Wykrywanie biofilmu bakteryjnego na biomaterialach medycznych

• Autorzy: Rozalska B. , Sadowska B. , Wieckowska M. , Rudnicka W.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

W pracy oceniano przydatności metody redukcji TTC przez żywe bakterie do wykrywania biofilmu tworzonego na powierzchni przyrządów medycznych, wykonywanych z różnych materiałów syntetycznych. Badano adhezję drobnoustrojów do powierzchni biomateriałów in vitro oraz tworzenie przez te drobnoustroje biofilmu podczas zakażenia zwierząt poddanych implantacji. Potwierdzono przydatność badanej metody, wykazując jej wysoką czułość, krótki czas i łatwość wykonania.

EN

This study was performed to assess the value TTC assay in the diagnosis of biomaterial-associated infections. In this assay, soluble colourless TTC is reduced to insoluble red formazan by electron transfer associated with active oxidative bacterial metabolism and is precipitated intracellularly. Microbial adhesion and biofilm formation on the surface of medical prosthetic devices (vescular and urinary catheters) made of various polymers (PTFE, H-PE, PCW, SL), were determined. The microorganisms which are most often isolated in medical device-associated infections: S. aureus, S. epidermidis, E. faecalis, E. coli, P. vulgaris, P. aeruginosa, C. albicans, were included into the study. The obtained results indicate that the assay using TTC as a metabolic indicator of bacterial biofilm presence, is technically simple to conduct with minimal setup time. Even when classical cultures yielded no bacterial growth, TTC assessments demonstrated bacterial biofilms. TTC assay could be recommended as a quick routine method for confirmation of biomaterial device-associated infection.

Słowa kluczowe

PL

materialy biologiczne; infekcja bakteryjna; szpitale; przyrzady medyczne; adhezja bakterii; zakazenia szpitalne; bakterie

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Doświadczalna i Mikrobiologia
• Rocznik: 1998
• Tom: 50
• Numer: 1-2
• Opis fizyczny: s.115-122,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Rozalska B.

• Uniwersytet Lodzki, 90-237 Lodz, ul.Banacha 12-16

autor

Sadowska B.

autor

Wieckowska M.

autor

Rudnicka W.

Bibliografia

• 1. Anwar H, Strap JL, Costerton JW. Establishment of aging biofilms: Possible mechanism of bacterial resistance to antimicrobial therapy. Antimicrob Agents Chemother 1992; 36: 1347-51.
• 2. Buret A, Ward KH, Olson ME i inni. An in vivo model to study the pathobiology of infectious biofilms on biomaterial surfaces. J Biomed Mater Res 1991; 25: 865-74.
• 3. Burow A, Brzychcy M, Paziak-Domańska B i inni. Przydatność mikrokolorymetrycznej metody redukcji XTT do oceny wewnątrzkomórkowego zabijania patogenów. Med Dośw Mikrobiol 1995; 47: 203-12.
• 4. Capdevila JA, Planes AM, Palomar M i inni. Value of differential quantitative blood cultures in the diagnosis of catheter-related sepsis. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1992; 11: 403-07.
• 5. Choi KH, Maheswaran SK, Choi CS. Colorimetric assay using XTT for assessing virulence of avian Pasteurella mutocida strains. Vet Microbiol 1995; 45: 191-200.
• 6. Elliot TSJ. Intravascular-device infections. J Med Microbiol 1988; 27: 161-67.
• 7. Freeman DJ, Falkiner FR. Coagulase-negative staphylococci and continuous ambulatory peritoneal dialysis. Rev Med Microbiol 1991; 2: 98-104.
• 8. Gallimore B, Gagnon RF, Subang R i inni. Natural history of chronic Staphylococcus epidermidis foreign body infection in a mouse model. J Infect Dis 1991; 164: 1220-23.
• 9. Garn H, Krause H, Enzemann V i inni. An improved MTT assay using the electroncoupling agent menadione. J Immunol Meth 1994; 168: 253-56.
• 10. Guidet B, Nicola I, Barakett V i inni. Skin versus hub cultures to predict colonization and infection of central venous catheter in intensive care patients. Infection 1994; 1: 43-8.
• 11. Hussain M, Wilcox MH, White PJ. The slime of coagulase-negative staphylococci: biochemi¬stry and relation to adherence. FEMS Microbiol Rev 1993; 104: 191-208.
• 12. Moonens F, El Alami S, Van Gossum A i inni. Usefulness of Gram staining of blood collected from total parenteral nutrition catheter for rapid diagnosis of catheter-related sepsis. J Clin Microbiol 1994; 32: 1578-79.
• 13. Przondo-Mordarska A. Zakażenia szpitalne. Komitet do spraw zakażeń szpitalnych, Continuo, Wrocław, 1997, 45.
• 14. Raad II, Baba M, Bodey GP. Diagnosis of catheter-related infections: the role of surveillance and targeted quantitative skin cultures. Clin Infect Dis 1995; 20: 593-97.
• 15. Reid G, Busscher HJ. Importance of surface properties in bacterial adhesion to biomaterials, with particular reference to the urinary tract. Intern Biodeterioration Biodegradation 1992; 30: 105-22.
• 16. Różalska B, Ljungh A. Biomaterial-associated staphylococcal peritoneal infections in a neutropaenic mouse model. FEMS Immunol Med Microbiol 1995; 11: 307-20.
• 17. Różalska B, Burow A, Ljungh A i inni. The influence of long-lasting implantation on the function of phagocytes towards staphylococci. Acta Microbiol Polon 1995; 44: 243-54.
• 18. Różalska B. Infekcje towarzyszące stosowaniu w medycynie biomateriałów. Post Hig Med Dośw 1994; 48: 143-60.
• 19. Taylor PC. Routine laboratory diagnosis of continuous ambulatory peritoneal dialysis peritonitis using centrifugation/lysis and saponin-containing media. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1994; 13: 249-52.