Wpływ sposobu przygotowania stanowiska pod pszenicę jarą na liczebność mikroorganizmów i aktywność biochemiczną gleby

• Autorzy: Pociejowska M. , Natywa M. , Majchrzak L. , Clapa T. , Selwet M.

Warianty tytułu

EN

Effect of site preparation for spring wheat on the number of microorganisms and biochemical activity of soil

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Badania przeprowadzono w sezonie wegetacyjnym 2012 r. w Zakładzie Doświadczalno-Dydaktycznym Brody, należącym do Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu. Ich celem było poznanie wpływu sposobu uprawy gleby po wysiewie międzyplonu ścierniskowego (gorczyca biała i łubin + groch) pod uprawę pszenicy jarej na liczebność mikroorganizmów (bakterii i grzybów) i aktywność enzymów: dehydrogenazy, fosfatazy kwaśnej i proteazy. Próbki glebowe pobrano pięciokrotnie w trakcie sezonu wegetacyjnego (przed siewem pszenicy (BBCH 0), faza 2–3 rozkrzewień (BBCH 22-23), strzelanie w źdźbło (BBCH 30-31), koniec kłoszenia (BBCH 59) oraz po zbiorze). Analizę statystyczną wyników przeprowadzono testem Tukeya na poziomie istotności α = 0,05 z wykorzystaniem programu Statistica 8.0. Stwierdzono istotny wpływ różnych sposobów uprawy roli na liczebność analizowanych mikroorganizmów i aktywność enzymów glebowych w różnych terminach i fazach rozwojowych pszenicy jarej. Zastosowanie siewu bezpośredniego w uprawie roli zwiększyło liczebność drobnoustrojów i ich aktywność enzymatyczną (dehydrogenaza 0,07–0,90 μmol TPF·g-1s.m. gleby·(24 h)-1, fosfataza kwaśna 0,36–0,79 μmol PNP·g-1s.m.gleby·h-1 i proteaza 0,05–0,65 μg tyrozyny·g-1s.m.gleby·h-1) w stosunku do technologii tradycyjnej. Gleba pochodząca z obiektów z siewem bezpośrednim charakteryzowała się zwiększoną o 10,1% ogólną ilością bakterii i o 63,1% grzybów w porównaniu do uprawy płużnej.

EN

Słowa kluczowe

PL

mikroorganizmy glebowe; enzymy glebowe; uprawa roli; systemy uprawy; pszenica jara; stanowisko; przygotowanie do uprawy; liczebnosc mikroorganizmow; aktywnosc enzymatyczna

• Wydawca: -
• Czasopismo: Polish Journal of Agronomy
• Rocznik: 2013
• Numer: 15
• Opis fizyczny: s.21-26,bibliogr.

Twórcy

autor

Pociejowska M.

• Katedra Mikrobiologii Ogólnej i Środowiskowej, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul.Szydłowska 50, 60-656 Poznań

autor

Natywa M.

• Katedra Mikrobiologii Ogólnej i Środowiskowej, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul.Szydłowska 50, 60-656 Poznań

autor

Majchrzak L.

• Katedra Agronomii, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul.Dojazd 11, 60-632 Poznań

autor

Clapa T.

• Katedra Mikrobiologii Ogólnej i Środowiskowej, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul.Szydłowska 50, 60-656 Poznań

autor

Selwet M.

• Katedra Mikrobiologii Ogólnej i Środowiskowej, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul.Szydłowska 50, 60-656 Poznań

Bibliografia

• Alvear M., Rosas A., Rouanet J.L., Borie F., 2005. Effects of three soil tillage systems on some biological activities in an Ultisol from southern Chile. Soil Till. Res., 82: 195-202.
• Bielińska E. J., Mocek-Płóciniak A., 2012. Wpływ systemu uprawy na aktywność enzymatyczną gleby. Arch. Environ. Prot., 38(1): 75-82.
• Derpsch R., Friedrich T. 2009. Development and Current Status of No-till Adoption in the World. ss. 1-13. W: Proceedings on CD, 18th Triennial Conference of the International Soil Tillage Research Organization (ISTRO). June 15–19, Izmir, Turkey, 2009.
• Farrell R.E., Gupta V.V.S.R., Germida J.J., 1994. Effects of cultivation on the activity and kinetics of arylsulfatase in Saskatchewan soils. Soil Biol. Biochem., 26: 1033-1040.
• Frąc M., Lipiec J., Rutkowska A., Oszust K., Półtorak M., 2011. Właściwości mikrobiologiczne gleby pod uprawą pszenicy ozimej w systemach ekologicznym i konwencjonalnym. Acta Agrophys., 18(2): 245-254.
• Gajda A.M., Martyniuk S., Stachyra A., Wróblewska B., Zięba S., 2000. Relations between microbiological and biochemical properties of soil under different agrotechnical conditions and its productivity. Pol. J. Soil Sci., 33: 50-55.
• Gajda A., Martyniuk S., 2005. Microbial biomass C and N and activity of enzymes in soil under winter wheat grown in different crop management systems. Pol. J. Environ. Stud., 14(2): 159-163.
• Gajda A., M., Przewłoka B., Gawryjołek K., 2010. Ocena oddziaływania systemu uprawy roli na środowisko glebowe na podstawie zmian parametrów mikrobiologicznej aktywności gleby. Nauka Przyr. Technol., 4(6): 1-11.
• Koper J., Piotrowska A., 1996. Aktywność enzymatyczna gleby płowej w zależności od uprawy roślin w zmianowaniu i monokulturze. Rocz. Glebozn., 57(3/4): 89-100.
• Ladd N., Butler J.H.A., 1972. Short-term assays of soil proteolytic enzyme activities using proteins and dipeptide derivatives as substrates. Soil Biol. Biochem., 4: 19-30.
• Małecka I. Swędrzyńska D., Blecharczyk A., Dytman-Hagedon M., 2012. Wpływ systemów uprawy roli pod groch na właściwości fizyczne, chemiczne i biologiczne gleby. Fragm. Agron., 29(4): 106-116.
• Marinari S., Mancinelli R., Campligia E., Grego S., 2006. Chemical and biological indicators of soil quality in organic and conventional farming systems in central Italy. Ecol. Indic., 6: 701-711.
• Martyniuk S., Gajda A., Kuś J., 2001. Microbiological and biochemical properties of soils under cereals grown in the ecological, conventional and integrated system. Acta Agrophys., 52: 185-192.
• Natywa M., Sawicka A., Wolna-Maruwka A., 2010. Aktywność mikrobiologiczna i enzymatyczna gleby pod uprawą kukurydzy w zależności od zróżnicowanego nawożenia azotem. Woda Środ. Obsz. Wiejs., 2(30): 111-120.
• Quemada M., Menacho E. 2001. Soil respiration 1 year after sewage sludge application. Biol. Fertil. Soils, 33: 344-346.
• Tabatabai M.A., Bremner J.M. 1969. Use of p-nitrophenyl phosphate for assay of soil phosphatase activity. Soil Biol. Biochem., 1: 301-307.
• Thalmann A. 1968. Zur Methodik der Bestimmung der Dehydrogenase Aktivität in Boden Mittels Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC). Landwirsch. Forsch., 21: 249-284.