Dynamika formowania zarodków somatycznych w kulturach in vitro tulipana

• Autorzy: Maslanka M. , Bach A.

Warianty tytułu

EN

Dynamics of somatic embryo formation in tulip in vitro cultures

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Kalus embriogeniczny tulipanów odmian ‘Apeldoorn’ i ‘Rosy Wing’, uzyskany z eksplantatów zalążni, wykładano na pożywki z obniżoną zawartością substancji wzrostowych, w stosunku do pożywki namnażającej, w celu formowania zarodków somatycznych. W czasie 20 tygodni prowadzenia kultury tkanki embriogenicznej, na pożywkach z 10 i 5 μM Picloramu, określano procent eksplantatów różnicujących zarodki w fazie rozwoju globularnego w zależności od genotypu, stężenia auksyny i czasu trwania kultury. Określano również liczbę, powstałych z 1 g kalusa, zarodków w stadium torpedy. Największy procent eksplantatów różnicujących zarodki globularne odnotowano po 8 i 12 tygodniach prowadzenia kultury, wynoszący odpowiednio 62% i 50% dla odmiany ‘Apeldoorn’ oraz 32% i 30% dla odmiany ‘Rosy Wing’. Również po 3 miesiącach kultury uzyskano najwięcej zarodków w stadium rozwoju torpedo (blisko 14 szt. u ‘Apeldoorn’ i 4 szt. u ‘Rosy Wing’), po tym czasie obniżała się liczba pozyskiwanych zarodków. Formowanie zarodków somatycznych uzależnione było od genotypu badanej rośliny. Średnio 6,64 zarodków otrzymano z kalusa odmiany ‘Apeldoorn’ w ciągu 20 tygodni, niezależnie od pożywki, co stanowiło trzykrotną, istotną przewagę nad odmianą ‘Rosy Wing’.

EN

Embryogenic callus of tulips cv. ‘Apeldoorn’ and ‘Rosy Wing’, obtained from ovary explants, was put on medium with a lower level of growth regulators, as compared to the proliferation medium, in order to produce somatic embryos. During 20 weeks of the embryogenic tissue cultivation, treated with 10 and 5 μM Picloram, the effect of genotype, auxin concentration and cultivation time on the globular embryo differentiation were investigated. The number of torpedo-shaped embryos obtained from 1g of callus were also examined. The highest percentage of explants forming globular embryos were observed after 8 and 12 weeks of cultivation. For ‘Apeldoorn’ it was 62 and 50%, and for ‘Rosy Wing’ 32 and 30%, respectively. After three months of the embryogenic callus cultivation, the highest number of torpedo-shaped embryos (about 14 for ‘Apeldoorn’ and 4 for ‘Rosy Wing') were obtained. However, during the prolongation of culture the embryo number decreased. Somatic embryo formation closely depended on the genotype. During 20 weeks of cultivation, ‘Apeldoorn’ tulip produced, on the average, 6,64 embryos, independently of medium composition. It trebled the results of ‘Rosy Wing’.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2009
• Tom: 534
• Opis fizyczny: s.163-171,rys.,tab.,wykr.,bibliogr.

Twórcy

autor

Maslanka M.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Uniwersytet Rolniczy im.H. Kołłątaja w Krakowie, al.29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Bach A.

Bibliografia

• Bach A., Ptak A. 2001. Somatic embryogenesis and plant regeneration from ovaries of Tulipa gesneriana L. in in vitro cultures. Acta Horticulturae 560: 391-394.
• Bach A., Ptak A. 2002. Nowa metoda mikrorozmnażania tulipana (Tulipa gesneriana L.) z tkanek zalążni. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 483: 13-19.
• Bach A., Warchoł M. 2000. Effect of light quality on proliferation of embryogenic callus of Hyacinthus orientalis cv. Delft’s Blue. Acta Biologica Cracoviensia 42: 17.
• Bouman H., Langens M., Schoo W., Dijkema M. 1999. Somatic embryogenesis of tulip. Acta Biologica Cracoviensa 41: 34.
• De Vroomen C.O.N. 1997. Farm management aspects of somatic embryogenesis for tulip bulb production. Acta Horticulturae 430: 383-388.
• Filutowicz A., Kużdowicz A. 1951. Mikrotechnika roślinna. PWRiL, Warszawa.
• Gude H., Dijkema M.H.G.E. 1997. Somatic embryogenesis in tulip. Acta Horticulturae 430: 275-280.
• Kępczyńska E. 2006. Kiełkowanie i konwersja somatycznych zarodków in vitro. Biotechnologia 4(75): 78-94.
• Maślanka M., Bach A. 2007. Wpływ kwasu abscysynowego oraz światła na wzrost i rozwój zarodków somatycznych tulipana (Tulipa gesneriana L.). Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 523: 155-161.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Plant Physiology 15: 473-497.
• Orlikowska T. 1997. Regulatory roślinne w kulturach in vitro, w: Regulatory wzrostu i rozwoju roślin. Zastosowanie w ogrodnictwie, rolnictwie, leśnictwie i w kulturach tkanek. Jankiewicz S.L. Praca zbiorowa, PWN, Warszawa: 219-247.
• Podwyszyńska M., Marasek A. 2003. Effects of thidiazuron and paclobutrazol on regeneration potential of tulip flower stalk explants in vitro and subsequent shoot multiplication. Acta Societatis Botanicorum Poloniae 72(3): 181-190.
• Podwyszyńska M., Marasek A., Gabryszewska E. 1997. Indukcja tworzenia pędów przybyszowych i zarodków somatycznych w kulturach in vitro tulipana. Zeszyty Naukowe AR w Krakowie 318: 195-198.
• Ptak A., Bach A. 2007. Somatic embryogenesis in tulip (Tulipa gesneriana L.) flower stem cultures. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant 43: 35-39.
• Raghavan V. 1997. Molecular embryology of flowering plants. Somatic embryogenesis. Cambridge University Press: 467-499.
• Szweykowska A. 1994. Procesy różnicowania w kulturach tkanek i komórek roślinnych. Prace Ogrodu Botanicznego Polskiej Akademii Nauk 5/6: 9-18.

Uwagi

PL

Rekord w opracowaniu