The effect of salinity, mycorrhizal inoculation and compost supply on growth and flowering of mealycup sage ‘Blue Victory’ (Salvia farinacea BENTH)

• Autorzy: Nowak J. , Kunka M.

Warianty tytułu

PL

Wpływ zasolenia, mikoryzacji i kompostu na wzrost i kwinienie szałwii omączonej ‘Victory Blue’ (Salvia farinacea BENTH)

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Badania prowadzono w celu określenia, czy inokulacja grzybami tworzącymi mikoryzę arbuskularną (AMF) i stosowanie kompostu poprawi tolerancyjność szałwii omszonej na NaCl, CaCl2 i Na2CO3. Rośliny nieinokulowane i inokulowane AMF uprawiano w podłożu bez kompostu i w podłożu wzbogaconym w kompost i traktowano NaCl, CaCl2 i Na2CO3 w stężeniu 0, 11,68 i 23,36 g∙dm-3. Traktowanie NaCl nieznacznie obniżało suchą masę i znacznie hamowało wzrost elongacyjny pędów, opóźniało kwitnienie szałwii oraz obniżało procent zasiedlenia korzeni przez grzyby mikoryzowe. Traktowanie CaCl2 wpływało niekorzystnie na suchą masę roślin inokulowanych i uprawianych w podłożu z dodatkiem kompostu, ale nie wpływało na wysokość roślin, termin kwitnienia i liczbę kwiatostanów. Traktowanie Na2CO3 obniżało suchą masę szałwii inokulowanej AMF i uprawianej w podłożu z dodatkiem kompostu. Wpływ Na2CO3 na wysokość roślin i liczbę kwiatostanów był niewielki. Mikoryzacja nie wpływała korzystnie na wzrost i kwitnienie szałwii. Dodatek kompostu poprawiał wszystkie parametry wzrostu roślin i zwiększał liczbę kwiatostanów, niezależnie od traktowania roślin solami i inokulacji AMF. Najbardziej szkodliwe dla wartości dekoracyjnej szałwii okazały się traktowania NaCl i Na2CO3 w stężeniu 23,36 g∙dm-3, powodujące nekrozę liści. Traktowanie Na2CO3 w stężeniu 23,36 g∙dm-3 powodowało pojawianie się brązowych plam na liściach dolnych. Zarówno mikoryzacja, jak i dodatek kompostu, stosowane oddzielnie, nie zapobiegały ujemnemu oddziaływaniu testowanych soli na jakość liści szałwi omączonej. Liście szałwii inokulowanej AMF i uprawianej w podłożu z dodatkiem kompostu i podlewanej roztworami CaCl2 lub Na2CO3 w stężeniu 23,36 g∙dm-3 nie miały nekroz i brązowych plam.

PL

The study was conducted in order to determine whether inoculation with arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) and compost supply would enhance the tolerance of mealycup sage to NaCl, CaCl2 and Na2CO3. AMF-inoculated and non-inoculated plants were grown in substrate amended and non-amended with compost and treated with NaCl, CaCl2 and Na2CO3 at 0, 11.68, and 23.36 g∙dm-3. NaCl slightly decreased dry matter and significantly retarded stem elongation, delayed flowering of sage, and decreased percentage of root colonization by AMF. CaCl2 treatment decreased significantly dry matter of inoculated plants grown in compost amended substrate, and did not greatly affect plant height, flowering time and the number of inflorescences. Treatment with Na2CO3 decreased dry matter of sage inoculated with AMF and grown in compost amended substrate. The effect of Na2CO3 on plant height and inflorescence number was negligible. Mycorrhizal inoculation was not beneficial for plant growth and flowering. Compost the amendment increased growth para-eters and inflorescence number, irrespective of salt treatment and mycorrhizal inoculation. The most detrimental for aesthetical value of sage was NaCl and CaCl2 at 23.36 g∙dm-3 causing leaf necrosis. Treatment with Na2CO3 at 23.36 g∙dm-3 resulted in brown spots on lowermost leaves. Separate treatments with AMF or compost did not overcome detrimental effect of all salts tested on visual quality of sage. On sage plants inoculated with AMF and grown in compost amended substrate irrigated with CaCl2 or Na2CO3 at 23.36 g∙dm-3 no necrotic spots or dry leaves were observed.

Słowa kluczowe

EN

Blue Victory cultivar; salinity tolerance; Salvia farinacea; alkalization; compost; flowering; mealucup sage; mycorrhiza; ornamental plant; plant growth; plant quality; sage; salinity; urban soil

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2009
• Tom: 539
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.551-559,ref.

Twórcy

autor

Nowak J.

• Western Pomeranian Technological University, Janosika 8, 71-424 Szczecin, Poland

autor

Kunka M.

Bibliografia

• Alisgharzadeh N., Rastin N.S., Towfighi H., Alizadeh A. 2001. Occurrence of arbuscular mycorrhizal fungi in saline soils of the Tabriz Plain of Iran in relation to some physical and chemical properties of soil. Mycorrhiza 11: 119-122.
• Al-Karaki G.N. 2006. Nursery inoculation of tomato with arbuscular mycorrhizal fungi and subsequent performance under irrigation with saline water. Sci. Hortic. 109: 1-7.
• Asghari H.R., Amerian M.R., Gorbani H. 2008. Soil salinity affects arbuscular mycorrhizal colonization of halophytes. Pakistan J. Biol. Sci. 11(5): 1909-1915.
• Cartmill A.D., Valdez-Aquilar L.A., Bryan D.L., Alarcon A. 2007. Arbuscular mycorrhizal fungi enhance tolerance of vinca to high alkalinity in irrigation water. Sci. Hort. 115(3): 275-284.
• Douds jr. D.D., Johnson C.R., Koch K.E. 1988. Carbon cost of the fungal symbiont relative to net leaf P accumulation in a split-root VA mycorrhizal symbiosis. Plant Physiol. 86: 491-496.
• Gaur A., Adholeya A. 2005. Diverse response of five ornamental plant species to mixed indigenous and single isolate arbuscular-mycorrhizal inocula in marginal soil amended with organic matter. J. Plant Nutr. 28: 707-723.
• Linderman R.G., Davis E.A. 2001. Vesicular-arbuscular mycorrhiza and plant growth response to soil amendment with composted grape pomace or its water extract. HortTechnology 11: 446-450.
• Linderman R.G., Davis E.A. 2003. Soil amendment with different peatmosses affects mycorrhizae in onion. HortTechnology 13: 285-289.
• Linderman R.G., Davis E.A. 2004. Varied response of marigold (Tagetes spp.) genotypes to inoculation with different arbuscular mycorrhizal fungi. Sci. Hort. 99(1): 67-78.
• Nowak J. 2004. Effects of arbuscular mycorrhizal fungi and organic fertilization on growth, flowering, nutrient uptake, photosynthesis and transpiration of geranium (Pelargonium hortorum L.H. Bailey ʻTango Orangeʼ). Symbiosis 37: 259-266.
• Peng S., Eissenstat D.M., Graham J.H., Williams K., Hodge N.C. 1993. Growth depression in mycorrhizal Citrus at high-phosphorus supply. Plant Physiol. 101: 1063-1071.
• Phillips J.M., Hayman D.S. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society 55: 150-160.
• Piotrowski J.S., Morford S.L., Riling M.C. 2008. Inhibition of colonization by a native arbuscular mycorrhizal fungal community via Populus trichocarpa litter, litter extract, and soluble phenolic compounds. Soil Biol. Biochem 40(3): 709-717.
• Sawaki H., Saito M. 2001. Expressed genes in the extraradical hyphae of an arbuscular mycorrhizal fungus, Glomus intraradices, in the symbiotic phase. FEMS Microbiology Letters 195: 109-113.
• Strojny Z. 1993. Nawożenie roślin ozdobnych pod osłonami. Centrum Ogrodnicze, Skierniewice: 1-112.
• Tian C.Y., Feng G., Li X.L., Zhang F.S. 2004. Different effects of arbuscular mycorrhizal fungal isolates from saline or non-saline soils on salinity tolerance of plants. Applied Soil Ecol. 26: 143-148.
• Zimny H. 2005. Ekologia miasta. Agencja Reklamowo-Wydawnicza A. Grzegorczyk, Warszawa: 233 ss.