Test PCR w diagnostyce wirusowego zakaznego ronienia klaczy

• Autorzy: Banbura M , Chmielewska A. , Tucholska A. , Malicki K.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

EN

The nested PCR technique (Borchers and Slater, 1993) was applied for the diagnosis of EHV-1 infections. DNA samples were isolated from livers of miscarried fetuses or dead foals. After amplification we detected EHV-1 specific sequences in 9 out of 15 fetuses and in 2 out of 6 foals. PCR results were compared to results of routinely performed immunofluorescent detection of viral antigen in cryosections of tissues. Six tested fetuses were FAT-positive, 7 FAT-negative and 2 were questionable. One FAT-negative fetus and two questionable were PCR-positive. All foals were FAT-negative. We have demonstrated that PCR is more sensitive than FAT and allows verification of inconclusive results of antigen detection. PCR is also suitable for detection of EHV-1 specific sequences in archival samples frozen up to 3 years.

Słowa kluczowe

PL

lancuchowa reakcja polimerazy; klacze [zool.]; diagnostyka; wirusowe ronienie klaczy; choroby zwierzat; konie

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Weterynaryjna
• Rocznik: 1998
• Tom: 54
• Numer: 11
• Opis fizyczny: s.772-774,fot.,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Banbura M

• Szkola Glowna Gospodarstwa Wiejskiego, ul.Grochowska 272, 03-849 Warszawa

autor

Chmielewska A.

autor

Tucholska A.

autor

Malicki K.

Bibliografia

• 1. Ballagi-Pordany A., Klingeborn В., Flensburg J., Belak S.: Vet. Microbiol. 22, 373, 1990.
• 2. Borchers K., Slater J.: J. Virol. Meth. 45, 331, 1993.
• 3. Bryans J. T., Allen G. P. W.: Herpesvirus Diseases of Cattle, Horses, and Pigs. G. Wittman (Wydawca), Kluwer Academic Publishers, Boston 1989, s. 176.
• 4. Kuźmak J., Grundboeck J.: Medycyna Wet. 49, 151, 1993.
• 5. McCann S. H. E., Mumford J. A., Binns M. M.: J. Virol. Meth. 52, 184, 1995.
• 6. O'Keefe J. S., Murray A., Wilks C. R., Moriarty K. M.: Res. Vet. Sci. 50, 349, 1991.
• 7. O'Keefe J. S., Julian A., Moriarty K., Murray A., Wilks C. R.: New Zealand Vet. J. 42, 93, 1994.
• 8. Parnas J., Kunicki-Goldfinger W., Stępkowski S.: Ann. Univ. Mariae Curie-Skłodowska, Lublin, 4, 217, 1949.
• 9. Rola J., Żmudziński J.: Medycyna Wet. 53, 268, 1997.
• 10. Saiki R. K., Gelfand D. H., Stoffel S., Scharf S. J., Higuchi R., Horn G. T., Mullis K. B., Erlich H.: Science 239, 487, 1988.
• 11. Sharma P. C., Culinnae A. A., Onions D. E., Nicolson L.: Eq. Vet. J. 24, 20, 1992.
• 12. Strauss W. M. W.: Current Protocols in Molecular Biology. T. 1, Ausubel F. M., Brent R., Kingston R. E., Moore D. D., Seidman J. G., Smith J. A., Struhl K. (Wydawcy). Greene Publishing Associates and Wiley-Interscience, New York, 1992, s. 2.2.1-2.2.3.
• 13. Studdert M. J., Simpson T., Roizman B.: Science 214, 562, 1981.
• 14. Studdert M. J.: Arch. Virol. 77, 249, 1983.
• 15. Studdert M. J., Fitzpatrick D. R., Horner G. W., Westbury H. A., Gleeson L. J.: Aust. Vet. J. 61, 345, 1984.
• 16. Wagner W. N., Bogdan J., Haines D., Townsend H. G. G., Misra V.: Can. J. Microbiol. 38, 1193, 1992.
• 17. Welch H. M., Bridges C. G., Lyon A. M., Griffiths A. M., Edington N.: J. Gen. Virol., 73, 261, 1992.
• 18. Woyciechowska S.: Medycyna Wet. 5, 1, 1950.
• 19. Woyciechowska S.: Med. Dośw. i Mikrobiol. 12, 255, 1960.