Badania przechowalnicze liofilizatów szczepów bakterii fermentacji mlekowej stosowanych w produkcji biopreparatów do kiszenia pasz i probiotyków dla zwierząt. Część 2

• Autorzy: Miecznikowski A.

Warianty tytułu

EN

Studies of storage freeze-dried lactic acid bacteria strains used in the production of biopreparations to ensile feed and probiotics for animals. Part 2

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Doświadczenia przechowalnicze trwały 12 miesięcy. Po 12 miesiącach prowadzenia eksperymentu wystąpiły znaczne różnice w przebiegu krzywych przeżywalności. Dotyczy to zarówno testowanych szczepów, jak i metod ich utrwalania oraz warunków przechowywania. Niezależnie od szczepu i zastosowanej metody przechowywania, preparaty wykonane z zastosowaniem suszenia fluidyzacyjnego charakteryzują się niższą przeżywalnością bakterii w porównaniu z preparatami uzyskanymi poprzez liofilizację. Przeżywalność bakterii w liofilizatach wynosiła od 17,9% do 92,0% po 12 miesiącach przechowywania (suszenie metodą fluidyzacji 4,5% do 1,1%).

EN

Storage experience lasted 12 months. After twelve months of the experiment there were significant differences in the course of the survival curves of bacteria. This applies to both strains tested and methods for their preservation and storage conditions. Preparations made using the fluidized drying had worse survival of the cells compared to the formulations obtained by freeze-drying, regardless of the strain and the storage conditions. Survival of freeze-dried bacteria was between 17.9% and 92.0% after 12 months of storage (fluidized bed drying method 1.1 to 4.5%).

Słowa kluczowe

PL

szczepy bakteryjne; bakterie kwasu mlekowego; liofilizacja; doswiadczenia przechowalnicze; biopreparaty; pasze przemyslowe; kiszenie; probiotyki; zywienie zwierzat

• Wydawca: -
• Czasopismo: Postępy Nauki i Technologii Przemysłu Rolno-Spożywczego
• Rocznik: 2017
• Tom: 72
• Numer: 4
• Opis fizyczny: s.25-37,wykr.,bibliogr.

Twórcy

autor

Miecznikowski A.

• Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego im.prof.Wacława Dąbrowskiego, ul.Rakowiecka 36, 02-532 Warszawa

Bibliografia

• 1. Abadias M., Benabarre A., Teixidó N., Usall J., Viñas I. (2001). Effect of freeze drying and protectants on viability of the biocontrol yeast Candida sake. Int. J. Food Microbiol., 65, 173-182
• 2. Bâati L., Fabre-Gea C., Auriol D., Blanc P. J. (2000). Study of the cryotolerance of Lactobacillus acidophilus: effect of culture and freezing conditions on the viability and cellular protein levels. Int. J. Food Microbiol., 59, 241-247
• 3. Bednarski W. (2003). Biotechnologia żywności. Warszawa: Wydawnictwa Naukowo-Techniczne
• 4. Bednarski W. (2007). Podstawy biotechnologii przemysłowej. Warszawa: Wydawnictwa Naukowo-Techniczne
• 5. Bednarski W. (1990). Wybrane aspekty utrwalania oraz przechowywania szczepów drobnoustrojów przemysłowych. Przem. Ferm. Owoc.-Warz., 3, 13-15
• 6. Bergenholtz Å. S., Wessman P., Wuttke A., Håkensson S. (2012). A case study on stress preconditioning of a Lactobacillus strain prior to freeze-drying. Cryobiology, 64, 152-159
• 7. Bozoğlu T. F., Őziglen M., Bakir U. (1987). Survival kinetics of lactic acid starter cultures during and after freeze drying. Enzyme Microbiobial Technol., 9, 531-537
• 8. Carvalho S. A., Silva J., Ho P., Teixeira P., Malcata X. F., Gibbs P. (2004). Relevant factors for preparation of freeze-dried lactic acid bacteria. Int. Dairy J., 14, 835-847
• 9. Champagne C. P., Mondou F., Raymond Y., Roy D. (1996). Effect of polymers and storage temperature on the stability of freeze-dried lactic acid bacteria. Food Res. Int.,29, 555-562
• 10. Chmiel A. (1998). Biotechnologia – podstawy mikrobiologiczne i biochemiczne. Warszawa: Wydawnictwo PWN
• 11. Ciurzyńska A., Lenart A. (2011). Freeze-drying – application in food processing and biotechnology – A review. Pol. J. Food Nutr. Sci., 61, 165-171
• 12. De Giulio B., Orlando P., Barba G., Coppola R., De Rosa M., Sada A., De Prisco P. P., Nazzaro F. (2005). Use of alginate and cryo-protective sugars to improve the viability of lactic acid bacteria after freezing and freeze-drying. World J. Microbiol. Biotechnol., 21, 739-746
• 13. Dziugan P. (2009). Kinetyka suszenia sublimacyjnego piekarskiej kultury starterowej. Chłodnictwo, 4, 46-48
• 14. Hubálek Z. (2003). Protectants used in the cryopreservation of microorganisms. Cryobiology, 46, 205-229
• 15. Kanmani P., Kumar R. S., Yuvaraj N., Paari K. A., Pattukumar V., Arul V. (2011). Effect of cryopreservation and microencapsulation of lactic acid bacterium Enterococcus faecium MC13 for long-term storage. Biochem. Eng. J., 58-59, 140-147
• 16. Kawała Z., Kapłon J., Kramkowski R. (1993). Ważniejsze aspekty suszenia sublimacyjnego. Przem. Spoż., 3, 64-67
• 17. Libudzisz Z., Kowal K., Żakowska Z. (2009). Mikrobiologia techniczna. Tom 1. Mikroorganizmy i środowiska ich występowania. Warszawa: Wydawnictwo Naukowe PWN
• 18. Liu Y., Zhao Y., Feng X. (2007). Exergy analysis for a freeze-drying process. Appl. Thermal Eng., 28, 675-690
• 19. Meng X. C., Stanton C., Fitzgerald G. F., Daly C., Ross R. P. (2008). Anhydrobiotics: The challenges of drying probiotic cultures. Food Chem., 106, 1406-1416
• 20. Miyamoto-Schinohara Y., Imaizumi T., Sukenobe J., Murakami Y., Kawamura S., Komatsu Y. (2000). Survival rate of microbes after freeze-drying and long-term storage. Cryobiology, 41, 251-255
• 21. Morgan C. A., Herman N., White P. A., Vesey G. (2006). Preservation of microorganisms by drying – A review. J. Microbiol. Meth., 66, 183-193
• 22. Passot S., Cenard S., Douania I., Tréléa I. C., Fonseca F. (2012). Critical water activity and amorphous state for optimal preservation of lyophilized lactic acid bacteria. Food Chem., 132, 1699-1705
• 23. PN-EN 15787:2009, Pasze. Wykrywanie i oznaczanie liczby Lactobacillus spp
• 24. Połomska X., Wojtatowicz M., Żarowska B., Szołtysik M., Chrzanowska J. (2007). Skrining podłoży do produkcji liofilizowanych szczepionek drożdżowych dla serowarstwa. Acta Sci. Pol. Biotechnol., 6, 3-14
• 25. Porter D. C., Leuschner R. G. K., Murray B. S. (2007). Optimizing the viability during storage of freeze-dried cell preparations of Campylobacter jejuni. Cryobiology, 54, 265-270
• 26. Ratti C. (2001). Hot air and freeze-drying of high value foods: a review. J. Food Eng., 49, 311-319
• 27. Saarela M., Virkajärvi I., Alakomi H.-L., Mattila-Sandholm T., Vaari A., Suomalainen T., Mättö J. (2005). Influence of fermentation time, cryoprotectant and neutralization of cell concentrate on freeze-drying survival, storage stability, and acid and bile exposure of Bifidobacterium animalis ssp. lactis cells produced without milk-based ingredients. J. Appl. Microbiol., 99, 1330-1339
• 28. Santivarangkna C., Higl B., Foerst P. (2008). Protection mechanisms of sugars during different stages of preparation process of dried lactic acid starter cultures. Food Microbiol., 25, 429-441
• 29. Schoug Å., Olsson J., Carlfors J., Schnürer J., Håkansson S. (2006). Freeze-drying of Lactobacillus coryniformis Si3-effects of sucrose concentration, cell density, and freezing rate on cell survival and thermophysical properties. Cryobiology, 53, 119-127
• 30. Skoneczna J., Ciesielczyk W. (2010). Możliwości suszenia fluidyzacyjnego wybranych rodzajów biomasy. Chemia. Czasopismo Techniczne. Wydawnictwo Politechniki Krakowskiej, 10, 299-308
• 31. Yi-Chieh Wang, Roch-Chui Yu, Cheng-Chun Chuo (2004). Viability of lacic acid bacteria and bifidobacteria in fermented soymilk after drying, subsequent rehydration and storage. Int. J. Food Microbiol., 93, 209-217
• 32. Zayed G., Roos Y. H. (2004). Influence of trehalose and moisture content on survival of Lactobacillus salivarius subjected to freeze-drying and storage. Process Biochem., 39, 1081-1086
• 33. Zhao G., Zhang G. (2005). Effect of protective agents, freezing temperature, rehydration media on viability of malolactic bacteria subjected to freeze-drying. J. Appl. Microbiol., 99, 333-338