Hormonal regulation of the growth of leaves and inflorescence stalk in Muscari armeniacum Leichtl.

• Autorzy: Saniewski M. , Goraj-Koniarska J. , Wegrzynowicz-Lesiak E. , Gabryszewska E.

Warianty tytułu

PL

Hormonalna regulacja wzrostu pędu kwiatostanowego i liści szafirka (Muscari armeniacum Leichtl.)

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

It is known that chilling of Muscari bulbs is necessary for the growth of the inflorescence stalk and flowering, but not for the growth of leaves. Gibberellic acid (GA) accelerated stem growth and flowering in chilled Muscari bulbs. In the present experiment it was shown that in unchilled derooted Muscari bulbs the growth of leaves, but not the growth of the inflorescence stalk, was observed when bulbs were stored in water, GA at a concentration of 50 and 100 mg/L, benzyladenine (BA) at a concentration of 25 and 50 mg/L, or a mixture of GA+BA (50+25 mg/L), but abscisic acid (ABA) at a concentration of 10 mg/L greatly inhibited the growth of leaves. In chilled derooted Muscari bulbs the growth of leaves and inflorescence stalk was observed when bulbs were stored in water or GA, but BA and GA+BA treatments totally inhibited the growth of the inflorescence stalk without an effect on the growth of leaves. These results clearly showed that the growth of leaves and inflorescence stalk in Muscari bulbs are controlled by plant growth regulators in different ways. ABA totally inhibited the growth of leaves and inflorescence stalk in chilled derooted Muscari bulbs. It was shown that after the excision of the inflorescence bud in cultivated chilled Muscari bulbs, the inflorescence stalk died, but application of indole-3-acetic acid (IAA) 0.5% in the place of the removed inflorescence bud induced the growth of the inflorescence stalk. IAA applied under the inflorescence bud inhibited the development of flowers (flower-bud blasting) and induced the growth of the inflorescence stalk below the treatment site. These results are discussed with reference to hormonal regulation of stem (stalk) growth in tulip, narcissus, hyacinth, and Hippeastrum.

PL

Wczesną jesienią cebule szafirków z uformowanym pąkiem kwiatostanowym, liśćmi i primordiami korzeni są wysadzane do gleby, gdzie następuje ukorzenianie i wzrost liści długości kilku centymetrów nad ziemią jeszcze przed przechłodzeniem. Kwitnienie następuje wczesną wiosną po przechłodzeniu. Z cebul szafirków bez przechłodzenia wysadzanych do ogrzewanej szklarni wyrastają nienaturalnie długie liście, w porównaniu z cebulami przechłodzonymi, ale nie następuje wzrost pędu kwiatostanowego. Przechłodzenie cebul szafirków jest konieczne do wzrostu pędu kwiatostanowego, ale nie liści. Kwas giberelinowy (GA) podany w paście lanolinowej wokół piętki cebul szafirków przyśpiesza kwitnienie i wzrost liści u cebul przechłodzonych, ale nie przerywa spoczynku pędu kwiatostanowego u cebul nieprzechłodzonych. Obecne badania wykazały, że nieprzechłodzone cebule szafirków trzymane w roztworze z benzyloadeniną (BA) w stężeniu 25 i 50 mg/L, po usunięciu zaczątków korzeni, reagowały stymulacją wzrostu liści, a kwas abscysynowy (ABA) powodował całkowite zahamowanie wzrostu liści, natomiast podanie GA pozostało bez wpływu na wzrost liści. W przypadku cebul szafirków przechłodzonych w 5°C (bez ukorzeniania) i po obcięciu zaczątków korzeni, moczenie cebul w roztworze BA spowodowało całkowite zahamowanie wzrostu pędu kwiatostanowego bez wpływu na wzrost liści, natomiast w przypadku traktowania GA następował wzrost pędu kwiatostanowego i liści, podobnie jak w kontroli (przetrzymywanie w wodzie). ABA hamował prawie całkowicie wzrost liści i pędu. Usunięcie pąka kwiatostanowego we wczesnym etapie wzrostu liści i pędu u szafirków powodowało całkowicie zahamowanie wzrostu pędu, a nałożenie auksyny (IAA) w miejscu usuniętego pąka przywracało naturalny wzrost pędu. Natomiast podanie IAA pod pąkiem kwiatostanowym we wczesnym etapie wzrostu pędu powodowało zamieranie wszystkich pąków kwiatowych, najprawdopodobniej na skutek stymulującego działania IAA na tworzenie się etylenu.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Agrobotanica
• Rocznik: 2016
• Tom: 69
• Numer: 1
• Opis fizyczny: Article 1654 [8p.], fig.,ref.

Twórcy

autor

Saniewski M.

• Department of General Biology, Research Institute of Horticulture, Konstytucji 3 Maja 1/3, 96-100 Skierniewice, Poland

autor

Goraj-Koniarska J.

• Department of General Biology, Research Institute of Horticulture, Konstytucji 3 Maja 1/3, 96-100 Skierniewice, Poland

autor

Wegrzynowicz-Lesiak E.

• Department of General Biology, Research Institute of Horticulture, Konstytucji 3 Maja 1/3, 96-100 Skierniewice, Poland

autor

Gabryszewska E.

• Department of General Biology, Research Institute of Horticulture, Konstytucji 3 Maja 1/3, 96-100 Skierniewice, Poland

Bibliografia

• 1. Saniewski M. The effect of gibberellic acid on the flowering and growth of Muscari comosum Mill. Bulletin of the Polish Academy of Sciences. Biological Sciences. 1978;25:795–797.
• 2. Saniewski M, Tymoszuk J, Rudnicki M. Hormonal control of flowering and growth of the inflorescence stalk and leaves of Muscari armeniacum Leitchl. Prace Instytutu Sadownictwai Kwiaciarstwa, Ser. B. 1978;57–67.
• 3. Hanks GR, Jones SK. The cold requirement for forcing Muscari and related plants. Sci Hortic (Amsterdam). 1987;32:287–296. http://dx.doi.org/10.1016/0304-4238(87)90094-X
• 4. Saniewski M, Nowak J, Mynett K, Rudnicki R. Studies on the physiology of hyacinth bulbs (Hyacinthus orientalis L.). III. The breaking of hyacinth bulb dormancy by gibberellicacid. Proceedings of the Research Institute of Pomology, Skierniewice, Poland, Series E.1973;3:533–538.
• 5. Saniewski M. Induction of bulblet formation by benzyladenine in Muscari bulbs. Bulletin of the Polish Academy of Sciences. Biological Sciences. 1979;27:303–308.
• 6. Saniewski M, Puchalski J. The inhibitory effect of gibberellic acid and auxins on differentiation of benzyladenine-induced bulblets in Muscari bulbs. Prace Instytutu Sadownictwai Kwiaciarstwa, Ser. B – Rośliny Ozdobne. 1982;7:171.
• 7. Vanderhoef LN, Stahl C, Siegel N, Zeigber R. The inhibition by cytokinin of auxin-promoted elongation in excised soybean hypocotyl. Physiol Plant. 1973;29:22–27. http://dx.doi.org/10.1111/j.1399-3054.1973.tb04804.x
• 8. Victor TS, Vanderhoef LN. Mechanical inhibition of hypocotyl elongation induces radial nlargement. Implications for cytokinin action. Plant Physiol. 1975;56:845–846. http://dx.doi.org/10.1104/pp.56.6.845
• 9. Shibaoka H. Involvement of wall microtubules in gibberellin promotion and kinetin inhibition of stem elongation. Plant Cell Physiol. 1974;15:255–263.
• 10. Gabryszewska E, Saniewski M. Hormonal control of tulip leaf elongation in vitro. Acta Physiol Plant. 1984;6(1):19–25.
• 11. Saniewski M, Gabryszewska E. Hormonal control of tulip stalk elongation in vitro. Acta Hortic. 1983;131: 275–282. http://dx.doi.org/10.17660/ActaHortic.1983.131.32
• 12. Op den Kelder P, Benschop M, de Hertogh AA. Factor affecting floral stalk elongation of flowering tulips. J Am Soc Hortic Sci. 1978;96:603–605.
• 13. Hanks GR, Rees AR. Stem elongation in tulip and narcissus: the influence of floral organs and growth regulators. New Phytol. 1977;78:579–591. http://dx.doi.org/10.1111/j.14698137.1977.tb02161.x
• 14. Saniewski M, de Munk WJ. Hormonal control of shoot elongation in tulips. Sci Hortic (Amsterdam). 1981;5:363–372. http://dx.doi.org/10.1016/0304-4238(81)90091-1
• 15. Banasik L, Saniewski M. The effect of different auxins on tulip stem elongation. Acta Hortic. 1985;167:193–204. http://dx.doi.org/10.17660/ActaHortic.1985.167.20
• 16. Gabryszewska E, Saniewski M. Auxin control of tulip stalk elongation in vitro. Sci Hortic (Amsterdam). 1983;19:153–159. http://dx.doi.org/10.1016/0304-4238(83)90056-0
• 17. Saniewski M, Okubo H, Miyamoto K, Ueda J. Auxin induces growth of stem excised from growing shoot of cooled tulip bulbs. Journal of the Faculty of Agriculture, Kyushu University.2005;50:481–488.
• 18. Saniewski M, Okubo H, Miyamoto K, Ueda J. Susceptibility and/or responsiveness of tulip stem segments excised from cooled or uncooled bulbs to indole-3-acetic acid. Floricultureand Ornamental Biotechnology. 2007;1:142–146.
• 19. Saniewski M. Studies on the physiology of hyacinths bulbs (Hyacinthus orientalis L.). XVII. Hormonal control of inflorescence stalk growth in hyacinth. Prace Instytutu Sadownictwai Kwiaciarstwa, Ser. B – Rośliny Ozdobne 1981;6:95–100.
• 20. Saniewski M, Okubo H. Induction of Hippeastrum × hybr. hort. scape growth by auxin. Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych. 2005;504:245–249.
• 21. de Munk WJ. Bud necrosis, a storage disease of tulips. III. The influence of ethylene and mites. Netherlands Journal of Plant Pathology. 1972;78:168–178. http://dx.doi. org/10.1007/BF01976551
• 22. de Munk WJ. Flower-bud blasting in tulips caused by ethylene. Netherlands Journal of Plant Pathology. 1973;79:41–53. http://dx.doi.org/10.1007/BF02083665
• 23. de Munk WJ, Hoogeterp P. Flower-bud blasting in tulips. Acta Hortic. 1975;47:149–156.
• 24. de Hertogh AA, Dilley DR, Blakely N. Response variation of tulip cultivars to exogenous ethylene. Acta Hortic. 1990;109:205–210. http://dx.doi.org/10.17660/ActaHortic.1980.109.28
• 25. de Munk WK, Gijzenberg J. Flower-bud blasting in tulip plants mediated by the hormonal status of the plant. Sci Hortic (Amsterdam). 1977;7:255–268. http://dx.doi. org/10.1016/0304-4238(77)90022-X
• 26. Kamerbeek GA, de Munk WJ. A review of ethylene effects in bulbous plants. Sci Hortic (Amsterdam). 1976;4:101–115. http://dx.doi.org/10.1016/S0304-4238(76)80001-5
• 27. Saniewski M. Differential action of IAA and NAA, dependent on the transport direction, on perianth and pistil growth in tulips. Acta Hortic. 1986;177:135–140. http://dx.doi.org/10.17660/ActaHortic.1986.177.18
• 28. Yang SDF, Hoffman NE. Ethylene biosynthesis and its regulation in higher plants. Annu Rev Plant Physiol. 1984;35:155–189. http://dx.doi.org/10.1146/annurev.pp.35.060184.001103

Identyfikatory

DOI

10.5586/aa.1654