bacteriol 1985; 162: 543-50.
• 2. Daffonchio D, Borin S, Frova G i inni. A randomly amplified polymorphic DNA marker specific for teh Bacillus cereus group is diagnostic for Bascillus anthracis. Appl Environ Microbiol 1999; 65: 1298-303.
• 3. Daffonchio D, Cherif A, Borin S. Homoduplex and heteroduplex polymorphisms of the amplified ribosomal 16s-23s internal transcribed spacers describe genetic relationships in the "Bacillus cereus group". Appl Environ Microbiol 2000; 66: 4560-8.
• 4. Daffonchio D, Raddadi N, Merabishvili M i inni. A strategy for identification of Bacillus cereus and Bacillus thuringiensis strains closely related to Bacillus anthracis. Appl Environ Microbiol 2006; 72: 1295-301.
• 5. Gierczyński R, Kałużewski S, Rakin A i inni. Intriguing diversity of Bacillus anthracis in eastern Poland - the molecular echoes of the past outbreaks. FEMS Microbiol Lett 2004; 239: 235-40.
• 6. Gierczyński R, Kałużewski S, Rastawicki W. The MSSCP technique a promising tool for identification of Bacillus anthracis. Bacillus Symposium, The 1st FEMS Congress of European Microbiologists, Ljubljana, Slovenia 29.06-03.07.2003. Programme Book page 28.
• 7. Harrell LJ, Andersen GL, Wilson KH. Genetic variability of Bacillus anthracis and related species. J Clin Microbiol 1995; 33: 1847-50.
• 8. Helgason E, Økstad OA, Caugant DA i inni. Bacillus anthracis, Bacillus cereus and Bacillus thuringiensis - one species on the basic of genetic evidence. Appl Environ Microbiol 2000; 66: 2627-30.
• 9. Ivins BE, Ezzell JW, Jemski J i inni. Immunization studies with attenuated strains of Bacillus anthracis. Infect Immun 1986; 52: 454-8.
• 10. Jernigan DB, Raghunathan PL, Bell BP i inni. Investigation of bioterrorism-related anthrax, United States, 2001: epidemiologic findings. Emerg Infect Dis 2002; 8: 1019-28.
• 11. Klee S, Özei M, Appel В i inni. Characterization of Bacillus anthracis-likt bacteria isolated from wild great apes from Côte d'Ivoire and Cameroon. J Bacteriol 2006; 188: 5333-44 .
• 12. Merabishvili M, Natidze M, Rigvava S i inni. Diversity of Bacillus anthracis strains in Georgia and of vaccine strains from the former Soviet Union. Appl Environ Microbiol 2006; 72: 5631-6.
• 13. Mikesell P, Ivins BE, Ristroph JD, Dreier TM. Evidence for plasmid-mediated toxin production in Bacillus anthracis. Infect Immun 1983; 39: 371-6.
• 14. Moszynski P. Rains fail to bring relief in Zimbabwe. BMJ 2006; 332: 72.
• 15. Nutsch A, Spire M. Carcass disposal: A comprehensive review. National Agricultural Biosecurity Center Consortium USDA APHIS 2004; str. 39.
• 16. Shiferaw F, Abditcho S, Gopilo A, Laurenson MK. Anthrax outbreak in Mago National Park, southern Ethiopia. Vet Ree, 2002 ; 150: 318-20.
• 17. Siamudaala VM, Bwalya JM, Munag'andu HM i inni. Ecology and epidemiology of anthrax in cattle and humans in Zambia. Jpn J Vet Res 2006 ; 54: 15-23.
• 18. Szymajda U, Bartoszcze M. Zastosowanie metody multiplex PCR i PCR-RFLP do identyfikacji Bacillus anthracis. Med Dośw Mikrobiol 2005; 57: 277-85.
• 19. Zasada AA, Gierczyński R, Kałużewski S, Jagielski M. Wirulotypy szczepów Bacillus anthracis izolowanych na terenie Polski. Med Dośw Mikrobiol 2005; 57: 269-75.
• 20. Zasada AA, Gierczyński R, Raddadi N i inni. Some Bacillus thuringiensis strains share rpoB nucleotide polymorphisms also present in Bacillus anthracis. J Clin Microbiol 2006; 44: 1606-7.