PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników

Czasopismo

2013 | 66 | 2 |

Tytuł artykułu

Improving an in vitro propagation protocol for Cestrum nocturnum L.

Autorzy

Treść / Zawartość

Warianty tytułu

PL
Udoskonalenie metody rozmnażania Cestrum nocturnum L. w warunkach in vitro

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
The present study was carried out to assess the micropropagation of Cestrum (Cestrum nocturnum L.) by using single nodes and shoot tips excised from soft cuttings using MS salts, 30 g × l-1 sucrose, 7 g × l-1 agar, and different concentrations of plant growth regulators in culture medium. The results revealed that the use of mercuric chloride (0.05%, HgCl2) for 7 minutes was very effective in preventing contamination and gave the highest survival percentage (99%). The highest response (100%) was gained at initiation stage from lateral bud explants on MS medium supplemented with 1.5 mg × l-1 of BA with most of NAA concentrations. However, in case of terminal buds, higher percentages of responses were resulted from the interaction of BA (1.5 mg × l-1) with 0.2 mg × l-1 NAA. The lateral buds also produced more new shoots as well as a higher number of leaves and length of new shoots on the medium supplemented with 1.5 mg × l-1 BA as compared with those from terminal buds. Significant differences were observed at multiplication stage between the lateral buds and terminal buds, since the lateral buds produced a higher number of new shoots and leaves as well as longer new shoots. At rooting stage, the treatment with 1 mg × l-1 IBA gave the highest percentage of rooting (100%), the highest number of roots (13.2 root/explant), and the longest roots (8.44 cm), respectively, on half strength MS medium. Plantlets obtained were transferred to pots and acclimatized with 90% success.
PL
Badania przeprowadzono w celu oceny mikrorozmnażania Cestrum (Cestrum nocturnum L.) przy wykorzystaniu pojedynczych węzłów oraz wierzchołków pędów wyciętych z miękkich części roślin. Zastosowano sole MS, 30 g × l-1 sacharozy, 7 g × l-1 agaru oraz różne stężenia regulatorów wzrostu roślin w podłożu hodowlanym. Wyniki pokazały, że zastosowanie chlorku rtęci (0,05%, HgCl2) przez 7 minut było bardzo efektywne w usuwaniu zanieczyszczeń oraz dało najwyższy procent przeżywalności (99%). Najwyższy procent reakcji (100%) uzyskano w fazie inicjacji eksplantatów przypadku eksplantatów z pąków bocznych na pożywce MS uzupełnionej 1,5 mgl-1 BA i przy zastosowaniu większości stężeń NAA. Jednak w przypadku pąków wierzchołkowych wyższe procenty reakcji wynikały z interakcji BA (1.5 mg × l-1) z 0,2 mg × l-1 NAA. Pąki boczne również wytworzyły więcej nowych pędów, większą liczbę liści oraz nowe pędy o większej długości na pożywce z dodatkiem 1,5 mg × l-1 BA w porównaniu z pąkami wierzchołkowymi. Istotne różnice pomiędzy pąkami bocznymi i pąkami wierzchołkowymi obserwowano w fazie namnażania, ponieważ pąki boczne wytworzyły większą liczbę nowych pędów i liści oraz dłuższe nowe pędy. W fazie ukorzeniania zastosowanie 1 mg × l-1 IBA dało najwyższy procent ukorzenienia (100%) oraz najwyższą liczbę korzeni na explantat (13,2) i najdłuższe korzenie (8,44 cm) na pożywce MS z zestawu soli. Uzyskane mikrosadzonki zostały przeniesione do doniczek i aklimatyzowano je z 90% skutecznością.

Słowa kluczowe

Wydawca

-

Czasopismo

Rocznik

Tom

66

Numer

2

Opis fizyczny

p.35-44,fig.,ref.

Twórcy

autor
  • Department of Horticulture, Faculty of Agriculture and Forestry, University of Duhok, Kurdistan Region, Iraq

Bibliografia

  • Abdul K.S. 1987. Plant Growth Regulators. (In Arabic). Salahaddin Univ. Ministry of Higher education and scientific Research. IRAQ.
  • Abdullah G.R., Al-Khateeb A.A., Serage M. 2003. Effect of different concentrations of growth regulators on Gardenia jasminoides cv. Veitchii micropropagation by tissue culture technique. J. Agricult. Marine Sci. 8(1): 35–40.
  • Audus L.J. 1959. Plant Growth Substances. 2ed (ed): London; Leonard Hill Ltd, 553. http://dx.doi.org/10.1097/00010694-195404000-00014
  • Brookner N. 1991. Studies on the in vitro Propagation of Mussaenda erythrophlla ‘’Rosea’’.St. Augustine (Trinidad and Tobago): 189. (Abs.).
  • Druart Ph. and R. Gruselle 1986. Plum (Prunus domestica). [In:] Biotechnology in agriculture and forestry, vol. 5: Trees II. Bajaj, Y.P.S. (ed.) Springer, Berlin, Heidelberg. New York, 42–58.
  • Duncan D.B. ‘’Multiple range and multiple F.teses, ‘’Biom., 11: 1–42 (1955).
  • Gawel N.J., Robacker C.D., Corly W.L. 1990. In vitro Propagation of Miscanthus sinesis. HortScience 25(10): 1291–1293.
  • George E.F., Shermington P.D. 1984. Plant Propagation by Tissue Culture. Exegetics Ltd. Eversley. England, 307–308. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4020-5005-3
  • Hammerschlag F.A. 1982. Factors affecting establishment and growth of peach shoots in vitro. HortScience, 17(1): 85–86.
  • Hartmann H.T., Kester D.E., Davies F.T., Geneve R.L. 2002. Plant Propagation, Principles and Practices. 7th edition. Prentice Hall.
  • Hirabayashi, T., Moriguchi T., Kozaki I., Yamamoto Y., Matsuzaki S. 1987. In vitro propagation of pears shoots tips. Bull. Fruit Tree Res.Stn.ser.A, 14: 9–16.
  • Hossain S.N., Munshi M.K., Islam M.R., Hakim L., Hossain M. 2003. In vitro propagation of Plum (Ziziphus jujubalam Lam.). Plant Tissue Culture, 13(1): 81–84.
  • Maruyama S.J. 1995. Sunset Western Garden Book, By the Editors of Sunset books and sunset Magazine sunset Publishing Corporation. Menol Park, California.
  • Mohammed A.A., Al-Younis M.A. 1991. Fundamentals of Plant Physiology (In Arabic).Third part.College of Agriculture. Baghdad.Univ.IRAQ.
  • Mohammed A.M., Omer M.S. 1990. Fundamental Aspects of plant Cell, Tissue and Organ Culture. (in Arabic). Mosul Univ. Ministry of Higher Education. IRAQ.
  • Munshi M.K., Hakim L., Islam M.R., Ahmed G. 2004. In vitro clonal propagation of Banyan (Ficus benghalensis L.) through axillary bud culture. Internat. J. Agricult Biol. 6(2): 321–323.
  • Murashige E. 1990. Plant propagation by Tissue Culture. In: Handbook of plant cell culture. Vol 15. Ornamental species 39. http://dx.doi.org/10.1146/annurev.pp.25.060174.001031
  • Nodoye M., Diallo I., Gassama Y.K. 2003. In vitro multiplication of the semi-arid forest tree, Balanites aeggyptiaca (L.) Del. African J. Biotechn. 2 (11): 421–424.
  • Olivares C.J., Phillips G.C., Butler S.A.N. 1990. Micropropagation of pecan. HortScience, 25:1308.
  • Pasqual M., Audo A. 1989. Micropropagation of trifoliate through axillary buds in in vitro culture. Pesquisa Agrope–Cuaria Barsileira. 24: 217–220.
  • Peak K.Y., Chandler S.F., Thorpe T.A. 1987. In vitro propagation of Chinese cabbage from seedling shoot tip. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 112(5): 841–845.
  • Penuela R., Garavito C., Sanchez-Tames R., Rodrguez R. 1987. Multiple shoot-bud stimulation and rhizogenic induction on axillary shoots of walnut embryonic axes (Abstract) [In:] Int. symp. On vegetative propagation of woody species, Pisa, Italy, 98.
  • Pontikis G.A., Sapoutzaki E. 1984. Effect of phloroglucinol on successful propagation in vitro of “Troyer Citrange “ Plant propagator, 30 (4): 3–5.
  • Preece J.E., Sutter E.G. 1991. Acclimatization of micropropagation plants to greenhouse and field. [In:] Micropropagation Technology and Application.P.C. Debergh and R.H. Zimmerman (eds), 71–93. http://dx.doi.org/10.1007/978-94-009-2075-0_5
  • Reeves D.W., Horton B.D., Couvillon G.A. 1983. Effect of media and media pH on in vitro propagation of Nemaguard peach rootstock. HortScience, 21: 353–357.
  • Roy P.K., Mamun A.N.K.,Ahmad G. 2004. In vitro Plantlets Regeneration of Rose. Plant Tissue Culture.14 (2): 149–154.
  • Salahaddin M., Nasirujjaman K., Maman S., Reza M.A. 2005. Regeneration of multiple shoots from different explant Viz. shoot tip ,nodal segment and cotyledonary node of in vitro grown seedling of Peltophorum pterocarpum (D.C) Backer ex k.Heyne.Biotechnology, 4(1): 35–38.
  • Saleh M.S. 1990. Physiology of Plant Growth Regulators. (In Arabic). Salahaddin. Univ. Ministry of Higher Education and Scientific Research. IRAQ.
  • Shu Shu Y.X. 1994. Cestrum. Flora of China, 17: 330–331.
  • Singh, S., Ray B.K., Bahttacharryya S., Deka P.C. 1994. In vitro propagation of C.reticulata Blanco and C.limon Burm. HortScience, 29(3): 214–216.
  • Snir, T., Erez A. 1980. In vitro propagation of Malling Merton apple rootstocks. HortScience, 15: 597–598.
  • Stern K.R., Jansky S., Bidlack J.E. 2004. Introductory Plant Biology. The Mc Graw-Hill companies. Inc. Bon.
  • Sultana R.S., Bari Miah M.A. 1992. In vitro propagation of Karalla (Momordica charantea Linn) from nodal segment and shoot tip. J. Biological Sciences. 3(12): 1134–1139.
  • Tisserat B., Zaid A. 1983. In vitro shoot tip differentiation in phoenix dactylifera L., Date Palm J,2 (2): 163–182.
  • Tran Thanh ran K. 1981. Control morphogenesis in in vitro culture.Ann. Rev. Plant Physiol. 32: 291–311.
  • Werner E.M., Boe A.A. 1980. In vitro propagation of Malling 7 apple rootstock. HortScience, 15(4): 509–510.

Uwagi

PL
Rekord w opracowaniu

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-34af6b60-85eb-4b09-8ad0-9060c7805c82
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.