PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2010 | 18 | 1 |

Tytuł artykułu

In vitro regeneration and somaclonal variation of Petunia hybrida

Warianty tytułu

PL
Zmiennosc somaklonalna podczas regeneracji in vitro pedow Petunia hybrida

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
The effect of different levels of naphthaleneacetic acid (NAA) and benzyladenine (BA) on shoot multiplication and regeneration of Petunia hybrida was studied. Regenerated shoots from leaf explants were grown ex vitro for analysis of somaclonal variation. Seeds of Petunia hybrida were germinated in vitro on MS basal medium. The seedlings were used as a source of explants for the multiplication and regeneration experiments. For the shoot multiplication experiment, shoot explants taken from germinated seedlings were cultured on MS basal media supplemented with different concentrations of BA (0.1, 0.4, 0.8 mgl-1) and NAA at concentration of 0.1 mg l-1. Highest number of axillary shoot was obtained on medium supplemented with 0.8 mg l-1 BA and 0.1 mgl-1NAA. For regeneration experiments, leaf sections taken from germinated seedlings were cultured onto MS media supplemented with three levels of BA (0.5, 1.0 and 2.0 mgl-1) and 0.5 mgl-1NAA. The highest shoot regeneration rate (45%) was observed in MS medium supplemented with 2 mg l-1 BA. For the evaluation of somaclonal variation, lateral bud explants were taken from pink colored petunia plants that were grown in the greenhouse. The buds were disinfected and cultured on MS basal media supplied with 30 mgl-1 gentamycin sulfate and 30 mg l-1 Benlate. After shoots grew, leaf sections were then taken from them shoots and cultured onto shoot regeneration medium (MS medium supplemented with 2 mg l-1 BA). The regenerated adventitious shoots were cultured on MS medium without growth regulator. These shoots were then rooted, acclimatized and transferred to the greenhouse for evaluation. Two forms of leaf shape (orbicular and elliptic) and three flower colors (violet, purple and light pink) appeared on the plantlets.
PL
Badano wpływ rożnych stężeń kwasu naftylooctowego (NAA) i benzyladeniny (BA) na regeneracj ę i namnażanie pędów Petunia hybryda. Występowanie zmienności somaklonalnej analizowano podczas wzrostu ex vitro pędów zregene­rowanych z eksplantatów liściowych. Nasiona Petunia hybrida kieIkowały in vitro na po żywce podstawowej MS. Siewki posłużyły jako źródło eksplantatów do do świad­czeń nad mikrorozmnażaniem i regeneracją pędów. W doświadczeniach nad mikro- rozmnażaniem eksplantaty pędowe pobrane z siewek byfy wyszczepiane na pożywkę MS z dodatkiem różnych stężeń BA (0,1, 0,4, 0,8 mgl-1) i NAA w stężeniu 0,1 mgl-1. Największą liczbę pędów kątowych uzyskano na pożywce z BA w stężeniu 0,8 mg l-1 i NAA 0,1 mg l-1. Do do świadczeń nad regeneracją pobierano liście z siewek, które następnie przecinano na pół i wszczepiano na pożywkę MS z dodatkiem BA w stężeniach 0,5, 1,0 i 2,0 mg l-1 oraz NAA w stężeniu 0,5 mg l-1. Największą efektywność regeneracji pędów (45%) stwierdzono na pożywce MS wzbogaconej w 2 mgl-1 BA. Do oceny zmienności somaklonalnej pobierano eksplantaty w postaci pąków bocznych z rosnących w szklarni roślin petunii o różowych kwiatach. Pąki były dezynfekowane i wszczepiane na pożywkę MS z dodatkiem 30 mg l-1 siarczanu gentamycyny i 30 mg l-1 Benlate. Gdy z pąków rozwinęły sięp ędy, pobierano z nich eksplantaty liściowe i wyszczepiano na pożywkę do regeneracji pędów (MS z dodatkiem 2 mgl-1 BA). Zregenerowane pędy przybyszowe były ukorzeniane, aklimatyzowane i wysadzone w szklarni dla oceny zmienności. W stosunku do formy wyjściowej, rośliny otrzymane z pędów przybyszowych miafy dwie nowe formy liści (kołowe i eliptyczne) oraz trzy nowe kolory kwiatów (fioletowe, purpurowe i jasnoróżowe).

Wydawca

-

Rocznik

Tom

18

Numer

1

Opis fizyczny

p.71-81,fig.,ref.

Twórcy

autor
  • An Najah National University, P.O. Box 707. Nablus, Palestinian Authority
autor
autor

Bibliografia

  • Auer A.C., Cohen J.D., Laloue M. Cooke J. 1992. Comparison of benzyl adenine metabolism in two Petunia hybrida lines differing in shoot organogenesis. PLANT PHYSIOL. 98: 1035-1041.
  • Bairu M.W., Catherine W.F., Johannes van S. 2006. The effect of plant growth regulators on somaclonal variation in Cavendish banana (Musa AAA cv. 'Zelig'). SCI. HORT. 108(4): 347-351.
  • Beck M.J., Camper D. 1991. Shoot regeneration from petunia leaf discs as a function of explant size configuration and benzyladenine exposure. PLANT CELL TISSUE ORGAN CULT. 26(2): 101-106.
  • Bouman H., De Klerk G.J. 1996. Somaclonal variation in biotechnology of ornamental plants. In: Geneve R., Preece J., Merkle S. (eds.), Biotech­nology of Ornamental Plants. CAB International, pp. 165-183.
  • Bradley J.M., Davies K.M., Deroles S.C., Bloor S.J., Lewis D.H. 1989. The maize LC regulatory gene up regulates the flavonoid biosynthetic pathway of petunia. PLANT J. 13: 381-393.
  • Burchi G., Griesbach R.J., Mercuri A., De Benedetti L., Priore D., Schiva T. 1995. Color modification in petunia using the lc regulatory gene from maize. J. GENET BREED. 49: 163­168.
  • Christianson M.L., Warnick D.A. 1985. Temporal requirement for phytohormone balance in the control of organogenesis in vitro. DEV BIOL. 122: 494-497.
  • Christianson M.L., Warnick D.A. 1988. Organogenesis in vitro as a developmental process. HORT SCI. 23: 515-519.
  • Christopher B. 1994. Encyclopedia of Gardening. The American Horticultural Society, pp.170-181,546,560.
  • Chuang S.J., Chen C.L., Chen J.J., Chon W.Y., Sung J.M. 2009. Detection of somaclonal variation in micro­propagated Echinacea purpurea using AFLP marker. SCI. HORT. 120(1): 121-126.
  • Davies K.M., Bloor S.J., Spiller G.B., Deroles S.C. 1998. Production of yellow color in flowers: redirection of flavonoid biosynthesis in petunia. PLANT J. 13: 259-266.
  • Dimasi-Therion K.E., Conomon A.S., Sfakiotakis E.M. 1993. Promotion of petunia (Petunia hybrida L.) regeneration in vitro by ethylene. PLANT CELL TISSUE ORGAN CULT. 32: 219-225.
  • Dixon R.A., Gonzales R.A. (eds) 1985. Plant cell culture: a practical approach. Oxford University Press, New York Published by British Library Cataloguing in Publication Data.
  • Frett J.J., Dirr M. 1986. Effect of nitrogen and calcium stock plant nutrition on Petunia hybrida leaf and anther explant growth in vitro. SCI. HORT. 28: 289-298.
  • Geneve R.L., Preece J.E., Merkle S.A. 1997. Biotechnology of ornamental plants. PLANT TISSUE CULT. BIOTECHNOL. (3)2: 112.
  • Huits H.S.M., Gerats A.G.M., Kreike M.M., Mol H.N.M., Koes R.E. 1994. Genetic control of dihydro-flavonol 4-reductase gene expression in Petunia hybrida. PLANT J. 6:295-310.
  • Hutchinson J.F., Kaul V., Maheswaran G., Moran J.R., Graham M.W., Richards D. 1992. Genetic improve­ment of floricultural crops using biotechnology. AUST. J. BOT. 40: 765-787.
  • Jain M.S., De Klerk G.J. 1998. Somaclonal variation in breeding and propagation of ornamental crops. PLANT TISSUE CULT. BIOTECHNOL. 4(2): 63-75.
  • Lowe K.C., Davey M.R., Power J.B. 1996. Plant tissue culture: past, present and future. PLANT TISSUE CULT. BIOTECH. 2(4): 175-185.
  • Mol J.M.N., Koes R., van den Berg E.A., Reif H.J., Kreuzaler F., Veltkamp E. 1985. The genetics of secondary metabolite production in higher plans: the flavonoid genes of petunia as a model system. ADV. AGRI. BIOTECHNOL. 13:122-123.
  • Pollard J.W., Walker J.M. 1990. Methods in Molecular Biology. Plant Cell and Tissue Culture. Humana Press, pp. 71-79.
  • Qu Y.H., Lin C., Zhou W., Li Y., Chen B., Chen G Q. 2007. Effect of CO2 concentration and moisture content of sugar-free media on the tissue - cultured plantlets in a large growth chamber. COMMUN NON-LINEAR SCI. NUMBER SIMUL. 10.1016/j.cnsns.- 2007.05.032.
  • Quattrocchio F., Wing J.F., van der Woud K., Mol J.N.M., Koes R. 1998. Analysis of Bhlh and myb domain proteins: species specific regulatory differences are caused by divergent evolution of target anthocyanin genes. PLANT J. 13: 475-488.
  • Renaudin J.P., Tournaire C., Teyssendier de la Serve B. 1991. Quantitative analysis of protein changes during meristem initiation and bud formation in protoplast-derived Petunia hybrida callus. PHYSIOL. PLANT. 82: 48-56.
  • Reuveni M., Evenor D. 2007. On the effect of light on shoot regeneration in Petunia. PLANT CELL TISSUE ORGAN CULT. 89: 49-54.
  • Shi L.Y., Strabala T.J., Hagen G., Guifoyle T.J. 1994. Transgenic tobacco plants that overproduce cytokinins show increased tolerance to exogenous auxin and auxin transport inhibitors. PLANT SCI. 100: 9-14.
  • Skirvin R.M., Abu-Qaoud H., Sriskandarajah S., Harry D.E. 1993. Micopropagation of Woody Plants. Kluwer Academic Publishers. Printed in Netherlands, pp. 121-152
  • Solano R., Nieto C., Avila J., Canas L., Diza I., Paz Ares J. 1995. Dual DNA binding specificity of a petal epidermis - specific MYB transcription factor from Petunia hybrida. EMBO J. 14: 1773­1784.
  • Traas J.A., Renaudin J. P., Teyssendier De La Serve B. 1990. Changes in microtubular organization mark transition to organized growth during organogenesis in Petunia hybrida. PLANT SCI. 68(2): 249-256.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-article-aa07c9ab-1321-4068-b78e-03045960ee1e
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.