Wykorzystanie metody in vitro w generatywnym i wegetatywnym rozmnażaniu derenia jadalnego (Cornus mas L.)

• Autorzy: Lech W. , Dziedzic E. , Bieniasz M. , Rduch R.

Warianty tytułu

EN

Applying of in vitro method in generative and vegetative propagation of cornelian cherry (Cornus mas L.)

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Metodę kultur tkankowych wykorzystano w generatywnym i wegetatywnym namnażaniu derenia jadalnego. Poprzez wyłożenie nasion na pożywki i zastosowanie nacięcia łupiny nasiennej oraz dodanie gibereliny w stężeniu 0,5 lub 5,0 mg∙dm-3 do pożywek przełamano spoczynek bezwzględny nasion. Po okresie dwóch miesięcy uzyskano prawidłowo wykształcone siewki derenia. Na podstawie założonej kultury odmian derenia ‘Devin’ oraz ‘Titus’ oceniono możliwość namnażania pędów derenia w warunkach sterylnych. Uzyskano zadowalający współczynnik namnażania pędów, wynoszący od 1:3,8 do 1:4,8; średnia długość pędu wahała się od 2,6 do 3,1 cm w zależności od odmiany i pożywki.

EN

In vitro method was applyed in generative and vegetative propagation of cornelian cherry. Breaking of the seed dormancy was achieved after a gentle cut of seed coat and the addition of GA3 at the concentration of 0.5 or 5.0 mg∙dm-3 into the medium. After two months of culture the regular developed seedlings were obtained. The shoot culture of two cornelian cherry cultivars ʻDevinʼ and ‘Titus’ was established in in vitro conditions. The multiplication index ranged from 1:3.8 to 1:4.8; mean length of shoots ranged from 2.6 to 3.1 cm depending on the cultivar and medium.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2009
• Tom: 534
• Opis fizyczny: s.151-161,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Lech W.

• Katedra Sadownictwa i Pszczelnictwa, Wydział Ogrodniczy, Uniwersytet Rolniczy im.H.Kołłątaja w Krakowie, al.A.Mickiewicza 21, 31-120 Kraków

autor

Dziedzic E.

autor

Bieniasz M.

autor

Rduch R.

Bibliografia

• Airi S., Rawal R.S., Dhar U. 2005. Presowing treatment effects on germination of Cornus capitata seeds. Seed Sci. and Technol. 33(1): 77-86.
• Bewley J.D. 1997. Seed germination and dormancy. The Plant Cell 9: 1055-1066.
• Bogatek R., Dziewanowska K., Lewak S. 1991. Hydrogen cyanide and embryonal dormancy in apple seeds. Physiol. Plant. 83: 417-421.
• Borkowska B., Szczerba J., Kubik M. 1994. Gospodarka cukrami w kulturach pędowych wiśni odm. Lutówka. I Ogólnopolska Konferencja „Zastosowanie kultur in vitro w fizjologii roślin”. Kraków, 15-17 XII 1994: 11-17.
• Debnath S.C. 2005. Effect of carbon source and concentration on development of lingonberry (Vaccinium vitis-idea L.) shoots cultivated in vitro from nodal explants. In Vitro Cell, and Develop. Biol. Plant 41(2): 145-150.
• Declerck V., Korban S.S. 1994. Effects of source of macronutrients and plant growth regulator concentrations on shoot proliferation of Cornus florida. Plant Cell, Tiss. and Organ Cult. 38: 57-60.
• Dulger B., Donuz A. 2004. Antimicrobial activity of some Turkish medicinal plants. Pakistan J. of Biol. Sci. 7(9): 1559-1562.
• Ďurkovič J. 2008. Micropropagation of mature Cornus mas ‘Macrocarpa’. Trees 22: 597-602.
• Edson J.L., Wenny D.L., Leege-Bruven A. 1994. Micropropagation of Pacific dogwood Hort Science 29(11): 1231-1246.
• Ercýslý S. 2004. Cornelian cherry germplasm resources of Turkey. J. Fruit Ornam. Plant Res. 92 Special ed. vol. 12: 87-92.
• Gniazdowska A., Bogatek R. 2007. Regulacyjna rola tlenku azotu w kiełkowaniu nasion. Post. Biol. Kom. 34(3): 431-443.
• Gülçin I., Beydemir S., Şat G., Küfrevioğlu Ö.I. Evaluation of antioxidant activity of cornelian cherry (Cornus mas L.). Acta Alimentaria 34: 193-202.
• Güleryüz M., Bolat I., Pirlak L. 1998. Selection of table cornelian cherry (Cornus mas L.) types in Çoruhv Valley. Tr. J. of Agriculture and Forestry 22: 357-364.
• Kaveriappa K.M., Phillips L.M., Trigiano R.N. 1997. Micropropagation of flowering dogwood (Cornus florida) from seedlings. Plant Cell Reports 16: 485-489.
• Kawecki Z., Bieniek A. 2005. Cornelian cherry (Cornus mas L.) as a perspective orchard and ornamental plant. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 507: 263-267.
• Klimienko S. 2004. The cornelian cherry (Cornus mas L.): collection, preservation and utilization of genetic resources. J. Fruit Ornam. Plant Res. 98 Special ed. 12: 93-98.
• Korszun S., Kolasiński M. 2002. Alternatywna technologia rozmnażania derenia jadalnego (Cornus mas L.). Biulet. Ogrod. Botan. 11: 51-56.
• Léon-Kloosterziel K.M., Van de Bunt G.A., Zeevaart J.A.D., Koornneef M. 1996. Arabidopsis mutants with reduced seed dormancy. Plant Physiol. 110: 233-240.
• Litwińczuk W. 2007. Rozmnażanie borówki wysokiej (Vaccinium corymbosum L.) w kulturach in vitro. Wpływ mikrorozmnażania na wzrost i owocowanie krzewów. Wydaw. Uniw. Rzeszowskiego, Rzeszów 2007. ISBN 978-83-7338-294-4.
• Lloyd G., McCown B. 1980. Commercially feasible micropropagation of mountain laurel Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Proc. Int. Plant. Prop. Soc. 30: 421-427.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
• Pantelidis G.E., Vasilakakis M., Manganaris G.A, Diamantidis Gr. 2007. Antioxidant capacity, phenol, anthocyanin and ascorbic acid contents in raspberries, blackberries, red currants, gooseberries and cornelian cherries. Food Chemistry 102(3): 777-783.
• Rejman A., Makosz E. 1995. Szkółkarstwo roślin sadowniczych. Plantpress, Kraków: 89-92.
• Seneta W. 1973. Dendrologia. PWN, Warszawa: 431-436.
• Trigiano R.N., Beaty R.M., Dietrich J.T. 1989. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration in Cornus florida. Plant Celi Rep. 8: 270-273.

Uwagi

PL

Rekord w opracowaniu